Summary

En Vitro modelo de diferenciación de células de memoria humana Normal B a células plasmáticas duradero

Published: January 20, 2019
doi:

Summary

Utilizando sistemas de cultivo de múltiples pasos, Divulgamos un in vitro células B al modelo de diferenciación de la célula de plasma.

Abstract

Células plasmáticas (PC) secretan grandes cantidades de anticuerpos y desarrollo de las células B que han sido activadas. PC es células en la médula ósea o la mucosa y garantizar la inmunidad humoral. Debido a su baja frecuencia y localización, es difícil el estudio de PC en humanos. Hemos informado a B para PC modelo de diferenciación in vitro usando las combinaciones de citoquinas y activación de moléculas que permiten reproducir la diferenciación secuencial que ocurre in vivo. En este modelo in vitro, memoria (MBCs) de células B diferencian en los plasmablasts (prePBs), plasmablasts PC (PBs), temprano y por último, en larga vida PC, con un fenotipo cerca de sus contrapartes en individuos sanos. También hemos construido un acceso abierto bioinformática herramientas para analizar la información más prominente de datos GEP de diferenciación de la PC. Estos recursos pueden utilizarse para estudiar humano B diferenciación de PC y en el presente estudio, hemos investigado la regulación de la expresión génica de factores epigenéticos durante humano B para diferenciación de PC.

Introduction

La diferenciación de células B a células plasmáticas (PC) es esencial para la inmunidad humoral y proteger al huésped contra infecciones1. B para diferenciación de PC se asocia con cambios importantes en el metabolismo y capacidad de transcripción para la secreción de anticuerpos. Se han estudiado ampliamente los factores de transcripción que controlan B para diferenciación de PC y redes exclusiva reveladas incluyendo transcripción B-PC-específicas y factores (TFs)2. En las células de B, PAX5, BCL6 y BACH2 TFs son los guardianes de la identidad de la célula de B2,3. Inducción de IRF4, PRDM1 codificación BLIMP1 y XBP1 PC TF se apaga genes de la célula B e inducir un coordinado secretoras de anticuerpo células programa transcripcional3,4,5. Estos cambios transcripcionales coordinados están asociados con la activación de transcripción de genes de Ig junto con un interruptor de la forma unida a la membrana a la forma secretada de la inmunoglobulina cadena pesada2,3, 4. B para diferenciación de PC está vinculada con la inducción de genes implicados en el retículo endoplásmico y aparato de Golgi funciones concomitantes con la activación de la respuesta (UPR) de proteína desdoblada conocida por desempeñar un papel clave en la PC con capacidad para la síntesis de secretan las inmunoglobulinas6,7. El TF XBP1 desempeña un papel importante en esta adaptación celular8,9,10.

Las células de B y PC es actores clave de la inmunidad humoral. Comprensión de lo biológico los procesos que controlan la producción y la supervivencia de las células de plasma normales es fundamental en las intervenciones terapéuticas que necesitan para garantizar la eficiente respuesta inmune y prevenir la autoinmunidad o inmunodeficiencia. PC son las células raras a etapas tempranas de la diferenciación tiene lugar en localizaciones anatómicas que dificultan la caracterización biológica completo, particularmente en humanos. Utilizando sistemas de cultivo de varios pasos, hemos divulgado una B in vitro al modelo de diferenciación de PC. Este modelo reproduce la diferenciación secuencial y la maduración que ocurre en los diferentes órganos en vivo11,12,13. En un primer paso, las células de memoria B se activan en primer lugar durante cuatro días por combinación de CD40 ligando, oligodeoxynucleotides y citocinas y se diferencian en preplasmablasts (PrePBs). En un segundo paso, preplasmablasts son inducidas a diferenciarse en plasmablasts (PBs) quitando CD40L y oligodeoxynucleotides estimulación y cambia la combinación de citocinas. En un tercer paso, plasmablasts son inducidas a diferenciar en las primeras PC cambiando la combinación de citocinas11,12. Un cuarto paso se introdujo para obtener piezas totalmente maduros por cultivar estos primeros PC con medio de la médula ósea células stromal acondicionadas o seleccionado factores de crecimiento de13. Estos equipos maduros podrían sobrevivir varios meses en vitro y secretan altas cantidades de inmunoglobulinas (figura 1). Curiosamente, nuestro modelo in vitro recapitula los cambios transcripcionales coordinados y el fenotipo de la B diferente a etapas de PC que puede ser detectado en vivo11,12,13,14 ,15. PC es las células raras y nuestro modelo de diferenciación in vitro permite para estudiar humano B para diferenciación de PC.

Protocol

El protocolo sigue las directrices de acuerdo con la declaración de Helsinki y acuerdo de centro de Hospital de la Universidad de Montpellier de recursos biológicos. 1. en el modelo de diferenciación de la célula de Plasma Vitro Normal Nota: PC se genera a través de una cultura de cuatro pasos11,12,13. Diferenciación y la amplificac…

Representative Results

El procedimiento general de diferenciación in vitro de PC normal se representa en la figura 1. Utilizando el protocolo presentado aquí, podríamos generar suficiente cantidad de células que no se podía obtener con ex vivo de muestras humanas. Aunque se ha investigado el papel de la compleja red de factores de transcripción implicados en la diferenciación de la PC, los mecanismos de regulación de redes de transcripción de diferenciación de PC claves s…

Discussion

En humanos, PC son células con etapas de diferenciación tiene lugar en lugares anatómicos que obstaculizan la caracterización biológico completo. Hemos desarrollado una in vitro B modelo de diferenciación de PC utilizando sistemas de cultivo de varios pasos donde varias combinaciones de moléculas de activación y citoquinas se aplican posteriormente para poder reproducir la diferenciación secuencial en el diferentes órganos/tejidos en vivo11,12,</su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo fue financiado por becas del INCA francés (Institut National du Cancer) cáncer de ITMO (MM & TT), ANR (Tie-Skip) e Instituto (PLBIO15-256).

Materials

anti-CD2 magnetic beads Invitrogen 11159D
Anti-CD138-APC Beckman-Coulter  B49219
Anti-CD19-APC BD 555415
Anti-CD20-PB Beckman-Coulter  B49208
Anti-CD27-PE BD 555441
Anti-CD38-PE Beckman-Coulter  A07779
Anti-histidine R&D Systems MAB050
CpG ODN(PT) Sigma T*C*G*T*C*G*T*T*T*T*G*T*C*
G*T*T*T*T*G*T*C*G*T*T
human Transferin Sigma-Aldrich T3309
IFN-α Merck Intron A
IMDM Gibco 31980-022
Recombinan Human CD40L-hi R&D Systems 2706-CL
Recombinant Human APRIL R&D Systems 5860-AP-010
Recombinant Human IL-10 R&D Systems 217-IL-
Recombinant Human IL-15 Peprotech 200-15-10ug
Recombinant Human IL-2 Protein R&D Systems 202-IL-
Recombinant Human IL-6 Peprotech 200-06

References

  1. Shapiro-Shelef, M., Calame, K. Regulation of plasma-cell development. Nature Reviews Immunology. 5 (3), 230-242 (2005).
  2. Nutt, S. L., Hodgkin, P. D., Tarlinton, D. M., Corcoran, L. M. The generation of antibody-secreting plasma cells. Nature Reviews Immunology. 15 (3), 160-171 (2015).
  3. Shaffer, A. L., et al. Blimp-1 orchestrates plasma cell differentiation by extinguishing the mature B cell gene expression program. Immunity. 17 (1), 51-62 (2002).
  4. Minnich, M., et al. Multifunctional role of the transcription factor Blimp-1 in coordinating plasma cell differentiation. Nature Immunology. 17 (3), 331-343 (2016).
  5. Klein, U., et al. Transcription factor IRF4 controls plasma cell differentiation and class-switch recombination. Nature Immunology. 7 (7), 773-782 (2006).
  6. Gass, J. N., Gunn, K. E., Sriburi, R., Brewer, J. W. Stressed-out B cells? Plasma-cell differentiation and the unfolded protein response. Trends in Immunology. 25 (1), 17-24 (2004).
  7. Goldfinger, M., Shmuel, M., Benhamron, S., Tirosh, B. Protein synthesis in plasma cells is regulated by crosstalk between endoplasmic reticulum stress and mTOR signaling. European Journal of Immunology. 41 (2), 491-502 (2011).
  8. Yoshida, H., Matsui, T., Yamamoto, A., Okada, T., Mori, K. XBP1 mRNA is induced by ATF6 and spliced by IRE1 in response to ER stress to produce a highly active transcription factor. Cell. 107 (7), 881-891 (2001).
  9. Shaffer, A. L., et al. XBP1, downstream of Blimp-1, expands the secretory apparatus and other organelles, and increases protein synthesis in plasma cell differentiation. Immunity. 21 (1), 81-93 (2004).
  10. Reimold, A. M., et al. Plasma cell differentiation requires the transcription factor XBP-1. Nature. 412 (6844), 300-307 (2001).
  11. Jourdan, M., et al. Characterization of a transitional preplasmablast population in the process of human B cell to plasma cell differentiation. Journal of Immunology. 187 (8), 3931-3941 (2011).
  12. Jourdan, M., et al. An in vitro model of differentiation of memory B cells into plasmablasts and plasma cells including detailed phenotypic and molecular characterization. Blood. 114 (25), 5173-5181 (2009).
  13. Jourdan, M., et al. IL-6 supports the generation of human long-lived plasma cells in combination with either APRIL or stromal cell-soluble factors. Leukemia. , (2014).
  14. Kassambara, A., et al. Global miRNA expression analysis identifies novel key regulators of plasma cell differentiation and malignant plasma cell. Nucleic Acids Research. 45 (10), 5639-5652 (2017).
  15. Kassambara, A., et al. GenomicScape: an easy-to-use web tool for gene expression data analysis. Application to investigate the molecular events in the differentiation of B cells into plasma cells. PLOS Computational Biology. 11 (1), 1004077 (2015).
  16. Miremadi, A., Oestergaard, M. Z., Pharoah, P. D., Caldas, C. Cancer genetics of epigenetic genes. Human Molecular Genetics. 16, 28-49 (2007).
  17. Pei, H., et al. The histone methyltransferase MMSET regulates class switch recombination. Journal of Immunology. 190 (2), 756-763 (2013).
  18. Le Gallou, S., et al. IL-2 requirement for human plasma cell generation: coupling differentiation and proliferation by enhancing MAPK-ERK signaling. Journal of Immunology. 189 (1), 161-173 (2012).
  19. Cocco, M., et al. In vitro generation of long-lived human plasma cells. Journal of Immunology. 189 (12), 5773-5785 (2012).
  20. Leung-Hagesteijn, C., et al. Xbp1s-negative tumor B cells and pre-plasmablasts mediate therapeutic proteasome inhibitor resistance in multiple myeloma. Cancer Cell. 24 (3), 289-304 (2013).
  21. Orlowski, R. Z. Why proteasome inhibitors cannot ERADicate multiple myeloma. Cancer Cell. 24 (3), 275-277 (2013).
  22. Ding, B. B., Bi, E., Chen, H., Yu, J. J., Ye, B. H. IL-21 and CD40L synergistically promote plasma cell differentiation through upregulation of Blimp-1 in human B cells. Journal of Immunology. 190 (4), 1827-1836 (2013).
  23. Tsai, C. M., et al. Galectin-1 promotes immunoglobulin production during plasma cell differentiation. Journal of Immunology. 181 (7), 4570-4579 (2008).
  24. Tsai, C. M., et al. Galectin-1 and galectin-8 have redundant roles in promoting plasma cell formation. Journal of Immunology. 187 (4), 1643-1652 (2011).
  25. Anginot, A., Espeli, M., Chasson, L., Mancini, S. J., Schiff, C. Galectin 1 modulates plasma cell homeostasis and regulates the humoral immune response. Journal of Immunology. 190 (11), 5526-5533 (2013).
  26. Belnoue, E., et al. Homing and adhesion patterns determine the cellular composition of the bone marrow plasma cell niche. Journal of Immunology. 188 (3), 1283-1291 (2012).
  27. Belnoue, E., et al. APRIL is critical for plasmablast survival in the bone marrow and poorly expressed by early-life bone marrow stromal cells. Blood. 111 (5), 2755-2764 (2008).
  28. Huard, B., et al. APRIL secreted by neutrophils binds to heparan sulfate proteoglycans to create plasma cell niches in human mucosa. Journal of Clinical Investigation. 118 (8), 2887-2895 (2008).
  29. Ame-Thomas, P., et al. Human mesenchymal stem cells isolated from bone marrow and lymphoid organs support tumor B-cell growth: role of stromal cells in follicular lymphoma pathogenesis. Blood. 109 (2), 693-702 (2007).
  30. Ramachandrareddy, H., et al. BCL6 promoter interacts with far upstream sequences with greatly enhanced activating histone modifications in germinal center B cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (26), 11930-11935 (2010).
  31. Li, G., Zan, H., Xu, Z., Casali, P. Epigenetics of the antibody response. Trends in Immunology. 34 (9), 460-470 (2013).
  32. Miles, R. R., Crockett, D. K., Lim, M. S., Elenitoba-Johnson, K. S. Analysis of BCL6-interacting proteins by tandem mass spectrometry. Molecular & Cellular Proteomics. 4 (12), 1898-1909 (2005).
  33. McManus, S., et al. The transcription factor Pax5 regulates its target genes by recruiting chromatin-modifying proteins in committed B cells. The EMBO Journal. 30 (12), 2388-2404 (2011).
  34. Ahmadnejad, M., et al. Elevated expression of DNMT1 is associated with increased expansion and proliferation of hematopoietic stem cells co-cultured with human MSCs. Blood Research. 52 (1), 25-30 (2017).
  35. Beguelin, W., et al. EZH2 is required for germinal center formation and somatic EZH2 mutations promote lymphoid transformation. Cancer Cell. 23 (5), 677-692 (2013).
  36. Herviou, L., Cavalli, G., Cartron, G., Klein, B., Moreaux, J. EZH2 in normal hematopoiesis and hematological malignancies. Oncotarget. 7 (3), 2284-2296 (2016).
  37. Beguelin, W., et al. EZH2 enables germinal centre formation through epigenetic silencing of CDKN1A and an Rb-E2F1 feedback loop. Nature Communications. 8 (1), 877 (2017).
  38. Herviou, L., et al. PRC2 targeting is a therapeutic strategy for EZ score defined high-risk multiple myeloma patients and overcome resistance to IMiDs. Clinical Epigenetics. 10 (1), 121 (2018).
  39. Asangani, I. A., et al. Characterization of the EZH2-MMSET histone methyltransferase regulatory axis in cancer. Molecular Cell. 49 (1), 80-93 (2013).
  40. Pei, H., et al. MMSET regulates histone H4K20 methylation and 53BP1 accumulation at DNA damage sites. Nature. 470 (7332), 124-128 (2011).
  41. Cui, J., et al. EHMT2 inhibitor BIX-01294 induces apoptosis through PMAIP1-USP9X-MCL1 axis in human bladder cancer cells. Cancer Cell International. 15 (1), 4 (2015).
  42. Santo, L., et al. Preclinical activity, pharmacodynamic, and pharmacokinetic properties of a selective HDAC6 inhibitor, ACY-1215, in combination with bortezomib in multiple myeloma. Blood. 119 (11), 2579-2589 (2012).
  43. Amengual, J. E., et al. Dual Targeting of Protein Degradation Pathways with the Selective HDAC6 Inhibitor ACY-1215 and Bortezomib Is Synergistic in Lymphoma. Clinical Cancer Research. 21 (20), 4663-4675 (2015).
  44. Schoenhals, M., et al. Forced KLF4 expression increases the generation of mature plasma cells and uncovers a network linked with plasma cell stage. Cell Cycle. 15 (14), 1919-1928 (2016).

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Cite This Article
Jourdan, M., de Boussac, H., Viziteu, E., Kassambara, A., Moreaux, J. In Vitro Differentiation Model of Human Normal Memory B Cells to Long-lived Plasma Cells. J. Vis. Exp. (143), e58929, doi:10.3791/58929 (2019).

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