Summary

Induktion und Bewertung von Inzucht Kreuze mit Ant, Vollenhovia Emeryi

Published: October 05, 2018
doi:

Summary

In diesem Protokoll werden Methoden für die Durchführung von Inzucht Kreuze und zur Beurteilung des Erfolgs eines dieser Kreuze, die Ameise Vollenhovia Emeryibeschrieben. Diese Protokolle sind wichtig für Experimente zur Verständnis der genetischen Grundlagen von Geschlecht Bestimmung Systeme in Hymenoptera.

Abstract

Die genetischen und molekularen Komponenten der Geschlechtsbestimmung Kaskade haben ausgiebig in die Honigbiene, Apis Mellifera, hymenopteran Modellorganismus untersucht. Jedoch ist wenig bekannt über die Bestimmung des Geschlechts Mechanismen in anderen nicht-Modell hymenopteran Taxa, wie Ameisen gefunden. Aufgrund der Komplexität der Lebenszyklen, die in hymenopteran Spezies entwickelt haben, ist es schwer zu warten und experimentelle Kreuzungen zwischen diesen Organismen im Labor durchzuführen. Hier beschreiben wir die Methoden für die Durchführung von Inzucht Kreuze und für die Beurteilung des Erfolgs eines diese Kreuze in Ant Vollenhovia Emeryi. Inzucht im Labor mit V. Emeryiinduzieren, ist relativ einfach, wegen der einzigartigen Biologie der Arten. Insbesondere dieser Art produziert androgenetischen männlichen und weiblichen geschlüpften ausstellen Flügel Polymorphismus, die Identifikation der Phänotypen im genetischen Kreuze vereinfacht. Darüber hinaus ist die Bewertung des Erfolgs der Inzucht einfach, Männchen kontinuierlich hergestellt werden können, durch Inzucht Kreuze, während normale Männchen nur während einer genau definierten Paarungszeit im Feld angezeigt. Unser Protokoll ermöglichen den Einsatz V. Emeryi als Modell der genetischen und Molekulare Grundlagen der Sex-Bestimmung-System in Ameisenarten zu untersuchen.

Introduction

Eusozialen Hautflügler Taxa, wie Ameisen und Bienen, haben eine diploide geschlechtermittlung System entwickelt, bei denen Personen, die an einem oder mehreren komplementären Geschlechtsbestimmung heterozygot sind (CSD) Loci Weibchen, während diejenigen geworden, die Homo- oder Hemizygous sind werden Sie Männchen (Abb. 1A)1.

Genetischen und molekulare Komponenten der Geschlecht-Bestimmung-Kaskade beteiligt sind gut in die Honigbiene, Apis Mellifera, ein hymenopteran Modell Organismus2,3,4untersucht worden. Vergleichende Genomik Untersuchungen deuten darauf hin, dass Ameisen und Bienen viele vermeintliche homologe in dem Geschlecht Bestimmung Weg, wie das erste Geschlecht Bestimmung gen, Csd5teilen. Beweise für die funktionelle Erhaltung dieser Homologen fehlt allerdings noch bei Ameisen.

Um dieses Problem zu beheben, Inzucht-Linien müssen entwickelt werden, da sie wichtig für genetische und molekulare Studien sind. Es ist jedoch schwer zu warten und Durchführung von experimentellen Kreuzungen zwischen diesen Organismen im Labor aufgrund der Komplexität der Lebenszyklen, die entwickelt haben.

Hier verwenden wir Vollenhovia Emeryi als Modell um zu untersuchen, die genetischen und Molekulare Grundlagen der Sex-Bestimmung-System in Ameisen6,7. Die Inzucht-Linien dieser Art wurden bisher für Verknüpfung Zuordnung der quantitative Trait Loci (QTL) für Züge, die im Zusammenhang mit Geschlechtsbestimmung zum ersten Mal in Ameisen6entwickelt. Darüber hinaus wurde die molekulare Geschlechtsbestimmung Kaskade untersuchten7. Diese Sorte hat eine ungewöhnliche Reproduktionssystems entwickelt, die Gynogenesis und Androgenese (Abbildung 1B)8,9beschäftigt. Die meisten neuen Königinnen und Männchen klonal aus der mütterlichen und väterlichen Genome, bzw. entstehen. Darüber hinaus sind Arbeitnehmer und einige Königinnen sexuell produziert8. Diese Reproduktion-System ist besonders gut geeignet für genetische Studien, weil die Inzucht Kreuze mit sexuell hergestellt Königinnen produziert und Männchen eine klassische Rückkreuzung genetisch entspricht sind. Da sich sexuell erzeugte Königinnen morphologisch von Königinnen produziert von mütterlichen Genome10 (Abbildung 1B), wird Durchführung und Auswertung von Inzucht Kreuze stark vereinfacht mit dieser Methode.

In diesem Artikel, die Methoden für die Einrichtung von Labor Kolonien für Kreuzung Test kreuzt Anwendung von Inzucht mit voll-Sib Paare und Bewertung des Erfolgs der diese Kreuze mit Genotypisierung der Kolonie Mitglieder und sezieren von männlichen Nachkommen Genitalien sind in V. Emeryibeschrieben.

Unabhängig von der Reproduktion System beschäftigt ist die Anwendung von Inzucht Kreuze oft wichtiger erster Schritt in jeder Untersuchung Sex Bestimmung Systeme in der Hautflügler. Zum Beispiel zeigt das fast völlige Fehlen von diploiden Männchen nach 10 Generationen von voll-Sib Paarung im Labor in Cardiocondyla Obscurior, Abwesenheit von CSD Locus11. Es ist möglich, die Anzahl der CSD Loci aus dem Verhältnis der Männer in Inzucht Kreuze6,12,13produziert Vorhersagen.

Protocol

1. Feld Erfassung und Pflege der V. Emeryi Kolonien im Labor Hinweis: Nester der V. Emeryi findet man in faulenden Baumstämmen und gefallenen verfallenden Baum Branchesin sekundären Wäldern in ganz Japan. Diese Sorte zeigt zwei Arten von Kolonien, d. h. (1) Kolonien produzieren nur Long-winged Königinnen und (2) Kolonien produziert vor allem kurze geflügelten Königinnen neben kleinen Anzahl von langen geflügelten Königinnen8,<…

Representative Results

Mit F0 bis F1 Generationen Mikrosatelliten-Analyse ergab, dass Inzucht Kreuze erfolgreich produziert wurden (Abbildung 4)6. Infolgedessen wurden begatteten Königinnen von Inzucht Kreuze, innerhalb eines Monats nach der experimentellen Kreuzung Kolonien erhalten. Eine Viertel (27,1 ± 8,91 % SD) aller Nachkommen (F2) von der Inzucht Kreuze war männlich, während der Rest weiblich (Arbeitnehmer und eine…

Discussion

Dieser Artikel beschreibt die Protokolle, die verwendet werden können, zu induzieren Inzucht Kreuze und das Auftreten von Inzucht in die Ameise V. Emeryizu bewerten. In den Experimenten ist Genotypisierung der Individuen für Kreuze verwendet muss sichergestellt werden, dass Inzucht Kreuze erfolgreich waren. Allerdings ist die Wirksamkeit dieser Kreuzung Tests deutlich wie diploide Männchen das ganze Jahr produziert werden können, während haploide Männchen nur im Herbst im Feld und Labor-6…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken Herrn Taku Shimada, der Delegierte des AntRoom, Tokio, Japan, für die uns mit seinem Foto von V. Emeryi geschlüpften. Dieses Projekt wurde von der Japan Society for Promotion of Science (JSPS) Research Fellowship für junge Wissenschaftler (16J00011) und Grant in Aid for Young Scientists (B)(16K18626). finanziert.

Materials

Plaster powder N/A N/A Any brand can be used
Charcoal, Activated, Powder Wako 033-02117,037-02115
Slide glass N/A N/A Any brand can be used
Dry Cricket diet N/A N/A Any brand can be used
Brown shuger  N/A N/A Any brand can be used
Styrene Square-Shaped Case AS ONE Any size Size varies by number of ants
Incbator Any brand can be used
Aluminum block bath Dry thermo unit DTU-1B TAITEC 0014035-000
1.5mL Hyper Microtube,Clear, Round bottom WATSON 131-715CS
Ethanol (99.5) Wako 054-07225
Stereoscopic microscope N/A N/A Any brand can be used
Forseps DUMONT 0108-5-PO
Chelex 100 sodium form SIGMA 11139-85-8
Phosphate Buffer Saline (PBS) Tablets, pH7.4 TaKaRa T9181
Paraformaldehyde Wako 162-16065
-Cellstain- DAPI solution Dojindo Molecular Technologies D523
VECTASHIELD Hard・Set Mounting Medium with TRITC-Phalloidin Vector Laboratories H-1600
ABI 3100xl Genetic Analyzer Applied Biosystems Directly contact the constructor formore informations.
Confocal laser scanning microscope Leica TCS SP8 Leica Directly contact the constructor formore informations.
HC PL APO CS2 20x/0.75 IMM Leica Directly contact the constructor formore informations.
HC PL APO CS2 63x/1.20 WATER Leica Directly contact the constructor formore informations.
Leica HyDTM Leica Directly contact the constructor formore informations.
Leica Application Suite X (LAS X) Leica Directly contact the constructor formore informations.

References

  1. Mable, B. K., Otto, S. P. The evolution of life cycles with haploid and diploid phases. BioEssays. 20 (6), 453-462 (1998).
  2. Beye, M., Hasselmann, M., Fondrk, M. K., Page, R. E., Omholt, S. W. The gene csd is the primary signal for sexual development in the honeybee and encodes an SR-type protein. Cell. 114 (4), 419-429 (2003).
  3. Hasselmann, M., et al. Evidence for the evolutionary nascence of a novel sex determination pathway in honeybees. Nature. 454 (7203), 519-522 (2008).
  4. Nissen, I., Müller, M., Beye, M. The Am-tra2 gene is an essential regulator of female splice regulation at two levels of the sex determination hierarchy of the honeybee. Genetics. 192 (3), 1015-1026 (2012).
  5. Schmieder, S., Colinet, D., Poirié, M. Tracing back the nascence of a new sex-determination pathway to the ancestor of bees and ants. Nature Communications. 3, 895 (2012).
  6. Miyakawa, M. O., Mikheyev, A. S. QTL Mapping of Sex Determination Loci Supports an Ancient Pathway in Ants and Honey Bees. PLoS Genetics. 11 (11), (2015).
  7. Miyakawa, M. O., Tsuchida, K., Miyakawa, H. The doublesex gene integrates multi-locus complementary sex determination signals in the Japanese ant, Vollenhovia emeryi. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 94, 42-49 (2018).
  8. Ohkawara, K., Nakayama, M., Satoh, A., Trindl, A., Heinze, J. Clonal reproduction and genetic caste differences in a queen-polymorphic ant, Vollenhovia emeryi. Biology letters. 2 (3), 359-363 (2006).
  9. Kobayashi, K., Hasegawa, E., Ohkawara, K. Clonal reproduction by males of the ant Vollenhovia emeryi (Wheeler). Entomological Science. 11 (2), 167-172 (2008).
  10. Okamoto, M., Kobayashi, K., Hasegawa, E., Ohkawara, K. Sexual and asexual reproduction of queens in a myrmicine ant, Vollenhovia emeryi (Hymenoptera: Formicidae). Myrmecological News. 21, 13-17 (2015).
  11. Schrempf, A., Aron, S., Heinze, J. Sex determination and inbreeding depression in an ant with regular sib-mating. Heredity. 97 (1), 75-80 (2006).
  12. De Boer, J. G., Ode, P. J., Rendahl, A. K., Vet, L. E. M., Whitfield, J. B., Heimpel, G. E. Experimental support for Multiple-locus complementary sex determination in the parasitoid Cotesia vestalis. Genetics. 180 (3), 1525-1535 (2008).
  13. Paladino, L. C., et al. Complementary sex determination in the parasitic wasp Diachasmimorpha longicaudata. PLoS ONE. 10 (3), (2015).
  14. Kobayashi, K., Hasegawa, E., Ohkawara, K. No gene flow between wing forms and clonal reproduction by males in the long-winged form of the ant Vollenhovia emeryi. Insectes Sociaux. 58 (2), 163-168 (2011).
  15. Cowan, D. P., Stahlhut, J. K. Functionally reproductive diploid and haploid males in an inbreeding hymenopteran with complementary sex determination. Proceedings of the National Academy of Sciences. 101 (28), 10374-10379 (2004).
  16. Armitage, S., Boomsma, J., Baer, B. Diploid male production in a leaf-cutting ant. Ecological Entomology. 35 (2), 175-182 (2010).
  17. Krieger, M. J. B., Ross, K. G., Chang, C. W. Y., Keller, L. Frequency and origin of triploidy in the fire ant Solenopsis invicta. Heredity. 82, 142-150 (1999).
  18. Seeley, T. D., Mikheyev, A. S. Reproductive decisions by honey bee colonies: Tuning investment in male production in relation to success in energy acquisition. Insectes Sociaux. 50 (2), 134-138 (2003).
  19. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The Ants. , (1990).
  20. da Souza, D. J., Marques Ramos Ribeiro, M., Mello, A., Lino-Neto, J., Cotta Dângelo, R. A., Della Lucia, T. M. C. A laboratory observation of nuptial flight and mating behaviour of the parasite ant Acromyrmex ameliae (Hymenoptera: Formicidae). Italian Journal of Zoology. 78 (3), 405-408 (2011).
  21. Woyke, J. What happens to diploid drone larvae in a honeybee colony. Journal of Apicultural Research. 2 (2), 73-75 (1963).
  22. Schmidt, A. M., Linksvayer, T. A., Boomsma, J. J., Pedersen, J. S. No benefit in diversity? The effect of genetic variation on survival and disease resistance in a polygynous social insect. Ecological Entomology. 36 (6), 751-759 (2011).
  23. Schrempf, a., Aron, S., Heinze, J. Sex determination and inbreeding depression in an ant with regular sib-mating. Heredity. 97 (1), 75-80 (2006).

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Cite This Article
Miyakawa, M. O., Miyakawa, H. Induction and Evaluation of Inbreeding Crosses Using the Ant, Vollenhovia Emeryi. J. Vis. Exp. (140), e58521, doi:10.3791/58521 (2018).

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