التقنيات الإنجابية لرصد المبيض والسيطرة عليه في البرمائيات
Summary
توفر دراسة البيولوجيا البرمائية معلومات قيمة عن العمليات الإنجابية والفسيولوجية والجنينية والتنموية التي تدفع الكائنات الحية في العديد من المجموعات التصنيفية. هنا، نقدم دليلا شاملا على المنهجيات المختلفة التي يمكن استخدامها لدراسة مراقبة المبيض والرصد في البرمائيات.
Abstract
تتطلب السيطرة على المبيض والرصد في البرمائيات نهجا متعدد الأوجه. هناك العديد من التطبيقات التي يمكن أن تحفز بنجاح السلوكيات الإنجابية والحصول على الجيمتس والأجنة للبحوث الفسيولوجية أو الجزيئية. وتسهم البرمائيات في ربع إلى ثلث البحوث الفقارية، ومن المهم في هذا السياق إسهامها في معرفة الأوساط العلمية بالعمليات الإنجابية والتطور الجنيني. ومع ذلك، فإن معظم هذه المعارف مستمدة من عدد صغير من الأنواع. وفي الآونة الأخيرة، تطلب تدمير البرمائيات في جميع أنحاء العالم تدخلا متزايدا من جانب القائمين على حفظ الطبيعة. فمستعمرات التعافي والضمان الأسيرة التي لا تزال تظهر استجابة لخطر الانقراض تجعل البحوث والتطبيقات السريرية القائمة لا تقدر بثمن لبقاء وتكاثر البرمائيات المحتجزة تحت الرعاية البشرية. ويستند نجاح أي مجموعة من الأسرى على صحتها وتكاثرها والقدرة على تطوير ذرية قابلة للحياة تحمل إلى الأمام التمثيل الجيني الأكثر تنوعا من أنواعها. بالنسبة للباحثين والأطباء البيطريين، فإن القدرة على رصد ومراقبة نمو المبيض والصحة أمر حتمي. يركز هذا المقال على تسليط الضوء على مختلف تقنيات الإنجاب المساعدة التي يمكن استخدامها لرصد، والسيطرة، حيثما كان ذلك مناسبا أو ضروريا، وظيفة المبيض في البرمائيات. ومن الناحية المثالية، ينبغي الحد من أي مسائل تتعلق بالإنجاب والصحة من خلال تربية الأسرى على النحو المناسب، ولكن، كما هو الحال مع أي حيواني، لا مفر من قضايا الصحة والأمراض الإنجابية. وتشمل التقنيات غير الغازية التقييمات السلوكية، والتفتيش البصري والجس والقياسات المورفولومترية لحساب مؤشرات حالة الجسم والموجات فوق الصوتية. وتشمل التقنيات الغازية الحقن الهرمونية، وأخذ عينات الدم، والجراحة. يمكن ممارسة السيطرة على المبيض في عدد من الطرق اعتمادا على التطبيق المطلوب والأنواع ذات الأهمية.
Introduction
وقد تم الاعتراف البرمائيات منذ فترة طويلة كنماذج بيولوجية وطبية هامة من قبل مجموعة واسعة من التخصصات البحثية. وقد تم تطبيق البيانات التي تم الحصول عليها من خلال دراسة أنواع معينة مثل Xenopus laevis وX. tropicalis، وضفدع ليوبارد (Lithobates (سابقا رنا) pipiens) وaxolotl (Ambystomamexicanum)إلى عدد من الأنواع الفقارية الأخرى، بما في ذلك البشر. توفر تقنيات الطب البيطري وتربية الأفراد والتقنيات الإنجابية المساعدة التي انبثقت عن دراسة هذه البرمائيات وغيرها من البرمائيات المساعدة لأولئك المكلفين بتطوير الرعاية الناجحة للسكان النادرين في الأسر وإعالتهم واستدامتهم 1 , 2 , 3 , 4.
ويكتسب الاهتمام بالاستخدام المتزامن للنُهج القائمة على الحفظ في الموقع وخارجه لعكس اتجاه موجة الانقراض بالنسبة للعديد من الأنواع البرمائية المعرضة للخطر1و2. توفر هذه المقالة المنهجيات المتاحة حاليا لرصد ومراقبة وظيفة المبيض البرمائي في الأنواع النموذجية من أنوران وCaudates. بالإضافة إلى ذلك، يتم عرض التقنيات القائمة لمعالجة الأمراض الإنجابية الشائعة للاحتفاظ بالبويضات.
كما هو الحال في العديد من المجموعات التصنيفية، ينطوي التحكم في المبيض البرمائي على سلسلة من التفاعلات المتزامنة بإحكام بين البيئة وعلم وظائف الأعضاء. يتم فك شفرة درجة الحرارة والفترة الضوئية (المعروفة باسم الإشارات القريبة) من قبل العين والدماغ حيث يتم تحويلها بسرعة إلى العمليات الوراثية والهرمونية وcircadian (إشارات في نهاية المطاف)3،4. وتشمل أساليب رصد ومراقبة وظيفة المبيض المشمولة في هذه المقالة تقنيات الغازية وغير الغازية. اللجنة المؤسسية لرعاية الحيوانات واستخدامها (IACUC) متطلبات البحث والتدريس تعريف التقنيات غير الغازية مثل تلك التي من شأنها أن تسبب الحد الأدنى من أي ألم بدني أو ضائقة عقلية ولا تتطلب أي أدوية تخفيف الألم5. هنا، وتشمل التقنيات غير الغازية الفحص البصري والجس، والملاحظات السلوكية، والتقييمات المورفولومترية والموجات فوق الصوتية. على العكس من ذلك، تصنف تقنيات جمع الدم، وإدارة الهرمونات والجراحة (استئصال المبيض وإزالة البيض المحتفظ به) على أنها الغازية لأنها قد تؤدي إلى بعض الألم أو عدم الراحة وتتطلب التخدير أو العلاج بالعقاقير بعد الإجراءات.
يمكن دمج تقنيات مراقبة المبيض غير الغازية بسهولة في روتين الرعاية اليومية لمعظم البرمائيات الأسيرة. اعتمادا على الأنواع، يمكن في كثير من الأحيان تحديد جاذبية المبيض عن طريق التفتيش البصري البسيط (الضفدع الزجاجي). في حالات أخرى، قد يشير الجس إلى ما إذا كانت الأنثى مناهية. مؤشرات حالة الجسم المختلفة (BCI) مثل الوزن، طول خطم urostyle (SUL)، طول تنفيس خطم (SVL) ومؤشر الكتلة القياسية (SMI) متاحة للتنبؤ بوجود أو غياب البيض4،6،7، 8،9. ومع ذلك، ينبغي توخي الحذر مع تفسير النتائج لأن معظم لا تنظر في العمر، شكل الجسم أو تكوين (على سبيل المثال، الماء الاحتفاظ مقابل كتلة المبيض أو الدهون)6. يمكن تحقيق التشخيصات الإنجابية النهائية عن طريق الموجات فوق الصوتية مع مزيد من المعرفة المتعمقة المكتسبة فيما يتعلق بتطوير البيض وتنظيم دورة المبيض4،7. كما يوفر الموجات فوق الصوتية وسيلة لتأكيد ورصد الأمراض التناسلية والظروف الفسيولوجية المرتبطةبها 4،8.
بالإضافة إلى تقديم المعلومات المتعلقة بالحالة الصحية، يمكن استخدام عينات الدم لقياس الهرمونات الإنجابية. إذا كان التنميط هرمون هو الهدف النهائي, من المهم تجنب التأثيرات المتعلقة بالإجهاد التي قد تشوش بيانات الستيرويد النظامية. في حين أن أداة رصد قوية محتملة, لا يزال هناك دراسة تبين استجابات الغدد الصماء الفطرية لإدارة هرمون الخارجية في أي أنواع البرمائيات. يمكن أخذ الدم بأمان من عدة مواقع; في الضفادع وهذا يشمل الوريد البطني البطني، الضفيرةاللسانية، الوريد الفخذي والقلب 9،10. في Caudates، يتم جمع الدم من الوريد الذيل البطني. درجة التوغل، وكمية ضبط النفس المطلوبة، والحاجة إلى التخدير، وحساسية الجهاز المستهدف، وحجم الحيوان هي العوامل التي يجب أخذها في الاعتبار عند اختيار تقنية جمع للمريض البرمائي. سوف تقدم هذه المقالة تقنية جمع الدم من الفك العلوي للوجه أو الوريد العضلي الجلدي من الضفادع كما هو موضح في الأصل من قبل فورزان وآخرون9.
السيطرة على المبيض هو الأنواع الخاصة، وعلى هذا النحو، ينبغي اختبار بروتوكولات هرمون وتحسينها. بخلاف الموسمية وما يرتبط بها من بيئة هرمون تعميم, السيطرة المبيض قد تكون أيضا مرتبطة ارتباطا وثيقا إلى العمر, الوقت الذي يقضيه في الأسر والتعرض لإدارة هرمون المتكررة, التي لا توجد معلومات قليلة في الأدب11 , 12 , 13.أصبح تنفيذ العلاجات الهرمونية للحصول على السلوكيات الإنجابية، وإنتاج الجاميت، والنضج وoviposition نهجا أبلغ على نطاق واسع لحل المشاكل الإنجابية الشائعة المرتبطة الأسر4، 8،14،15،16. لأن آليات التحكم في التكاثر في الفقاريات يتم الحفاظ عليها بشكل كبير، وهناك عدد من الهرمونات، الببتيدات العصبية والأدوية المتاحة تجاريا المستخدمة علاجيا في المجموعات التصنيفية الأخرى التي يمكن أيضا أن تستخدم بشكل موثوق في عدد من الأنواع البرمائية(الجدول 1). Gonadotropin الإفراج عن هرمون (GnRH) وgonadotropin القرنية البشرية (hCG) (أو الاختلافات منها، أي PMSG وeCG)17،18، إما بشكل فردي أو في تركيبة ، وقد استخدمت على نطاق واسع في البرمائيات الأسير برامج تربية بما في ذلك: جبل روكي الجنوبي بوريال(Anaxyrus boreas boreas)4,19,20; العلجوم, [دسكي] [غوفر] ضفدع, [رنا] [سفوسا] ([لنغهورن] [إت ل.], [أونبوبّد])7; ال [غلف كوست] [وتردوغ], [نكتوروس] [ويري]20; وايومنغ العلجوم, Anaxyrus باكستري18; ال [بولّفروغ], [رنا] [كتّسبينا]21; العلجوم الأمريكي, Anaxyrus أمريكانوس22; ضفدع العشب, [لمنوديستر] [تسمنينس]23; [كوكي], [إلووثيرودلس] [كوكي]24; [إكسنبوس], [إكسنبوس] [لفيس]25; [غنثر] [لوادلت], [بسّدووبرين] [غينثري]26; ال [ليوبارد] شماليّة ضفدع, [ليثوبيتس] [ببينس]; الأرجنتيني القرن الضفدع ، سيراتوفاريس المزخرفة ، و ضفدع كرانويل القرن ، C. كرانويلى ، و والضفدع الأرضي الأمريكي، أودونوسفيرينوس أمريكانوس27؛ وسلامندر النار (سالاماندرا)228. هرمونات الستيرويد, مثل البروجسترون (P4), يتم الإبلاغ عنها أقل شيوعا ولكن أظهرت فعالية جيدة في الحصول على الإباضة وoviposition في بعض الأنواع من anurans16,18,29. البروستاجلاندين (وخاصة البروستاجلاندين 2-ألفا (PGF2α))تشارك في الإباضة جنبا إلى جنب مع الكورتيكوستيرويدات30،31،32،34 وتصل إلى مستويات عالية خلال المرحلة التمهيدية31.
في الدراسات المختبرية، PGF2α هو محفز قوي للإباضة31، بينما في الجسم الحي يمكن أن تحفز oviposition من البيض المحتجز في رنا muscosa4،30،32. مقتطفات الغدة النخامية هي أيضا محفزات فعالة من الإباضة15,16,34; ومع ذلك، فإن المخاوف المحيطة بالأمن البيولوجي وإمكانية انتقال الأمراض غالبا ً ما تكون رادعاً لمستعمرات تربية الأسرى عند النظر في هذا النهج35.
الجزء الأخير من هذه المقالة تفاصيل الإجراءات الجراحية ويوفر نهج بديلة لتوسيع دراسات المبيض أو المساعدة في حل الأمراض التناسلية. يتم إجراء استئصال المبيضات الأكثر شيوعا في البرمائيات للحصول على البويضات للبحوث الجنينية. ومع ذلك، فإنه يمكن أيضا أن توفر علاجا للبيض الاحتفاظ بها عندما تفشل خيارات أخرى. على الرغم من أن هذا الإجراء هو الغازية، والتي تتطلب التخدير الكامل والشقوق لفضح كتل البيض، فإنه لا يتطلب القتل الرحيم. وعلاوة على ذلك، بعد استئصال المبيض الجزئي، يمكن للالحيوانات جعل الشفاءالكامل والاستمرار في أن تكون نشطة الإنجابية بعد الجراحة 8،36.
البروتوكولات المذكورة أدناه الخطوط العريضة للأساليب الغازية وغير الغازية لمراقبة المبيض والرصد في أنورانو وCaudates. وتشمل الأنواع المحددة التي تم اختيارها لتوضيح التقنيات في Anurans R. الغشاء المخاطي وX. laevis. Necturus maculosus, N. beyeri, N. alabamensis, و A. mexicanum تشمل الأنواع المستخدمة لوصف تقنيات مماثلة في Caudates.
Protocol
Representative Results
Discussion
وتوفر المناولة المباشرة والمراقبة البصرية والتدابير المورفومترية تقنيات غير غازية وهي أول معايير تقييم لتحديد المرحلة الإنجابية للإناث. ومع ذلك، تظهر هذه الدراسة أن المبيضين الجاذبين لا يمكن دائما أن يتم التعرف عليها بشكل موثوق عن طريق الجس. اعتمادا على الأنواع، يمكن في بعض الأحيان الكشف عن المبيضين الجاذبية بصريا من خلال شبه شفافة (الشكل13A،B) أو الجلد شفافة تماما على الجانب البطني من الحيوان (الشكل13C). الإناث التي أكملت oviposition يمكن أن تظهر تغييرات واضحة على مظهرها بالمقارنة مع الإناث gravid (على سبيل المثال، الجلد فضفاضوفقدان ما يصل إلى 30٪ من كتلة الجسم، الشكل 13D). أثناء التكاثر، سيعرض الذكور والإناث بعض السلوكيات التي توفر معلومات حول القرب من الإباضة وأوفيست. في حالة R. muscosa مؤشرات على أن أنثى قريبة من oviposition تبدأ مع دخول الإناث handstands.
تطبيق تكنولوجيا الموجات فوق الصوتية على Anurans وCaudates يسمح بتشخيص وجود أو غياب البيض وما إذا كان يرتبط oviposition مع الإفراج الكامل أو الجزئي من البيض المتقدمة. وهكذا، توفر هذه الطريقة تقييمًا أكثر اكتمالًا ودقة للحالة الإنجابية دون أن تقتصر على تحديد حالة الجاذبية/غير الجاذبة من خلال تقنية التصور التي تختلف باختلاف البشرة في البطن، أو اتساق البشرة بين الأنواع البرمائية المختلفة. يمكن إجراء الموجات فوق الصوتية بسهولة نسبية ومع القليل من الإجهاد على الحيوانات (الشكل5 والشكل 13)ويمكن استخدامها لتوصيف الدورات الإنجابية وتحديد الحالة الإنجابية4. ومن الأهمية بمكان أن تصبح على دراية بالأنواع؛ ومع ذلك، أظهرت هذه الدراسة أن Necturus و R. muscosa تشترك في علامات النمو المشتركة في أنماطالإنجاب مما يسمح لتصنيف مماثل للمرحلة الإنجابية (الشكل5). من خلال هذه التكنولوجيا هناك الآن أدلة على أن تطوير البيض عالية في النكتورو الأسير وR. muscosa وأن كلا النوعين تتبع نمط موسمي. على الرغم من أن أسباب هذه الظواهر غير معروفة وتتطلب المزيد من التحقيق، دون استخدام الموجات فوق الصوتية، فإن العديد من مجالات خلل المبيض، مثل الاحتفاظ بالبيض وoviposition الجزئي، قد ذهبت دون الكشف عنها. وسوف تستخدم التطبيقات المستقبلية لهذه التقنية لتحديد ما إذا كان ينبغي اختيار الإناث للتربية في أي سنة معينة وما إذا كان أوفيستس قد اكتمل.
بروتوكول جمع الدم، مثل تلك المقدمة في R. muscosa، وهو فعال على حد سواء ويسبب الحد الأدنى من الضائقة للحيواني ، هو الأمثل لدراسة ملامح هرمون في الميورانين الأسير والبرية اشتعلت (Calatayud ، غير منشورة). حتى الآن, لا توجد معلومات بشأن ملامح هرمون السنوي من الأسير R. muscosa, وبالتالي, لا توجد معرفة حول كيفية تأثير الهرمونات على صحتهم والإنجاب. وعلاوة على ذلك، مع وجود أدلة على أن الإناث من هذا النوع قد لا يكون مربي السنوي، والتنميط الهرموني سيكون وسيلة أخرى لتتبع دورات المبيض. جنبا إلى جنب مع الموجات فوق الصوتية, تحليل هرمون قد يؤدي إلى التنبؤ بشكل أفضل ما الإناث سوف تكون جاهزة لoviposition. وعلاوة على ذلك، تم في العام الماضي توثيق حالتين من الجنس بين الجنسين في السكان الأسيرر ر. موسكوسا. وبالإضافة إلى ذلك، لوحظ تطور منصات الإبهام على بعض الإناث المؤسسات الأكبر سنا. أسباب هذا حاليا قيد التحقيق ولكن النتائج الأولية تشير إلى أنه قد تتصل التغيرات في مستويات هرمون تستوستيرون (كالاتايود, غير منشورة). الدورات الهرمونية المميزة في الإناث من مختلف الأعمار سوف تساعدنا على فهم لماذا الإناث قد تتطور الخصائص الجنسية الثانوية المرتبطة بالذكور وما إذا كان هذا هو المتوقع في السكان المسنين.
وقد استخدم العلاج الهرموني الخارجي للتغلب على الاختلالات الإنجابية التي كثيرا ما تواجه في البرمائيات الأسيرة. ومع ذلك، بالنسبة لكل من السكان R. muscosa وNecturus في هذه الدراسة، لم يتم الكشف عن أي اختلافات كبيرة في oviposition بين الإناث المعالجة بالهرمونات والسيطرة على مدى فترة 2 و 5 سنوات من الزمن، على التوالي. وهذا قد يشير إلى أن بروتوكول إدارة هرمون, جرعات, فتيلة ومزيج هرمون المستخدمة لم تكن كافية للأنواع. تحليل أدق للتاريخ الإنجابي الفردي للإناث يشير إلى R. muscosa قد لا تواجه تربية سنوية، والتي يمكن أن تفسر أيضا عدم وجود تأثير هرموني لوحظ في الإناث المعالجة. لأن نسبة معينة من الإناث تخطي باستمرار تربية كل عام، وفهم التاريخ الطبيعي للأنواع يمكن أن تساعد في تحديد ما إذا كانت هناك حاجة للهرمونات الخارجية ومتى أنها قد تكون أكثر فعالية. ويمكن تطبيق الإجراءات المبينة في هذه المادة على عدد من الأنواع (الجدول 1) وهي للأنواع التي تتراوح بين 5 ز و 150 غرام؛ قد تتطلب الحيوانات الأكبر محاقن مختلفة ومقاييس إبرة. يختلف موقع الحقن مع بعض الهرمونات التي تتطلب داخل العضلات، داخل العضد، تحت الجلد أوالحقن داخل tradermal (الشكل 7).
الجراحة لغرض استئصال المبيض هي طريقة شائعة تستخدم في مختلف الأنواع البرمائية للحصول على البويضات للدراسات الجنينية. ويمكن أيضا أن يشار إلى استئصال المبيض للسيطرة على السكان والمسائل الطبية مثل الاحتفاظ بالبيض. في حالة استئصال المبيض الجزئي الذي يتم فيه حصاد البويضات لأغراض البحث، يجب أن تضمن الجراحة بقاء الحيوان إنجابياً. وقد أظهرت إدارة PGF2α بعض الوعد في حل الاحتفاظ البيض في الإناث R. muscosa. في العديد من الأفراد، أثار PGF2α ترسب كامل من البيض الاحتفاظ بها سابقا ولكن في حالات أخرى حدث ترسب جزئي فقط تتطلب تجريد يدوي لإزالة جميع البيض. في حين أن PGF2α قد تكون بمثابة بديل لعملية جراحية للاحتفاظ بالبيض في R. muscosa, قدرتها على علاج الظروف المرضية المماثلة في البرمائيات الأخرى سوف تتطلب التحقق من صحة الأنواع الخاصة. عندما يتم تكليف التدخل الجراحي للمريض أنوران أو Caudate، فمن الضروري لضمان مستوى كافية من التخدير قبل إجراء الشقوق. وثمة حاجة إلى مهارات مراقبة ذكية لتقييم ورصد الاستجابات المعيارية التعريفية والمتعلقة بالتعافي على النحو المبين في هذه الدراسة لكل من التدابير الضريبية. مرة واحدة على دراية التشريح محددة، ونهج جراحي مناسب، وhemostasis، والتلاعب الأنسجة لطيف وإدارة كافية بعد الجراحة، والعمليات الجراحية الإنجابية لا تشكل عقبات ساحقة.
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
تود ناتالي كالاتايود أن تشكر الدكتورة باربرا دورانت على التدريب والمساعدة في مجال الموجات فوق الصوتية وعلى شركة Exploradora de Immuebles, S.A. (EISA) على منحها مساعدات مالية لموقفي المشارك في البحث في SDZG. شكرا ً للدكتورة كايلي كان على تعليقاتها على المخطوطة وكذلك على المراجعين الرسميين (أياً كانوا). بفضل جوناثان دين زميلنا الصيفي 2018، معهد حديقة الحيوان في سان دييغو لبحوث الحفظ لتوفير الصور (الشكل1A،B). تعرب مونيكا ستوبس عن تقديرها لجمعية حدائق الحيوان وصندوق الهبات لحفظ أحواض السمك وصندوق ديزني العالمي لحفظ الطبيعة على تقديم الدعم المالي لإنشاء مجموعة السكان النيكتوروس الأسيرة. وبالإضافة إلى ذلك، تلقى الدعم أيضا من خلال تبرعات خاصة من المحامية البرمائية السيدة إيريس دي لا موت. شكرا، يتم تقديم الشكر إلى السيد كريستوفر ديشانت والدكتور مارك كامبل لمساهمتهم الكبيرة في البحث.
Materials
| GE logiq Book XP and 8C-RS probe 4e10 MHz GE Medical Systems | GE medical systems | GE logiq Book XP | Ultrasound |
| Aloka 500 7.5mHz linear or IBEX multi-frequency (10-6mHz) micro-convex | GE medical systems | 8C-RS (10 MHz) | Ultrasound probe |
| BD disposable U-100 insulin syringe (28-29 G needle) | Mettler Electronics Corp CA | Sonigel | Ultrasound gel (water soluble, salt-free) |
| Hormone | |||
| Gonadotropin releasing hormone | BACHEM | 4012028 | synonym: [Des-Gly10, D-Ala6, Pro-NHEt9]-GnRH acetate abbreviation: GnRH |
| Lutenizing hormone releasing hormone | BACHEM, Sigma-Aldrich | 4033013; L1898 | synonym: Pyr-His-Trp-Ser-Tyr-Gly-Leu-Arg-Pro-Gly-NH2 acetate salt; [D-Ala6}-LHRH acetate salt hydrate abbreviation: LHRH |
| Human chorionic gonadotropin | BACHEM, Sigma-Aldrich | 4030270, 4018894; C1063, CG5, CG10 | synonym: Chorionic gonadotropin-β (109-145)(109-119); Choriogonin, HCG (2,500IU, 5,000IU, 10,000IU) abbreviation: hCG |
| Prostaglandin 2α | Sigma-Aldrich | P40424; | synonym: (5Z,9α,11α,13E,15S)-9,11,15-Trihydroxyprosta-5,13-dienoic acid tris salt, PGF2α−Tris; abbreviation: PGF2α |
| Follicle-stimulating hormone | Sigma-Aldrich | F4021, F8174 | synonym: porcine, sheep abbreviation: FSH |
| Progesterone | Sigma-Aldrich | 46665; P7556 | synonym: Vetranal; P4 water soluble abbreviation: P4 |
| Pituitary extract | na | synonym: Check papers for amphibian species derivation abbreviation: PE |
|
| Pregnant Mare Serum Gonadotropin | Prospec; Lee Biosolutions; Sigma-Aldrich | HOR-272; 493-10; 9002-70-4 | synonym: Pregnant Mare Serum Gonadotropin abbreviation: PMSG |
| Metaclopromide | Sigma-Aldrich | M0763 | synonym: 4-Amino-5-chloro-N-[2-(diethylamino)ethyl]-2-methoxybenzamide, Methoxychloroprocainamide abbreviation: MET |
| Lucrin | BACHEM; Sigma-Aldrich | 4033014; L0399 | synonym: Leuprorelin acetate abbreviation: Lucrin |
| Lutalyse | Pfizer | synonym: PGF2α – Dinoprost tromethamine abbreviation: Lut |
|
| Pimozide | Sigma-Aldrich | P1793 | synonym: 1-[1-[4,4-bis(4-Fluorophenyl)butyl]-4-piperidinyl]-1,3-dihydro-2H-benzimidazol-2-one abbreviation: PZ |
| Amphiplex | see above | synonym: Gonadotropin releasing hormone + metoclopramide abbreviation: GnRH + MET |
|
| Ovopel | Ovopel | na | synonym: GnRHa + dopamine receptor antagonist (administered 1 pellet/ kg) abbreviation: Ovo |
| Ovaprim | Pentair aquatic eco-systems | Ova10 | synonym: Salmon gonadotropin + domperidone abbreviation: Ova |
| Domperidone | Sigma-Aldrich | D122 | synonym: 4-(5-Chloro-2-oxo-1-benzimidazolinyl)-1-[3-(2-oxobenzimidazolinyl)propyl]piperidine abbreviation: DOM |
References
- Conde, D. A., Flesness, N., Colchero, F., Jones, O. R., Scheuerlein, A. An emerging role of zoos to conserve biodiversity. Science. 331 (6023), 1390-1391 (2011).
- Conde, D. A., et al. Zoos through the Lens of the IUCN Red List: A Global Metapopulation Approach to Support Conservation Breeding Programs. PLoS ONE. 8 (12), e80311 (2013).
- Morrison, C., Hero, J. -. M. Geographic variation in life-history characteristics of amphibians: a review. Journal of Animal Ecology. 72 (2), 270-279 (2003).
- Calatayud, N. E., Stoops, M., Durrant, B. S. Ovarian control and monitoring in amphibians. Theriogenology. , 70-81 (2018).
- National Research Council. . Institutional Animal Care and Use Committee Guidebook. , (2010).
- Peig, J., Green, A. J. New perspectives for estimating body condition from mass/length data: the scaled mass index as an alternative method. Oikos. 118 (12), 1883-1891 (2009).
- Graham, K. M., Langhorne, C. J., Vance, C. K., Willard, S. T., Kouba, A. J. Ultrasound imaging improves hormone therapy strategies for induction of ovulation and in vitro fertilization in the endangered dusky gopher frog (Lithobates sevosa). Conservation Physiology. 6 (1), coy020 (2018).
- Wright, K. M., Whitaker, B. R. . Amphibian Medicine and Captive Husbandry. , (2001).
- Forzán, M. J., Vanderstichel, R. V., Ogbuah, C. T., Barta, J. R., Smith, T. G. Blood collection from the facial (maxillary)/musculo-cutaneous vein in true frogs (family Ranidae). Journal of Wildlife Diseases. 48 (1), 176-180 (2012).
- Allender, M. C., Fry, M. M. Amphibian hematology. Veterinary Clinics of North America: Exotic Animal Practice. 11 (3), 463-480 (2008).
- Green, S. L., Parker, J., Davis, C., Bouley, D. M. Ovarian hyperstimulation syndrome in gonadotropin-treated laboratory South African clawed frogs (Xenopus laevis). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 46 (3), 64-67 (2007).
- Jorgensen, C. B. External and internal control of patterns of feeding, growth and gonadal function in a temperate zone anuran, the toad Bufo bufo. Journal of Zoology. 210 (2), 211-241 (1986).
- Jørgensen, C. B. Growth and reproduction. Environmental Physiology of the Amphibians. , 439-466 (1992).
- Vu, M., Trudeau, V. L. Neuroendocrine control of spawning in amphibians and its practical applications. General and Comparative Endocrinology. 234, 28-39 (2016).
- Clulow, J., Trudeau, V. L., Kouba, A. J. Amphibian declines in the twenty-first century: why we need assisted reproductive technologies. Reproductive Sciences in Animal Conservation. , 275-316 (2014).
- Kouba, A., et al. Assisted reproductive technologies (ART) for amphibians. Amphibian Husbandry Resource Guide. 2, 60-118 (2012).
- Clulow, J., et al. Optimisation of an oviposition protocol employing human chorionic and pregnant mare serum gonadotropins in the Barred Frog Mixophyes fasciolatus (Myobatrachidae). Reproductive Biology and Endocrinology. 10 (1), 60 (2012).
- Browne, R. K., Seratt, J., Vance, C., Kouba, A. Hormonal priming, induction of ovulation and in-vitro fertilization of the endangered Wyoming toad (Bufo baxteri). Reproductive Biology and Endocrinology. 4 (1), 34 (2006).
- Calatayud, N. E., et al. A hormone priming regimen and hibernation affect oviposition in the boreal toad (Anaxyrus boreas boreas). Theriogenology. 84 (4), 600-607 (2015).
- Stoops, M. A., Campbell, M. K., Dechant, C. J. Successful captive breeding of Necturus beyeri through manipulation of environmental cues and exogenous hormone administration: a model for endangered Necturus. Herpetological Review. 45 (2), 251-256 (2014).
- Mc Creery, B. R., Licht, P. Induced ovulation and changes in pituitary responsiveness to continuous infusion of gonadotropin-releasing hormone during the ovarian cycle in the bullfrog, Rana catesbeiana. Biology of Reproduction. 29 (4), 863-871 (1983).
- Johnson, C. J., Vance, C. K., Roth, T. L., Kouba, A. J. Oviposition and ultrasound monitoring of American toads (Bufo americanus) treated with exogenous hormones. Proceedings of the American Association of Zoo Veterinarians. 299, 301 (2002).
- Herbert, D. . Studies of assisted reproduction in the spotted grass frog Limnodynastes tasmaniensis: ovulation, early development and microinjection (ICSI). , (2004).
- Michael, S. F., Buckley, C., Toro, E., Estrada, A. R., Vincent, S. Induced ovulation and egg deposition in the direct developing anuran Eleutherodactylus coqui. Reproductive Biology and Endocrinology. 2, 6 (2004).
- Ogawa, A., Dake, J., Iwashina, Y., Tokumoto, T. Induction of ovulation in Xenopus without hCG injection: the effect of adding steroids into the aquatic environment. Reproductive Biology and Endocrinology. 9 (1), 11 (2011).
- Silla, A. J. Effects of luteinizing hormone-releasing hormone and arginine-vasotocin on the sperm-release response of Günther’s Toadlet, Pseudophryne guentheri. Reproductive Biology and Endocrinology. 8 (1), 139 (2010).
- Trudeau, V. L., et al. Hormonal induction of spawning in 4 species of frogs by coinjection with a gonadotropin-releasing hormone agonist and a dopamine antagonist. Reproductive Biology and Endocrinology. 8 (1), 36 (2010).
- Krause, E. T., von Engelhardt, N., Steinfartz, S., Trosien, R., Caspers, B. A. Ultrasonography as a minimally invasive method to assess pregnancy in the fire salamanders (Salamandra salamandra). Salamandra. 49, 211-214 (2013).
- Browne, R. K., Li, H., Seratt, J., Kouba, A. Progesterone improves the number and quality of hormone induced Fowler toad (Bufo fowleri) oocytes. Reproductive Biology and Endocrinology. 4 (1), 3 (2006).
- Bramucci, M., et al. Different modulation of steroidogenesis and prostaglandin production in frog ovary in vitro by ACE and ANG II. American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 273 (6), R2089-R2096 (1997).
- Gobbetti, A., Zerani, M. Possible roles for prostaglandins E2 and F2α in seasonal changes in ovarian steroidogenesis in the frog (Rana esculenta). Journal of Reproduction and Fertility. 98 (1), 27-32 (1993).
- Gobbetti, A., Zerani, M., Carnevali, O., Botte, V. Prostaglandin F2α in female water frog, Rana esculenta: Plasma levels during the annual cycle and effects of exogenous PGF2α on circulating sex hormones. General and Comparative Endocrinology. 80 (2), 175-180 (1990).
- Guillette, L. J., Dubois, D. H., Cree, A. Prostaglandins, oviducal function, and parturient behavior in nonmammalian vertebrates. American Journal of Physiology-Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 260 (5), R854-R861 (1991).
- Clulow, J., Mahony, M., Browne, R., Pomering, M., Clark, A., Campbell, A. Applications of assisted reproductive technologies (ART) to endangered anuran amphibians. Declines and Disappearances of Australian Frogs’. , 219-225 (1999).
- Browne, R. K., Wolfram, K., García, G., Bagaturov, M. F., Pereboom, Z. Zoo-based amphibian research and conservation breeding programs. Amphibian and Reptile Conservation. 5 (3), 1-14 (2011).
- Chai, N. Surgery in amphibians. Veterinary Clinics: Exotic Animal Practice. 19 (1), 77-95 (2016).
- Gentz, E. J. Medicine and surgery of amphibians. Ilar Journal. 48 (3), 255-259 (2007).
- Snyder, W. E., Trudeau, V. L., Loskutoff, N. M. 168 a noninvasive, transdermal absorption approach for exogenous hormone induction of spawning in the northern cricket frog, Acris crepitans: a model for small, endangered amphibians. Reproduction, Fertility and Development. 25 (1), 232-233 (2012).
- Kouba, A. J., et al. Emerging trends for biobanking amphibian genetic resources: the hope, reality and challenges for the next decade. Biological Conservation. 164, 10-21 (2013).
- Michael, S. F., Buckley, C., Toro, E., Estrada, A. R., Vincent, S. Induced ovulation and egg deposition in the direct developing anuran Eleutherodactylus coqui. Reproductive Biology and Endocrinology. 2 (1), 6 (2004).
- Fort, D. J. . Frog reproduction and development study 2000 rana pipiens reproduction and development study. , (2003).
- Clulow, J., et al. Differential success in obtaining gametes between male and female Australian temperate frogs by hormonal review: A Review. General and Comparative Endocrinology. 265, 141-148 (2018).
- Trottier, T. M., Armstrong, J. B. Diploid gynogenesis in the Mexican axolotl. Genetics. 83 (4), 783-792 (1976).
- Marcec, R. M. . Development of assisted reproductive technologies for endangered North American salamanders. , (2016).
- Wright, M. L. Melatonin, diel rhythms, and metamorphosis in anuran amphibians. General and Comparative Endocrinology. 4, (2002).
