Мы демонстрируем метод для депонирования бактериальных биопленок Escherichia coli в произвольные пространственные закономерности с высоким разрешением с помощью оптических стимуляции генетически закодированный адгезию поверхности конструкции.
Пространственная структура и кучность играют важную роль в бактериальные биопленки. Здесь мы показываем, доступный метод для культивирования кишечной биопленки в произвольных пространственных моделей с высоким пространственным разрешением. Техника использует конструкцию генетически закодированный optogenetic — pDawn-Ag43 — это пары биопленки в E. coli оптических стимуляции, синий свет. Мы подробно процесс преобразования кишечной палочки с pDawn-Ag43, подготовка необходимых оптических set-up и протокол для культивирования узорной биоплёнки с помощью pDawn-Ag43 бактерий. Используя этот протокол, можно узорной биоплёнки с пространственным разрешением ниже 25 мкм на различных поверхностях и сред, включая замкнутые камеры, не требуя микротехнологий, чистота-услуги или подготовка поверхности. Метод является удобным и подходящим для использования в приложениях, которые исследовать эффект биопленки структуры, обеспечивая настраиваемый контроль над биопленки кучность. Более широком смысле он также имеет потенциальные применения биоматериалов, образования и био Арт.
Биоплёнки являются придает поверхности сообществ микробов и хорошо известны за их сильные структуры функция сцепления. Пространственной геометрии и кучность биоплёнки играют важную роль в общей функции сообщества (и наоборот)1. Малая длина шкалы участвует в структуре биопленки — порядка десятков мкм2— сделать настраиваемый и удобный контроль над биопленки, кучность является сложной проблемой. Здесь мы показываем, протокол, который позволяет для биоплёнки быть точно рисунком в произвольной геометрии, основанный на оптические освещения.
Представленные здесь протокол использует pDawn-Ag433, optogenetic конструкцию, что пары биопленки бактерий E. coli оптическое освещение, ведя выражение Ag43 (принимает ген, ответственный за поверхности сцепления и биопленки формирование) под контролем pDawn4 (транскрипционный анализ регулятор, контролируемых оптическое освещение). Этот метод удобно использовать и может биоплёнки шаблон на различные поверхности средах, в том числе закрытых (прозрачный) культуры камер. По сравнению с существующими методами осаждения ячейки, например осаждения на основе капли5 или поверхности prepatterning/лечения6, pDawn-Ag43 не требует микротехнологий или чистый номер Услуги и не требуют материалов, помимо тех, которые доступно для типичного микробиологической лаборатории. Она способна узор с пространственным разрешением ниже 25 мкм, приближается к пространственные размеры microcolonies естественно существующих биоплёнки2. В целом этот метод обеспечивает возможность манипулировать биопленки структура, которая затем открывает много возможностей для изучения микробиоценоза в бактериальных сообществ7. Кроме того узорные биоплёнки может предоставить удобную платформу для инженер полезные биоматериалов8,9. В этой статье мы обсуждаем основной протокол, необходимые для структурирования биоплёнки с помощью pDawn-Ag43 и устранения потенциальных изменений и устранения неполадок, связанных с методом.
С учетом необходимости исследовательских инструментов, которые позволяют биопленки структуры управления мы представили это easy-to-use протокол для структурирования бактериальных биопленок, с помощью конструкции optogenetic pDawn-Ag43. С этой техникой кишечной биопленки можно оптически узором на различные поверхности среды, включая замкнутые камеры, с пространственным разрешением ниже 25 мкм.
В целом, этот протокол может быть разбита на четыре основных раздела: (1 Подготовка бактерий, pDawn-Ag43, (2 Подготовка оптического и аппаратные настройки культуры, (3 шаги предварительной освещения рост бактерий и (4 после освещения полоскания и изображений.
Важной частью раздела 1 является успешное превращение плазмида pDawn-Ag43 в штамм E. coli интерес. Этому способствует изоляции высокого качества очищенные плазмид и создания компетентных клеток высокого качества для преобразования (Таблица 1, устранение неполадок).
Важной частью раздела 2 является оптимизация проектора set-up так что освещенности корректируется до 50 мкВт/см2 на длине волны 460 Нм, и проектор правильно ориентирован на высоте образца биопленки. Обратите внимание, что в настоящем Протоколе, мы описываем set-up Перевернутый освещения, где проектора излучает свет снизу, вверх к биопленки образца. Преимущество этой настройки является, что свет только нужно пройти через нижнюю часть культуры блюдо до достижения поверхности образования биопленки. Подсветка сверху означает, что свет будет путешествовать через жидких сред над поверхностью биопленки, который, в ходе роста, получает облачно с планктонных клеток. Помимо этих проблем, это также важно для сведения к минимуму рассеянного света в оптической системы как можно больше, например, путем покрытия до отражающих поверхностей на интерьер инкубатора — это помогает получить резким рисунком биопленки. На соответствующую записку острее биопленки шаблоны можно также получить с помощью фотошаблонов для управления освещением патронирования (3D рисунок, Рисунок 4 c). Общие вопросы, требующие устранения неполадок включают вопросы надежности проектора при более высоких температурах (например, 37 ° C), которые могут быть уменьшиты инкубации биопленки роста при более низких температурах (например, 30 ° C), а также компьютерного программного обеспечения, Причины обновления операционной системы или синий свет, фильтрации во время ночи роста (Таблица 1). Важно также отметить, что, в зависимости от модели проектора и инкубатор используется, это также возможно, что тепла от проектора приведет к более высокой температуры внутренних чем инкубатора установить температуру, которая может потребоваться исправить.
Важной частью раздела 3 является получение надежные и повторяемые бактериальные образцы, прежде чем они индуцированных освещения. По этой причине мы рекомендуем вам получить клоновых колоний бактерий, pDawn-Ag43, мелирование их вне на плите агар и затем с помощью жидкого культуры шаги для обеспечения того, чтобы бактерии освещенные индуцированной в конце фазы экспоненциального роста в повторяемые образом.
Наконец важнейшей частью раздела 4 является тщательно, но также осторожно, смыть планктонных клеток, оставшихся после биопленки, кучность протокола; Таким образом рекомендуется выполнить несколько шагов нежно полоскания с PBS.
По сравнению с существующими методами для клеток патронирования5,6, оптические биопленки, кучность на основе pDawn-Ag43 имеет достаточно низкий барьер входа для использования, в том, что она не требует микротехнологий, чистота помещений, комплекс Химия, или подготовка поверхности, пока еще в состоянии картины с высоким разрешением (25 мкм), обычно связанные с микротехнологий методов. Этот метод расширяет предыдущие работы на бактериальных фотолитографии для контроля ген выражение17. В настоящее время pDawn-Ag43 плазмиды ограничивается E. coli, как он использует на основе МПУЕ происхождения репликации, но pDawn и Ag43 являются совместимыми в других (грамотрицательные) бактериальных видов. Генетические методы доступны для потенциально представляя свет регулируемых биопленки различных видов бактерий и представляет возможные направления будущих исследований. Другим потенциальным ограничением методики является, что она работает путем увеличения биопленки в штаммов с слабой родной биопленки (например, MG1655 E. coli). Однако штаммы с сильным родной биопленки имеют форму биоплёнки независимо от условий освещения, исключающие узорной биопленки, с помощью pDawn-Ag43 как описано здесь; еще optogenetic методы по-прежнему может оказаться применимым в регулировании биопленки. Мы отмечаем, что в других контекстах, альтернативные методы структурирования биопленки могут быть доступны, например через оптические c ди GMP модуляции18.
В целом, pDawn-Ag43 на основе структурирования будет подходящим для использования в приложениях, которые исследовать эффект биопленки структуры на функция1 и, таким образом, могли бы воспользоваться перестраиваемый контроль над биопленки патронирования — особенно актуально Пример для выделения является изучение микробной экологии в биопленке2. Будущие направления деятельности включают в себя рисунком биоматериалов8,9 и/или структурированные бактериальных сообществ. Альтернативные приложения этот доступ протокола также включают в себя био искусства19, учитывая ясно эстетический потенциал, а также науки о жизни формального и неформального образования20,21,22. С образовательной точки зрения, протокол, описанные здесь сочетает в себе многие соответствующие методы (бактериальной культуры, преобразование, оптика/Оптогенетика) и также модульно удлиняемым (например, включать микрофлюидика).
The authors have nothing to disclose.
Авторы благодарят D. стекла, H. Ким, N. Cira, A. Choksi, S. Раджан и б. ключи за их полезные предложения и в Spormann лабораторию для доступа к их конфокального микроскопа. Кроме того авторы признают поддержки от Стэнфорда био-X Bowes и Сенти PGS стипендии, Национальный институт здравоохранения (R21-Ай-139941) и американского общества рака (RSG-14-177-01).
DH5alpha/pDawn-Ag43 | Addgene | 107742 | DH5alpha cloning strain hosting pDawn-Ag43 plasmid – plasmid needs to be moved to E. coli strain of interest prior to use |
MG1655 E. coli | Coli Genetic Stock Center – Yale University | CGSC #6300 | MG1655 was used as E. coli strain of interest in this paper's representative results |
RFP expression plasmid | iGEM biobricks | J04450-pSB4K5bb | Many options exist to obtain fluorescent bacteria – if using plasmid, ensure backbone does not conflict with colE1 ori of pDawn-Ag43 |
Plasmid miniprep kit | Qiagen | 27104 | |
LB broth powder | Affymetrix | 75852 | Add 20 g/L to water, autoclave, add 50 μg/mL spectinomycin to get sterile LB+spec |
LB agar powder | Affymetrix | 75851 | Add 35 g/L to water, autoclave, add 50 μg/mL spectinomycin, pour into petri dishes to get sterile LB+spec plates |
Petri dishes | Fisherbrand | 431760 | |
Spectinomycin hydrochloride pentahydrate | abcam | ab141968 | Make 1000x stock 50mg/mL in water, filter sterilize and dilute into media as needed |
Glycerol | Sigma-Aldrich | G5516 | Mix at 1:1 ratio with water, sterilize by autoclave or filter to obtain 50% glycerol |
M63 media salts 5X solution | Bio-world | 705729 | Add cas-amino acids, glucose and MgSO4, bring to 1X salts concentration by adding sterile water |
Casamino acids | Amresco | J851 | Make 20% stock in water, filter sterilize and add to M63 as supplement (final concentration 0.1%) |
D-glucose | Sigma-Aldrich | G8270 | Make 20% stock in water, filter sterilize and add to M63 as supplement (final concentration 0.2%) |
Magnesium sulfate | Sigma-Aldrich | M7506 | Make 1 M stock in water, autoclave and add to M63 as supplement (final concentration 1 mM) |
Crystal violet | Acros organics | 212120250 | Dilute to 0.1% in water prior to use |
Self-hardening mounting media (Shandon immumount) | Thermo Scientific | 9990402 | Use to preserve samples over long term for fluorescence imaging |
Phosphate buffered saline (PBS) solution | Gibco | 10010023 | Can also use PBS prepared from powder / tablets |
6 well plate | Fisherbrand | 351146 | Used as biofilm culture dish for representative results |
PDMS kit | Dow | SYLGARD 184 | Can be used to make enclosed microchamber cavities using soft lithography |
1 mL syringe | BD syringe | 309659 | For use with liquid handling with enclosed microchambers |
Blunt tip needle | CML supply | 901-23-050 | Attaches to 1 mL syringe |
Lab tape | Fisherbrand | 15-901 | Use to attach culture chamber to incubator ceiling |
Bacterial incubator | Sheldon Manufacturing | SMI6 | Ensure interior height of incubator is tall enough to focus projector at the ceiling |
Portable projector | Ivation | IV-PJ-PRO-4-1 | Many portable projector models exist, pDawn-Ag43 has been tested with multiple models including LED/laser based, with blue light channel ranging from 450-460nm central wavelength |
Optical breadboard base | ThorLabs | MSB6 | Base for optical setup to hold projector – many other setups possible, just need to hold projector firmly at bottom of incubator, pointing upwards |
Optical post | ThorLabs | TR8 | 2 posts needed – one to be set up vertically extending out of breadboard base, one horizontally attached via right-angle clamp |
Optical post right-angle clamp | ThorLabs | RA90 | Connects vertical and horizontal posts |
Mounting base | ThorLabs | BA1S | Connects optical breadboard base and vertical post |
1/4"-20 screw | ThorLabs | SH25S050 | Attaches vertical post to mounting base, mounting base to breadboard base |
1/4"-20 set-screw | ThorLabs | SS25E63D | Connects horizontal post to projector via tripod screw-hole |
Optical power meter | Newport | 840 | Use with power meter detector to measure projector illumination intensity – many power meter models exist, using one that has extendable detector will facilitate measurement |
Optical power meter detector | Newport | 818-UV | Connects to power meter (above) – UV detector not strictly necessary as blue light is within visible range |
Adjustable ND filter | K&F Concept | SKU0689 | Adjustable (by rotating) neutral density filter – place above projector aperture |
Presentation-projector software | Microsoft | Powerpoint | Any software that allows drawing / presentation will suffice |
CAD software | Autodesk | AutoCAD | Used for designing photomasks, many mask printing services are compatible with AutoCAD files |
Film photomask | Fineline Imaging | n/a | Many photomask printer services exist for high resolution (>30000DPI) film photomask printing |