Aquí, presentamos un protocolo para la producción y purificación de proteínas que están marcados con isótopos estables y posterior caracterización de las interacciones de la proteína-proteína usando la espectroscopia de resonancia magnética Nuclear (RMN) y microescala Los experimentos de Thermophoresis (MST).
Proteínas filamentosas como vimentina proporcionan organización dentro de las células proporcionando un andamio estructural con los sitios que se unen a las proteínas que contienen plakin repite. Aquí, un protocolo para la detección y medición de tales interacciones se describe usando el dominio repetición del plakin globulares de envoplakin y la bobina helicoidal de vimentina. Esto proporciona una base para determinar si una proteína une vimentin (o proteínas filamentosas similares) y para la medida de la afinidad de la interacción. La proteína globular del interés marcada con 15N y tituló con vimentina proteína en solución. Un espectro de RMN bidimensional es adquirido para detectar las interacciones mediante la observación de cambios en forma de pico o cambios químicos y para dilucidar los efectos de las condiciones de la solución incluyendo los niveles de sal, que influyen en la estructura cuaternaria de la vimentina. Si la proteína de interés une el ligando filamentoso, se cuantifica la interacción vinculante por MST con las proteínas purificadas. El enfoque es una manera sencilla para determinar si una proteína de interés une a un filamento y para evaluar cómo alteraciones, tales como condiciones de la solución, o las mutaciones afectan la interacción.
Las interacciones entre las proteínas permiten la formación de máquinas moleculares que crear orden dentro de las células. Las interacciones individuales son a menudo débiles pero generalmente contribuyen a complejos polivalentes que pueden ser cooperativos y dinámicamente reglamentados. Ensayos sensibles que ofrecen resolución atómica e información cuantitativa acerca de tales interacciones complejas se necesitan deducir mecanismos y diseñar intervenciones como droga-como de moléculas. Espectroscopia de RMN es un método eficiente para la obtención de información sobre las interacciones entre proteínas y también se utiliza para la detección rápida de ligandos, incluyendo aquellos que se unen débilmente1. Los métodos de NMR se pueden categorizar en los que se observan proteínas o ligando observar. Este manuscrito utiliza el enfoque anterior en el que se adquiere un espectro de un isótopo estable etiquetado como proteína que es comparativamente pequeña (generalmente debajo de 20 kDa) y se titula el ligando sin etiquetar. Esto permitirá el etiquetado residuos implicados en la interacción que se asignará en casos favorables. Una vez que las formas complejas, hay cambios en los ambientes químicos de residuos de interacción que se manifiestan como cambios en la cambio química y forma de sus señales NMR. La magnitud de tales cambios se correlaciona con el grado de participación de estos grupos en la interacción. Perturbaciones de la cambio química (CSP) se pueden medir comparando una serie de espectros de RMN de la proteína en la ausencia y la presencia de cantidades variables del ligand. Para ligandos más grandes o complejas interacciones, el cambio en forma de pico o intensidad puede medirse para deducir las interacciones.
El experimento 2D más comun utilizado para la detección de las interacciones ligando es 15N heteronuclear quantum sola correlación (HSQC) experimento2. Esto requiere que una proteína uniformemente etiquetarse con 15N, que normalmente se consigue expresando como versiones etiquetadas con afinidad en cultivos bacterianos e. coli cultivadas en 15medios enriquecidos en N. Vinculante es evidente cuando se superponen los espectros HSQC reunidos durante la valoración, revelando cambios de pico para un subconjunto de los residuos implicados en la formación de complejos. La interacción puede ocurrir en el régimen de intercambio rápido donde las señales de estado libre y saturado de ligando colapsan en una población promediada pico. Por otra parte, en el caso de intercambio lento entre los Estados, ambas señales se observan con integrales que representan sus cantidades relativas. Mientras que el análisis de NMR lineshape pueden utilizarse para estimar las afinidades de enlace en algunos casos, métodos como el MST también han demostrado ser convenientes y proporcionan validación cruzada de las interacciones genuinas.
El ejemplo es de dos proteínas que se encuentran dentro de desmosomas. Median las ensambladuras entre las superficies de la célula y citoesqueleto y median interacciones multivalentes entre máquinas de adherencia de célula y los filamentos intermedios para mantener la integridad de la piel y los tejidos del corazón y soportar de las fuerzas de cizalla. Enfermedades pueden causar cuando desmosomal proteínas vimentina como desmoplaquina son comprometidas por mutaciones o autoanticuerpos, llevando a la desestabilización de las ensambladuras de la célula, y por lo tanto, sus interacciones son de importancia crítica3. La base estructural de ligando por desmosomal proteínas se caracteriza por espectroscopia de RMN, mientras que la interacción puede ser cuantificada por el MST. En este documento los métodos fueron utilizados para caracterizar las interacciones entre los dominios repetición plakin (PRDs) que a menudo están presentes como sistemas tándem que ofrecen canales básicos y el vimentin, un filamento intermedio que interactúa a través de una superficie ácida ofrece su helicoidal paquete4. Estos complejos se forman en la membrana celular donde ancla para filamentos intermedios del citoesqueleto de la célula a los desmosomas que unen a las células adyacentes, formando así una red de lazos adhesivos que irradia a lo largo de un tejido.
2D 15experimento NMR resuelto N es uno de los más utilizados métodos para mostrar cómo dos moléculas interactúan. Es el método más rica en información que permite que las señales de ambos socios continuamente monitorizada durante un experimento de titulación en estado de solución. Aunque típicamente cualitativo en el caso de grandes complejos, el método puede también utilizarse en casos favorables para medir las afinidades de enlace donde se pueden rastrear señales NMR en espectros de alta resolución. Donde hacen las asignaciones pueden ser convenientemente, como en el caso de muchas proteínas bajo 20 KD de tamaño, los sitios de Unión pueden también asignarse. Ensayos complementarios como MST proporcionan información cuantitativa sobre interacciones en solución y requieren menos proteína en Estados sin etiqueta. Comparación de datos de enlace mutante es útil para proporcionar controles para asegurar que las interacciones que se evidencia por la ampliación de la línea de NMR son genuinas y no artefactos de, por ejemplo, cambios de agregación o la viscosidad.
Expresión de la proteína
Agilizar el proceso de expresión reduce la cantidad de producción de proteína intensiva de mano de obra. Parte de este proceso de optimización consiste en la identificación de una cepa apropiada de e. coli para la expresión recombinante de la proteína. Preferencia de cepa depende de elementos como la naturaleza del vector en uso y, más específicamente, la máxima estabilidad de la proteína recombinante expresada7. El riesgo de degradación de la proteína heteróloga por endógeno e. coli pueden reducirse por el uso de proteasas proteasas deficiente e. coli como la cepa BL21. Para los genes que contienen codones raros, se puede preferir una cepa como RIPL BL21-CodonPlus (DE3). Esta variedad combina el carácter deficiente de la proteasa de la cepa BL21 con copias adicionales de endógenas de codón raro tRNAs para arginina, isoleucina, prolina y leucina. Alternativamente, codones raros que pueden comprometer la sobreexpresión pueden evitarse ordenando una construcción optimizada de codón de una fuente comercial. Muchas cepas de e. coli están disponibles para la expresión de genes recombinantes, cada uno optimizado para la elusión de un problema particular en la expresión7. En el caso de este estudio, la cepa deficiente BL21(DE3) de proteasa estándar produce cantidades suficientes de proteína soluble para la posterior purificación y análisis.
Purificación de proteínas
El protocolo de purificación de una proteína dada es a menudo único en el sentido que cada proteína sigue siendo estable y soluble en diferentes condiciones tales como temperatura, concentración de sales o pH. La eficacia global de purificación mediante cromatografía de afinidad también es sensible a la concentración de especies liberador como imidazol en varios pasos durante el proceso de purificación. En este trabajo, las condiciones de amortiguamiento crítico para IMAC fueron pH para el E-PRD, imidazol concentración y para la VimRod. Un pH de 7.5 fue necesario para evitar la precipitación del PRD E después de elución inicial de la columna IMAC. Para la purificación de la IMAC de VimRod, aumentando la concentración de imidazol de 30 a 50 mM durante la etapa de lavado de columna fue encontrado para tener una mejora sustancial en la pureza de las fracciones elución final. La etapa de elución, aumentando la concentración de imidazol desde 250 hasta 350 m m también se han encontrado para mejorar el rendimiento de la elución final. Intentos iniciales a fin de eluir proteínas usando imidazol 250 mM llevaron a elución incompleta de VimRod según lo revelado por una tira de imidazol de 1 M final de la columna (datos no mostrados). Aumento de la concentración de imidazol hasta 350 m m para la elución fue suficiente para recuperar todo de la proteína enlazada a la columna. S puede servir a un propósito dual porque actúa como un paso de pulido para la purificación de la proteína mientras que simultáneamente realiza cambio de buffer. Cambio de buffer es un paso crítico para el análisis subsecuente de la Unión ya que elimina el imidazólico utilizado a fin de eluir proteínas etiquetadas His6. También sirve como una oportunidad para cambiar las condiciones tales como concentración de sal o pH, que puede afectar la eficacia de ciertas técnicas de aguas abajo o ensayos. Proteína de cambio térmico (PTS) puede utilizarse para identificar reservas óptimo para ensayos de aguas abajo, especialmente para aquellos que requieren proteínas estables para períodos prolongados de tiempo a temperatura ambiente8,9.
Análisis de enlace
Proteína que recién preparada es fundamental para los ensayos de Unión exacta, aunque congelado proteínas también pueden usarse siempre y cuando los resultados son comparados. Proteínas filamentosas como vimentina multimerize de una sal y pH dependiente, y por lo tanto la solución condicionan la necesidad de ser optimizado y el estado oligomérico estimada por un método como SEC10,11, dispersión de luz dinámica 12 o Ultracentrifugación analítica13,14,15. Espectroscopia de RMN es ideal para la medición de las interacciones ligando de pequeñas proteínas a resolución atómica. Sin embargo, cuando una proteína interactúa con la molécula más grande, sobreviene de secado más lento, y esto resulta en la pérdida de las señales, que pueden confirmar vinculante aunque no necesariamente permiten la asignación de sitios, que también requiere asignación de por lo menos de Unión columna vertebral resonancias. En este escenario, los experimentos NMR no permiten identificación del sitio de interacción. Por lo tanto sitio dirigido mutagénesis se aplica para identificar los residuos críticos necesarios para el enlace. Por lo tanto, estos mutantes no exhiben pérdida de señal. En el presente Protocolo, una forma mutante con una substitución en la posición 1914 conserva la intensidad de pico en la presencia de VimRod y confirma, por tanto, la interrupción de la interacción de E-PRD y VimRod. Asignación de las resonancias de columna vertebral y sidechain añadiría valor a este enfoque, particularmente como se ha resuelto la estructura de la E gratis-PRD por cristalografía de rayos x4. Futuras aplicaciones de la RMN incluyen la caracterización de las interacciones complejas entre las moléculas más grandes y se beneficiará de ultra alta imanes de campo y el uso de otros grupos observables como 13C-etiquetados y trifluoro metil grupos como reporteros.
MST tiene un número de ventajas para el estudio de las interacciones de enlace16. Los socios de la Unión son libres en solución y no inmovilizados. Análisis de la calidad de las muestras está incorporado en el software con control de calidad informes de agregación, adsorción en los capilares o etiquetado fluorescente insuficiente de la molécula objetivo. Se emplean pequeñas cantidades de la blanco, la concentración de la etiqueta meta es generalmente entre 20-50 nM en un 10-20 μL volumen de reacción. Este protocolo utiliza volúmenes de reacción muy pequeños (10 μL) para maximizar la concentración de ligando que se logra en las valoraciones que permite interacciones de enlace débil ser caracterizado. Esto requiere un pipeteo preciso y cuidado para evitar la introducción de burbujas durante la mezcla aún. Una mezcla adecuada es fundamental para la medición precisa y consistente de la fluorescencia a lo largo de la serie de diluciones seriadas. La cantidad de Tween-20 en los experimentos de MST se redujo de un estándar de 0.05% al 0.015% para disminuir la tendencia a crear burbujas y mejorar la mezcla.
El tinte rojo-Tris-NTA proporciona una manera rápida, fácil y conveniente de fluorescencia etiqueta cualquier proteína que tiene una etiqueta. El etiquetado es con eficacia completo en sólo 30 minutos y está muy apretado para que ningún procedimiento de eliminación de tinte es necesario. No hay modificaciones a residuos del aminoácido en la proteína que puede alterar las propiedades de enlace de ligando. Una advertencia es que solamente la proteína a ser etiquetados como debe tener una etiqueta de His6. Esto requiere la ruptura de la etiqueta de la proteína ligando, E-PRD y la eliminación de la etiqueta y uncleaved E-PRD con un segundo paso de columna IMAC. Si es posible, se preparara la proteína ligando sin el uso de una etiqueta. Por otra parte, las proteínas pueden ser covalente etiquetados como con un fluoróforo a amina a residuos de lisina o tiol a residuos de cisteína. Sin embargo, se debe tener cuidado al uso de estos sistemas desde el accesorio covalente de un fluoróforo puede afectar las interacciones de enlace electrostático o polar basándose en residuos de lisina o cisteína. La cuantificación de atar afinidad entre el VimRod y el E-PRD por MST era inusualmente sensible a la concentración de la sal. Este problema fue mitigado por diálisis inicialmente el objetivo y el ligando en el mismo lote de tampón de ensayo. Sin embargo, saturación de la curva de enlace de MST no podría ser alcanzado cuando se realiza el ensayo de MST en presencia de 150 mM de NaCl debido al comportamiento complejo de VimRod. Se obtuvieron datos confiables, completados una vez que la concentración de NaCl se redujo a 10 mM que permite el cálculo exacto de KD. Por lo tanto, se recomienda cuidadosa optimización de las condiciones de la solución y comparación con ensayos complementarios para lograr resultados robustos. Además, el MST puede utilizarse para cuantificar la dependencia sal de una determinada interacción, cuantificar las propiedades estequiométricas de las interacciones entre proteínas, plegamiento de la proteína del monitor y sonda en enzima cinética17.
The authors have nothing to disclose.
Este proyecto ha sido apoyado por NSERC RGPIN-2018-04994, programa de innovación Campus Alberta (RCP-12-002 C) e Instituto de investigación de Alberta del prión / Alberta Innova Bio Solutions (201600018), otorgado a M.O y genoma Canadá y Fundación de Canadá para Becas de innovación otorgados al centro de Metabolómica de innovación (TMIC) y NANUC.
Monolith NT.115, includes control and analysis software | NanoTemper Technologies | MO-G008 | Instrument for microscal thermophoresis |
His-Tag Labeling Kit RED-Tris-NTA | NanoTemper Technologies | MO-L008 | RED-tris-NTA dye for MST |
Standard capillaries | NanoTemper Technologies | MO-K022 | capillaries for MST |
HisTrap HP, 5 mL | GE Healthcare | 17524801 | IMAC column |
HisPur Ni-NTA resin, 100 mL | Thermo Fisher Scientific | 88222 | IMAC resin |
HiLoad 16/600 Superdex 75 pg | GE Healthcare | 28989333 | SEC column |
TEV protease | Sigma Aldrich | T4455 | cleavage of his tag from E-PRD |
BL21(DE3) Competent E. coli | New England Biolabs | C2527H | cells for protein expression |
cOmplete Protease Inhibitor Cocktail Tablets EDTA-Free | Sigma Aldrich | 11873580001 | protease inhibitors for protein purification by IMAC |
TCEP, Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochloride | Sigma Aldrich | C4706 | reducing agent for protein purification |
Reagents (HEPES, NaCl, etc) | Sigma Aldrich | various | Preparation of media and buffers |
Ammonium chloride (15N, 99%) | Cambridge Isotope Laboratories | NLM-467 | isotope labelling for NMR |
D2O, Deuterium Oxide (D, 99.8%) | Cambridge Isotope Laboratories | DLM-2259 | NMR sample preparation |
DSS, Sodium 2,2-dimethyl-2-silapentane-5-sulfonate-D6 (D,98%) | Cambridge Isotope Laboratories | DLM-8206 | reference for NMR |
Precision 5 mm NMR Tubes, 7” long | SJM/Deuterotubes | BOROECO-5-7 | NMR tubes |
NMR spectrometer (14.1 Tesla) | Bruker | acquisition of NMR data | |
TCI 5mm z-PFG cryogenic probe | Bruker | acquisition of NMR data | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
Bruker TopSpin 4.0.1 | Bruker | processing of NMR data | |
MO.Control | NanoTemper Technologies | included with Monlith NT.115 | |
MO.Affinity Analysis | NanoTemper Technologies | included with Monlith NT.115 |