O objetivo do presente protocolo é isolar os primatas não-humanos CD34+ células de medula aprontada, gene-modificar estas células com vetores Lentivirus e preparar um produto para infusão no hospedeiro autólogo. O comprimento total do protocolo é aproximadamente 48 h.
Transplante de células (HSPC) de haste e progenitoras hematopoiético tem sido uma terapia de pedra angular para a leucemia e outros tipos de câncer há quase meio século, subjaz a única cura conhecida de infecção de vírus de imunodeficiência humana (HIV-1) e mostra a imensa promessa em o tratamento de doenças genéticas, tais como talassemia beta. O nosso grupo desenvolveu um protocolo para a terapia de gene HSPC modelo em primatas não-humanos (NHPs), permitindo que os cientistas otimizar muitos dos mesmos reagentes e técnicas que são aplicadas na clínica. Aqui, descrevemos os métodos para a purificação CD34+ HSPCs e subconjuntos de células-tronco hematopoiéticas (HSC) persistentes a longo prazo da medula óssea aprontada (BM). Técnicas idênticas podem ser empregadas para a purificação de outras fontes HSPC (por exemplo, sangue periférico mobilizado células-tronco [PBSCs]). Descrito, é um protocolo de 2 dia em que células são purificadas, culta, modificadas com lentivirus (LV) e preparadas para infusão de volta para o host autólogo. Leituras chaves de sucesso incluem a pureza do CD34+ HSPC da população, a capacidade de HSPCs purificados para formar colônias morfologicamente distintas na mídia semi-sólido e, mais importante, eficiência de modificação genética. A principal vantagem para a terapia de gene HSPC é a capacidade de fornecer uma fonte de vida longa células que dão origem a todos os tipos de células hematopoiéticas. Como tal, esses métodos têm sido usados para terapias de modelo para câncer, doenças genéticas e doenças infecciosas. Em cada caso, eficácia terapêutica é estabelecida, aumentando a função de progênie HSPC distintas, incluindo células vermelhas do sangue, as células T, células B, e/ou subconjuntos mieloides. Os métodos de isolar, modificar e preparar HSPC produtos são directamente aplicáveis e traduzíveis para várias doenças em pacientes humanos.
Terapia gênica de células-tronco é um meio poderoso para abordar um vasto leque de patologias humanas. Terapia de gene HSPC é uma abordagem particularmente atraente, devido à i) a relativa facilidade de coletar essas células dos pacientes, ii) a riqueza de conhecimentos disponíveis sobre fenótipos de superfície celular e ex vivo parâmetros de cultura, e, como o campo se expande, Porque iii) apresenta cientistas com uma caixa de ferramentas cada vez maior de estratégias de modificação do gene adaptados às várias doenças de interesse. Estamos investigando ativamente HSPC abordagens de terapia de gene de vários ângulos, incluindo a ciência básica da HSPC biologia, a enxertia de HSPCs gene-modificado em modelos in vivo pré-clínicos e a aplicação de populações de pacientes relevantes. Nós e os outros têm caracterizado o fenótipo de superfície celular de funcionalmente distintos HSPC subconjuntos1,2,3, a mobilização e regimes de condicionamento que maximizar o rendimento HSPC e enxertia, minimizando toxicidade de4,5e o gene modificação e edição de gene estratégias que têm sido adaptadas para uma ampla gama de maligno, genética e doenças infecciosas6,7,8, 9,10. A função e a enxertia de HSPCs gene modificado podem ser avaliados em um número de modelos de pequeno e grande-animal, incluindo ratos, cães e NHPs. Em particular, modelos de PNC são vantajosos porque muitos reagentes, por exemplo, os anticorpos específicos para as proteínas superfície celular HSPC como CD34 e CD90, podem ser usados permutavelmente em humanos e células do PNC. Além disso, em contraste com os ratos, animais de grandes porte como NHPs permitem uma maior aproximação da escala da modificação genética necessária para a eficácia clínica. Finalmente, NHPs são o padrão ouro para a modelagem de patologias humanas tais como a infecção de HIV-111 e um sistema de modelo emergente para candidato anticâncer e anti-HIV imunoterapias12,13.
O propósito do presente protocolo é delinear os métodos de purificação, modificação genética, e a preparação de produtos de infusão NHP HSPC. Embora fora do âmbito do presente protocolo, anteriormente mostramos que esses produtos engraft em hospedeiros de PNC autólogos, dão origem a todas as linhagens hematopoiéticas e fornecem eficácia terapêutica em uma ampla gama de modelos de doença1. Temos também caracterizada a clonality de HSPCs engrafting e construiu uma plataforma para rastrear a cinética, o tráfico e o fenótipo dos HSPCs individuais e seus descendentes, seguir transplante autólogo1,14. Os métodos aqui apresentados foram desenvolvidos com os seguintes objetivos: i) para isolar HSPCs altamente puros e subconjuntos HSC engrafting a longo prazo, ii) para manter o primitivos linfócitos durante ex vivo de cultura e iii) eficientemente gene-modificar qualquer granel HSPCs ou a longo prazo engrafting HSC subconjuntos. Nós empregamos magnética assistida por célula-classificação (MACS), bem como fluorescência-ativado da pilha (FACS), para isolar fenotipicamente/funcionalmente HSPC populações distintas, consistentes com os métodos de muitos grupos2,15, de classificação 16. A manutenção da primitivas linfócitos em cultura (ou seja, minimizando a diferenciação dessas células em progenitores comprometidos que dão origem a totalmente diferenciadas subconjuntos mieloides e linfoides) é um aspecto essencial do protocolo descrito aqui. Embora nós anteriormente caracterizaram abordagens para expandir HSPCs mantendo um fenótipo primitivo17,18, aqui, descrevemos um protocolo que centra-se na manutenção de linfócitos através de uma mínima (48 h) e definido ex vivo cultura.
A modificação eficiente de HSPCs e HSC subconjuntos é um objetivo central do presente protocolo. Entre várias abordagens temos relatado, dois são de longe os mais investigados em ensaios clínicos: modificação genética de LV-mediada e mediada por nuclease gene edição1,6,19. Gene-edição estratégias usam um de um número de plataformas de nuclease para modificar especificamente um gene alvo de interesse, por exemplo, o receptor do chemokine C-C tipo 5 (CCR5) para o tratamento da infecção de HIV7,19 ou Bcl11A para o tratamento de Hemoglobinopatias6. Aqui, focalizamos a modificação genética de LV-mediado, no qual cargas transgênicas semirandomly integrarem o genoma1,8,20. A principal vantagem da LV abordagens é a capacidade de entregar grandes quantidades de material genético (até 8 ou 9 kilobases). Embora o gene-edição estratégias estão sendo desenvolvidas para direcionar um transgene de interesse para integrar somente em um locus especificado por recombinação homóloga doador (HDR), esses métodos exigem mais desenvolvimento in vitro e em modelos animais pequenos. Em contraste, vetores de LV têm sido amplamente utilizados em NHPs e em pacientes21,22. Importante, o protocolo descrito aqui, que usa aprontado BM como uma fonte HSPC a partida, pode ser facilmente e amplamente adaptado, por exemplo, para isolar o PBSCs. Conforme descrito acima, podemos aproveitar o alto grau de similaridade genética entre NHPs e os seres humanos usar reagentes que são aplicáveis a ambas as espécies. Finalmente, esta abordagem tem sido adaptada para modificar outros subconjuntos hematopoiéticos, nomeadamente T células12,23,24; o advento das abordagens de imunoterapia eficazes células T tem dependia fortemente a mesma plataforma de LV utilizada neste protocolo. Esses métodos são adequados para qualquer pesquisador interessado em biologia HSPC ou modificação genética mediada por LV. Por exemplo, o protocolo de purificação HSPC apresentado aqui pode ser usado para caracterizar o romance subconjuntos HSC-enriquecido, conforme descrito anteriormente,1,15,25. Da mesma forma, a transdução de LV métodos apresentados aqui da mesma forma poderiam ser aplicada e desenvolvida para vários outros tipos de células e perguntas experimentais, tanto em modelos in vitro e in vivo.
Em resumo, apresentamos métodos para isolar e modificar geneticamente NHP HSPCs. Esses métodos podem ser facilmente adaptados para outras espécies e outras fontes de HSPCs. Este protocolo exaustivamente investigado mostra uma grande promessa na modelagem de terapias eficazes para várias doenças humanas.
Vetor de LV engenharia é o método mais bem caracterizado para gene-modificar tipos de célula como CD34 + HSPCs, para posterior transplante em vivo. O protocolo descrito aqui é projetado para maximizar o número de HSPCs gene modificado que persistem a longo prazo na vivo e fornecem benefícios clínicos aos pacientes com várias doenças malignas, infecciosas e genéticas. Embora o gene-edição estratégias surgiram na última década, LV-modificado células são os melhores estudadas in vitro, em modelos…
The authors have nothing to disclose.
Os autores graças Helen Crawford na preparação deste manuscrito, Jim Woolace de design gráfico e Veronica Nelson e Devikha Chandrasekaran para participar no desenvolvimento do protocolo. O desenvolvimento do presente protocolo foi apoiado por concessões do NIH Instituto Nacional de alergia e doenças infecciosas (R01 AI135953 e AI138329 para H.P.K.) e nacional de coração, pulmão e Instituto de sangue (R01 HL136135, HL116217, HL122173 P01 e sub-19 HL129902 para H.P.K.), bem como NIH P51 OD010425 e, em parte através do centro de câncer NIH/ICN, suporte Grant P30 CA015704. H.P.K. é um investigador de Medicina Molecular Markey e recebeu apoio como o destinatário inaugural de José Carreras/E. Donnall Thomas dotado cadeira para pesquisa do câncer e o Fred Hutch dotado cadeira para celular e Gene Therapy.
Stemspam SFEM II ("HSPC") Media | StemCell | 09655 | |
Hank's Balanced Salt Solution | Gibco | 14175095 | |
Phosphate-Buffered Saline | Gibco | 14190-144 | |
Penicillin/Streptomycin | Gibco | 15140-122 | |
Dimethyl Sulfoxide | Sigma Aldrich | D2650-100 | |
100% Ethanol | Decon labs | M18027161M | |
Cyclosporine | Sigma | 30024-25MG | |
500 mM EDTA | Invitrogen | 15575-038 | |
Heat-Inactivated Fetal Bovine Serum | Sigma Aldrich | PS-0500-A | |
CH-296/ RetroNectin (2.5 mL, 1 µg/µL) | TaKaRA | T100B | |
Bovine Serum Albumin | Sigma | A7906-100g | |
HEPES | Sigma | H9897 | |
Rat anti-mouse IgM magnetic beads | Miltenyi Biotec | 130-047-301 | |
Recombinant HumanStem Cell Factor (SCF) | Peprotech | 300-07 | |
Recombinant Human Thrombopoietin (TPO) | Peprotech | 300-18 | |
Recombinant Human FMS-like tyrosine kinase 3 (FLT-3) | Peprotech | 300-19 | |
Protamine sulfate | Sigma | P-4505 | |
14 mL Polypropylene Round-Bottom Tube | Corning | 352059 | |
Colony Gel 1402 | ReachBio | 1402 | |
QuadroMACS Separators | Miltenyi Biotec | 130-090-976 | |
MACS L25 Columns | Miltenyi biotec | 130-042-401 | |
10 mM PGE2 | Cayman Chemical | 14753-5mg | |
TC-treated T-75 flasks | Bioexpress | T-3001-2 | |
Non-TC-treated T-75 flasks | Thermo-Fisher | 13680-57 | |
20 ml syringes | BD Biosciences | 302830 | |
16.5 G needles | BD Precision | 305198 | |
Syringe Tip Cap | BD Biosciences | 305819 | |
QuickExtract DNA Solution | Epicentre | QE09050 | |
8-tube strip cap PCR Tubes | USA scientific | 1402-2708 | |
96-well Thermocycler | Thermo-Fisher | 4375786 | |
Pre-Separation filters | Miltenyi Biotec | 130-041-407 | |
Strainer, Cell; BD Falcon; Sterile; Nylon mesh; Mesh size: 70um; Color: white; 50/CS | fisher scientific | 352350 | |
Ultracomp ebeads | eBioscience | 01-2222-42 | |
MACSmix Tube Rotator | Miltenyi | 130-090-753 | |
3 mL Luer-Lock Syringes | Thermo-Fisher | 14823435 | |
35 mm x 10 mm cell culture dish | Corning | 430165 | |
60 mm x 15 mm cell culture dish | Corning | 430196 | |
150 mm x 25 mm cell culture dish | Corning | 430599 | |
Non TC treated flasks | Falcon | 353133 | |
Qiagen DNA extraction | Qiagen | 51104 | |
PE Anti-Human CD90 (Thy1) Clone:5E10 | Biolegend | 328110 | |
PE-CF594 Mouse Anti-Human CD34 Clone:563 | BD horizon | 562449 | |
APC-H7 Mouse Anti-Human CD45RA Clone: 5H9 | BD Pharmingen | 561212 | |
V450 Mouse Anti-NHP CD45 Clone:d058-1283 | BD Biosciences | 561291 | |
Autologous Serum | Collected from autologous host and cryopreserved prior to mobilization and collection of CD34+ HSPCs | N/A | Beard, B. C. et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354, (2010). |
Virus-Conditioned Media (VCM) | Kiem Lab, FHCRC Co-operative Center for Excellence in Hematology (CCEH) | N/A | Beard, B. C. et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354, (2010). |
Anti-CD34 antibody, Clone 12.8 | Kiem Lab | N/A | Beard, B. C. et al. Efficient and stable MGMT-mediated selection of long-term repopulating stem cells in nonhuman primates. Journal of Clinical Investigation. 120 (7), 2345-2354, (2010). |
Lenti F primer: AGAGATGGGTGCGAGAGCGTCA | Integrated DNA Technologies | N/A | Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016). |
Lenti R primer: TGCCTTGGTGGGTGCTACTCCTAA | Integrated DNA Technologies | N/A | Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016). |
Actin F primer: TCCTGTGGCACTCACGAAACT | Integrated DNA Technologies | N/A | Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016). |
Actin R primer: GAAGCATTTGCGGTGGACGAT | Integrated DNA Technologies | N/A | Peterson, C. W. et al. Multilineage polyclonal engraftment of Cal-1 gene-modified cells and in vivo selection after SHIV infection in a nonhuman primate model of AIDS. Mol Ther Methods Clin Dev. 3 16007, (2016). |