Summary

Construção de uma incubadora móvel de baixo custo para o campo e uso em laboratório

Published: March 19, 2019
doi:

Summary

Este documento descreve um método para a construção de uma incubadora adaptável, baixo custo e transportável para testes microbianos de água potável. Nosso projeto é baseado em materiais amplamente disponíveis e pode operar sob uma variedade de condições de campo, enquanto continua a oferecer as vantagens dos modelos high-end de base laboratorial.

Abstract

Incubadoras são essenciais para uma gama de métodos microbianas baseados em cultura, tais como a filtração em membrana seguida de cultivo para avaliar a qualidade da água potável. No entanto, incubadoras disponíveis comercialmente são muitas vezes dispendiosos, difíceis de transportar, não flexível em termos de volume, e/ou mal adaptadas às condições locais de campo onde o acesso à eletricidade é confiável. O objetivo deste estudo foi desenvolver uma incubadora adaptável, baixo custo e transportável que pode ser construída usando componentes prontamente disponíveis. O núcleo eletrônico da incubadora foi desenvolvido pela primeira vez. Então, esses componentes foram testados sob uma variedade de condições de temperatura ambiente (3,5 ° C a 39 ° C), usando três tipos de conchas de incubadora (caixa de espuma de poliestireno, caixa do refrigerador da difícil e caixa de papelão coberta com um cobertor de sobrevivência). O núcleo eletrônico mostrou desempenho comparável a uma incubadora de laboratório padrão em termos de tempo necessário para atingir a temperatura definida, estabilidade de temperatura interna e dispersão espacial, consumo de energia e crescimento microbiano. As instalações da incubadora também eram eficazes em ambientes com temperatura moderadas e baixas (entre 3,5 ° C e 27 ° C), e em altas temperaturas (39 ° C) quando a incubadora conjunto temperatura foi maior. Este protótipo de incubadora é de baixo custo (< 300 USD) e adaptável a uma variedade de materiais e volumes. Sua estrutura desmontável torna fácil de transportar. Ele pode ser usado em ambos os laboratórios estabelecidos com a rede de energia ou em configurações remotas, alimentadas por energia solar ou uma bateria de carro. É particularmente útil como uma opção de equipamentos para laboratórios de campo em áreas com acesso limitado aos recursos para monitoramento de qualidade de água.

Introduction

Métodos baseados em cultura para a detecção de contaminantes microbianos são a estado-de-arte para análise de qualidade de água em ambos os industrializados e os países em desenvolvimento1,2. Microorganismos existem em muitos ambientes e requerem condições de temperatura diferentes para o crescimento ideal. Portanto, criar um ambiente de temperatura estável incubação é uma pré-condição para a detecção confiável de contaminantes microbianos de preocupação na água potável. De acordo com a Organização Mundial de saúde, Escherichia coli (e. coli) (ou, alternativamente, coliformes termotolerantes (TTC)) são os mais adequados indicadores de contaminação fecal em água potável3. Deteção desses organismos consiste em, por exemplo, filtragem de uma amostra de 100 mL de água através de uma membrana seguida de incubação da membrana em meios selectivos a 35-37 ° C (Escherichia coli) ou 44-45 ° C (TTC)3.

Aplicativos baseados no campo dos métodos baseados em cultura tornaram-se cada vez mais relevantes nos últimos anos. Sob o objetivo de desenvolvimento sustentável 6, alvo 6.1, os governos comprometeram-se a regularmente qualidade de relatório bacteriológico de água potável no nível nacional4. Além de tais esforços de vigilância de saúde pública, operacionais, monitoramento de infra-estrutura de água é regularmente empreendido a nível local ou regional5. Estes vigilância e monitoramento de campanhas são muitas vezes em locais remotos, onde a infra-estrutura de laboratório necessária é inadequada ou não disponível. 6 da mesma forma, os métodos baseados em cultura são amplamente utilizados no diagnóstico médico e investigação microbiológica onde clínicas locais e instituições de pesquisa podem ser impugnadas por recursos limitados e fontes de alimentação insegura7.

Nos contextos acima, incubadoras convencionais são muitas vezes insuficientes ou indisponível. Como alternativa, incubadoras de campo foram especificamente desenvolvidas para uso fora do laboratório, por exemplo, o Aquatest projeto8, Universidade de Bristol, Reino Unido; DelAgua9, Marlborough, Reino Unido; ou Aquagenx10, Universidade da Carolina do Norte, Estados Unidos. No entanto, esses dispositivos são relativamente pequenos no volume, limitando assim o número de amostras que podem ser processados simultaneamente. Incubadoras de campo no mercado também não são projetadas para operar sob muito baixa ( 40 ° C) as condições de temperatura ambiente, dificultando a sua utilização no deserto ou ambientes alpinos. Outras soluções alternativas incluem iogurte fabricação aparelhos11, cintos de corpo e de incubadoras de mudança de fase12. No entanto, tais incubadoras não convencionais podem funcionar de modo não confiável ou ser onerosa para operar11.

Assim, há uma necessidade para uma incubadora que oferece as vantagens de modelos baseados em laboratório (facilidade de uso, maior volume e precisão da temperatura) mantendo-se adequado para aplicações de campo (baixo custo, facilmente transportado e conservado, robustez para uma intervalo de temperatura ambiente, eficiência energética e fontes de alimentação resistente a intermitente) (tabela 1). O propósito do presente protocolo é detalhar o processo de fabricação de uma incubadora de baixo custo projetado para otimizar as vantagens dos modelos convencionais e baseada em campo usando material amplamente disponível.

Característica Baseado em laboratório Campo Otimizado
Projeto amigável do usuário Check X Check
Grande capacidade Check X Check
Robusta para uma ampla gama de temperaturas ambientes Check X Check
Mantém a temperatura constante Check X Check
Baixo custo X Check Check
Facilmente transportado X Check Check
Energia eficiente X Check Check
Resistente à alimentação intermitente X Check Check

Tabela 1: Características de incubadoras comercialmente disponíveis (baseado em laboratório e de campo) e a abordagem otimizada.

O protocolo de montagem a seguir especifica os materiais necessários e as etapas para a construção da incubadora. Está estruturada em quatro etapas: primeiro, a montagem da unidade de aquecimento; segunda, montagem de unidade de controle; terceira, montagem do núcleo incubadora elétrica; e quarta, montagem de incubadora. Este protocolo explica a construção do núcleo eletrônico da incubadora, que pode trabalhar com uma variedade de conchas de incubadora. Consulte a Tabela de materiais , para obter uma lista completa de todos os componentes usados no protocolo e suas especificações técnicas. O protocolo abaixo apresenta um exemplo funcional da incubadora de campo, mas a utilização flexível dos diferentes componentes é possível, desde que eles cumpram com os requisitos elétricos. Usar diferentes componentes possa influenciar o desempenho da incubadora. É aconselhável que a construção e instalação de componentes elétricos ser feito por uma pessoa qualificada no campo elétrico.

Protocol

1. unidade de aquecimento Reunir os componentes a seguir (Figura 1):Suporte de placa (280 x 250 mm) com furos de ancoragem necessárioVentilador axial (60 x 60 x 25mm); 2 xEspaçador (comprimento de 20 mm, diâmetro interno 4,25 mm (M4)); 4 xTerminal de brilho com três pinosPorca do parafuso (M4); 4 x e (M3); 1 xMáquina de lavar (M4); 8 x e (M3); 1 xParafuso (M4); 4 x e (M3); 1 x Figura 1: Componentes individuais da unidade de aquecimento.  Suporte placa, ventiladores axiais, espaçadores, terminal de brilho, parafuso porcas, anilhas e os parafusos. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Faça os furos necessários (Figura 2) para a placa de suporte para fixar os ventiladores axiais bem como o terminal de brilho (Figura 1). Figura 2: diagrama esquemático da placa de apoio. Indicações para perfurar os orifícios de fixação da placa de suporte para consertar os ventiladores axiais, bem como o terminal de brilho. As distâncias são dadas em milímetros. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Os ventiladores axiais da escora no centro da placa de apoio como mostrado na Figura 3 , com dois parafusos M4, parafusos porcas e arruelas , , por fã. Utilize os espaçadores deixar uma distância entre os fãs e a placa de suporte (Figura 3). Ancorar o terminal de brilho para a placa de suporte usando M3 parafuso, porca e arruela. Fixe os fãs de cabo. (Figura 3). Conecte os cabos do ventilador com o terminal de brilho. Conecte os cabos positivos de cada ventilador junto e os cabos negativos de cada ventilador junto (Figura 3). O sensor de velocidade não é necessário. Figura 3: ventiladores axiais fixo na placa de suporte. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Nota: As cores de cabo mencionadas correspondem os usados nas figuras. As cores de cabo podem mudar dependendo do material usado. 2. controle unidade (alimentação) Reunir os seguintes componentes:Gabinete universal (aqui 200 x 120 x 60 milímetros, mas dimensões vão depender do tamanho do conversor DC/DC e o controlador de temperatura PID)Na/interruptorConversor DC/DC, tensão de entrada de gama 9 – 36V, saída de tensão 12VControlador de temperatura PID, 35-12 V/DC tensão de funcionamentoPrensa-cabo, M12 x 15 mm, fixação compreendida entre 2-7,5 mm (ou de acordo com o cabo utilizado)Sensor de temperatura Pt100Fonte de alimentação ACNota: A incubadora pode ser conectada à rede de alimentação ou uma bateria. No caso da operação de alimentação, fonte de alimentação AC é necessário e se a unidade está exclusivamente ligada à corrente, o conversor DC/DC não é obrigatório. No caso de operação com bateria, o conversor DC/DC é altamente recomendado, e um cabo de dois fios é necessário em vez de fonte de alimentação AC. Este protocolo apresenta a versão com o conversor DC/DC e fonte de alimentação AC. Um diagrama elétrico do núcleo incubadora eléctrica é detalhado no material complementar (Figura S1). Moinho das aberturas para o controlador de temperatura PID, on/off switch e prensa-cabos no recinto com uma broca e quebra-cabeças ou instrumento equivalente (Figura 4). Figura 4: diagrama esquemático do compartimento do universal. (a) indicações para colocar o controlador de temperatura , interruptor on/off e as glândulas de cabo no recinto universal; as distâncias são dadas em milímetros. (b) vista 3D do compartimento do universal. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Conectar o conversor DC/DC para o interruptor de ligar/desligar: Conecte o cabo positivo do adaptador de energia AC para o interruptor de ligar/desligar e o cabo negativo do adaptador de energia AC para o “-Vin” do conversor DC/DC (Figura 5). Utilize um cabo para ligar o interruptor de ligar/desligar para o “+ Vin” do conversor DC/DC (Figura 5). Figura 5: montado unidade de controle Gabinete universal com conversor DC/DC conectado ao controlador de temperatura PID e interruptor on/off . Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Conecte os cabos da unidade de aquecimento para o controlador de temperatura PID como segue (Figura 6): Conecte o terminal “1” do controlador de temperatura PID para o “DC –” fio do aquecimento conexão de unidade e para o “-Vout” terminal do conversor DC/DC. Conectar-se a “DC +” fio indo para a unidade de aquecimento para o terminal “4” do controlador de temperatura PID, bem como para o terminal “2” do controlador de temperatura PID (ver ponto 3.2). Conecte o terminal “2” do controlador de temperatura PID, para o “+ Vout” terminal do conversor DC/DC. Conecte o terminal “5” do controlador de temperatura PID para o fio de “comando” para a unidade de aquecimento. (ver ponto 3.2). Conecte o sensor de temperatura para os terminais “10”, “11” e “12”.Nota: O cabo vermelho do sensor de temperatura deve ser conectado ao terminal “11” do controlador de temperatura PID. Ancorar o conversor DC/DC com fita de Velcro na parte inferior do compartimento e feche o compartimento do universal. Figura 6: cabo de conexão do conversor DC/DC com controlador de temperatura PID. Conversor DC/DC , controlador de temperatura PID , conexão a incubadora (cabo A) e conexão para sensor de temperatura (cabo B). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Nota: As funções dos terminais de controlador de temperatura PID usados são dadas na tabela 2. Controlador de temperatura PID terminal Função Terminal “1” Entrada de alimentação + Terminal “2” Alimentação de entrada- Terminal “4” Controle comum de saída contato Terminal “5” Controle saída contato normalmente aberto Tabela 2: Funções correspondentes aos terminais de controlador de temperatura PID. 3. montagem do núcleo incubadora elétrica Reunir os seguintes componentes:Unidade de aquecimento da seção 1Unidade de controle da seção 2Aquecimento de chapas, auto-adesivo, 100 x 200 mm, 12 V/20 W, 2 x Ligar os cabos de conexão da unidade de controle para a unidade de aquecimento como segue (Figura 7): Conecte o fio “DC -” da unidade de controle com um condutor de cada uma das folhas do aquecimento e o fio negativo de cada fã. Ligue o fio “DC +” vindo de unidade de controle com o cabo positivo de cada fã. Ligue o fio de “comando” da unidade de controle para os restantes dois condutores de folhas o aquecimento. Figura 7: Cabo de conexão de chapas de aquecimento com controlador de temperatura PID. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Nota: O campo preenchido incubadora elétrica núcleo da incubadora é mostrado na Figura 8. Figura 8: Núcleo elétrica de incubadora de campo concluída. Unidade de aquecimento , unidade de controle e sonda de temperatura . Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. 4. montagem da incubadora Reunir os seguintes componentes:Central elétrica de incubadoraConcha de incubadora (aqui um poliestireno caixa da espuma, mas pode ser qualquer tipo de caixa feito de material isolante)Suporte de cremalheira (aqui um metal cremalheira, mas pode ser outro material) Coloque os componentes de incubadora juntos como segue (Figura 9): Coloque a casca de incubadora de lado, para que a abertura da incubadora (porta) está localizada em um lado. Coloque a placa de suporte com a unidade de aquecimento na parte inferior do reservatório incubadora. Coloque o Carré de apoio em cima da unidade de aquecimento, deixando um espaço de um mínimo de 10 cm entre a unidade de aquecimento e o suporte de cremalheira. Coloque a sonda de temperatura sobre a grelha de apoio e fixá-lo na incubadora. Fure a porta de incubadora para permitir a entrada dos cabos (Figura 9). A incubadora Conecte a fonte de energia. Ligue a incubadora e ajustar as configurações do controlador de temperatura PID (ver Tabela S1 no material complementar para configurações detalhadas). Figura 9: incubadora de campo concluída. Abrir (à esquerda) e fechado (à direita). Unidade de aquecimento , suporte prateleira , sonda de temperatura , unidade de controle , casca de incubadora e furos para cabos no shell do incubadora (área de um círculo). Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Nota: A concha da incubadora pode ser uma caixa de qualquer tipo de material. Recomenda-se usar um material isolante, e que a caixa se fecha firmemente para evitar a dissipação do calor. O rack de apoio deve conter grandes buracos para evitar o acúmulo de calor no rack, e o material pode ser de metal ou outro (por exemplo, plástico).

Representative Results

A confiabilidade de uma incubadora de campo robusto reside na sua capacidade de atingir e manter uma temperatura ajustada sob várias condições. Para monitorar o desempenho de várias instantâneas incubadora, foram feitas as seguintes medições: tempo necessário para alcançar a temperatura programada, o efeito de abrir a porta por um minuto, o consumo de energia de mais de 24 horas de operação, estabilidade de temperatura interna superior a 24 horas de operação e a observação do crescimento de Escherichia coli . A temperatura no interior da incubadora foi medida a cada minuto com 4 dispositivos de log de temperatura colocados em posições diferentes na estrutura (suporte prateleira, parede, top, no interior de uma placa de crescimento). Considerou-se a temperatura a ser atingida quando todas as medições foram dentro de mais ou menos 2 ° C, qual é o intervalo aceitável para a incubação de e. coli. 13 O núcleo eletrônico foi testado com três tipos de conchas, usando materiais que normalmente são encontrados em muitos países: uma caixa de espuma de poliestireno (78 litros), uma caixa do refrigerador plástica dura (30 litros) e uma caixa de papelão coberta com um cobertor de sobrevivência (46 litros) ( Figura 10). Para cobrir uma gama de condições ambientais que pode ser experimentado no campo, estas instalações de incubadora foram testadas em três ambientes com temperatura: ambiente (aproximadamente 27 ° C), frio (cerca de 3,5 ° C e 7,5 ° C) e quente (cerca de 39 ° C). Medidas de desempenho foram testadas a regulação da temperatura interna a 37 ° C e 44,5 ° C. O tempo para alcançar a temperatura programada nas incubadoras foi influenciado pela temperatura ambiente e o material do reservatório incubadora. A uma temperatura ambiente de 27 ° C, instantâneas três incubadoras atingiu a temperatura ajustada (37 ° C e 44,5 ° C) em um tempo semelhante (Figura 11a e Figura 12a) e comparáveis com o desempenho de uma incubadora padrão (tabela 3). Em ambientes frios (3,5 ° C e 7,5 ° C), as incubadoras com conchas mais grossas, ou seja, a espuma de poliestireno e caixa do refrigerador, alcançaram as alvo definido as temperaturas (37 ° C e 44,5 ° C) em um tempo semelhante; cerca de quatro vezes mais do que sob uma temperatura ambiente de 27 ° C. Com seu isolamento inferior, caixa de papelão com cobertor de sobrevivência nunca plenamente alcançado as conjunto temperaturas sob condições de temperatura ambiente frio (Figura 11b e Figura 12b). Num ambiente quente (39 ° C), instantâneas três incubadora alcançou a temperatura-alvo de 44,5 ° C em menos de 10 minutos (Figura 12c). No entanto, quando a temperatura era de 37 ° C, ou seja, inferior a temperatura ambiente, nenhum das incubadoras poderia abaixar a temperatura, resultando em sobreaquecimento para todos os três incubadora conjunto ups (Figura 11 c). A temperatura ambiente e o tipo de shell incubadora influenciaram o impacto da abertura da porta de incubadora durante um minuto. A perda de calor foi maior no ambiente frio, e o tempo para recuperar as temperaturas conjunto internas era maior, com excepção da incubadora de caixa de papelão, onde as temperaturas nunca foram atingido (Figura 13b e Figura 14b). Em ambientes mais quentes, a perda de calor era limitada e o conjunto de temperaturas foram recuperadas em menos de 10 minutos (Figura 13ac e Figura 14ac). Em uma temperatura de 39 ° C e a temperatura de 37 ° C, abrindo a porta não causar nem reduzir o superaquecimento das incubadoras (Figura 13C). O consumo de energia aumentou com ambientes frios e com um aumento da temperatura. Melhor isolante conchas de incubadora (espuma de poliestireno e caixa do refrigerador) mostrou um menor consumo de energia em comparação com a incubadora de caixa de papelão. Em ambientes similares (temperatura ambiente de 27 ° C), a energia de 0.22 para 0,52 kWh/24h menos três incubadora set-ups consumidas do que o padrão incubadoras testados (tabela 3). A temperatura na incubadora manteve-se estável durante 24 horas com todos os tipos de conchas de incubadora e a temperatura ambiente testado (Figura 13 e Figura 14). Observaram-se ligeiras variações de temperatura medida em comparação com a temperatura de acordo com a posição do dispositivo de registro de temperatura na incubadora. Com exceção dos testes com a temperatura ambiente (39Â ° C) mais quente que a temperatura ajustada (37 ° C) (Figura 13C), as variações de temperatura estavam todos dentro do intervalo aceitável de 2 ° C para a incubação de Escherichia coli . Todos os testes foram realizados na presença de e. coli e materiais de medição de coliformes totais (filtro de membrana colocado na placa de crescimento). Repetições de uma amostra foram colocadas em cada instalação de incubadora e uma incubadora de padrão para comparação. Em todas as instalações e condições, o crescimento de e. coli e coliformes totais foi bem sucedida e comparável ao crescimento observado na incubadora padrão. Um resumo das configurações de incubadora e as condições de temperatura ambiente testadas com resultados são mostrados na tabela 3. Teste 1:Tempo para definir a temperatura Teste 2:Porta lateral abrindo um minuto Teste 3:Consumo de energia ao longo do período de 24 horas Teste 4:Variação de temperatura ao longo do período de 24 horas Teste 5:Crescimento de e. coli observado Temperatura ambiente Temperatura ajustada (min) Perda máxima de temperatura (° C); tempo para recuperar a temperatura ajustada (min) (kWh/24h) Temperatura máxima absoluta (° C); temperatura mínima absoluta (° C) * (Sim / não) Caixa de espuma de poliestireno 3,5 ° C 37 ° C 45 10 ° C; 17 min 0,78 37; 35,5 Sim 7,5 ° C 44,5 ° C 74 16,5 ° C; 31 min 0,89 44.5; 42.5 ND† 27 ° C 37 ° C 12 2,5 ° C; 3 min 0.28 37.5; 36,5 Sim 44,5 ° C 20 4,5 ° C; 7 min 0,43 44.5; 43,5 ND† 39 ° C 37 ° C 0 (superaquecimento) 2 ° C; 0 min (superaquecimento) 0.11 42,5; 42 Sim 44,5 ° C 7 3,5 ° C; 5 min 0.17 45; 43,5 ND† Caixa do refrigerador da difícil 3,5 ° C 37 ° C 54 8 ° C; 10 min 0.86 37.5; 36 Sim 7,5 ° C 44,5 ° C 96 12 ° C; 30 min 1,05 45; 43 ND† 27 ° C 37 ° C 13 1,5 ° C; 0 min 0,27 37.5; 36,5 Sim 44,5 ° C 25 2 ° C; 4 min 0,50 45; 43,5 ND† 39 ° C 37 ° C 0 (superaquecimento) 1 ° C; 0 min (superaquecimento) 0.11 43; 42.5 Sim 44,5 ° C 9 4 ° C; 3 min 0,19 45.5; 44.5 ND† Caixa de papelão com cobertor de sobrevivência 3,5 ° C 37 ° C Nunca alcançado (temperatura estável após 109 min) 6,5 ° C; temperatura estável após 30 min 1.24 33.5; 30.5 Sim 7,5 ° C 44,5 ° C Nunca alcançado (temperatura estável após 120 min) 8 ° C; temperatura estável depois de 20 min 1.28 36.5; 32 ND† 27 ° C 37 ° C 15 2,5 ° C; 6 min 0.42 36.5; 35,5 Sim 44,5 ° C 24 3 ° C; 8 min 0.70 44.5; 42.5 ND† 39 ° C 37 ° C 0 (superaquecimento) 1,5 ° C; 0 min (superaquecimento) 0.11 41.5; 40 Sim 44,5 ° C 9 2 ° C; 0 min 0.20 45; 43,5 ND† Incubadora de padrão 27 ° C 37 ° C 18 1 ° C; 0 min (superaquecimento) 0.64 38,5; 36 ND† 44,5 ° C 23 (superaquecimento) 2,5 ° C; 0 min 0,95 47,5; 43,5 ND† Tabela 3: Resumo dos resultados para as configurações de incubadora e condições de temperatura ambiente testado. * Teste 4: Temperaturas máximas e mínimas absolutas registrada durante os períodos estáveis, ou seja, de 10 minutos após o término de um evento de interrupção (tempo de alcançar a temperatura programada, abrindo a porta). † ND: Não há dados, a não execução do teste. Figura 10: conchas de incubadora testadas. Abrir (linha superior) e fechado (linha inferior). Espessura (à esquerda), caixa de espuma de poliestireno de 3,5 cm, dimensões exteriores 39 x 56 x 36 cm; duro plástico refrigerador caixa (médio), espessura de 2,5 cm, dimensões exteriores 32 x 41 x 47 cm; caixa de papelão (à direita) coberta com um cobertor de sobrevivência padrão 12 µm de espessura dobrada duas vezes, dimensões exteriores 30 x 42 x 37 cm. clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Figura 11: tempo de alcançar a temperatura programada (37 ° C) de sob condições de temperatura ambiente diferentes set-ups a incubadora. Performances de incubadoras com um escudo feito de uma caixa de poliestireno expandido, uma caixa dura mais fresca e uma caixa de papelão coberta com um cobertor de sobrevivência. No quarto temperatura ambiente (a), temperatura ambiente frio (b)e temperatura ambiente quente (c). As temperaturas registadas na prateleira de apoio a incubadoras. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Figura 12: tempo de alcançar a temperatura programada (44,5 ° C) de sob condições de temperatura ambiente diferentes set-ups a incubadora. Performances de incubadoras com um escudo feito de uma caixa de poliestireno expandido, uma caixa dura mais fresca e uma caixa de papelão coberta com um cobertor de sobrevivência. No quarto temperatura ambiente (a), temperatura ambiente frio (b)e temperatura ambiente quente (c). As temperaturas registadas na prateleira de apoio a incubadoras.  Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Figura 13: variações de temperatura ao longo do período de 24 horas e efeito da porta que se abriu em condições diferentes de temperatura ambiente. Temperatura de 37 ° C. Performances de incubadoras com um escudo feito de uma caixa de poliestireno expandido, uma caixa dura mais fresca e uma caixa de papelão coberta com um cobertor de sobrevivência. No quarto temperatura ambiente (a), temperatura ambiente frio (b)e temperatura ambiente quente (c). Um círculo áreas mostram as variações de temperatura devido a porta abrindo para um minuto. As temperaturas registadas na prateleira de apoio a incubadoras. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Figura 14: variações de temperatura ao longo do período de 24 horas e efeito da porta que se abriu em condições diferentes de temperatura ambiente. Temperatura de 44,5 ° C. Performances de incubadoras com um escudo feito de uma caixa de poliestireno expandido, uma caixa dura mais fresca e uma caixa de papelão coberta com um cobertor de sobrevivência. No quarto temperatura ambiente (a), temperatura ambiente frio (b)e temperatura ambiente quente (c). Um círculo áreas mostram as variações de temperatura devido a porta abrindo para um minuto. As temperaturas registadas na prateleira de apoio a incubadoras. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. S1 Figura: esquema elétrico da fiação elétrica do núcleo de incubadora. Alternativas para operação da rede e a operação da bateria são indicadas. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura. Parâmetro Valor selecionado 1 Tipo de saída de controle Controlar o Q1 / Q2 de alarme 2 Tipo do sensor conectado PT100 (-200 a 140 ° C) 3 Limite inferior selecionável para valor de setpoint 0 4 Limite máximo selecionável para valor de setpoint 50 5 Tipo de controle Aquecimento 6 ON/OFF histerese ou banda morta para controle PID 0 7 Largura de banda proporcional do processo expressado em unidades (° C se temperatura) 1 8 Tempo integral. Inércia do processo expressado em segundos 80,0 9 Tempo derivativo para PID 20,0 10 Tempo de ciclo para a saída do tempo-dosagem 10 11 Permitir ou negar a modificação do setpoint valores pelo teclado frontal Permite a modificação dos setpoints todos 12 Filtro de software. Número de leituras para calcular a comparação do valor PV-SPV 10 13 Tipo de grau ° C 14 Tipo de líquido de arrefecimento Ar Tabela S1: configurações de controlador de temperatura PID. Exibição de valores; outros parâmetros não é necessários executar a incubadora foram deixados para valores padrão.

Discussion

Sob 6.1 de objetivo de desenvolvimento sustentável, está aumentando a demanda por amostragem de qualidade de água, especialmente em áreas rurais remotas, onde as práticas de monitoramento são menos estabelecida14. A maior barreira para a implementação de qualidade de água regular teste nesses ambientes é fraco acesso aos laboratórios capazes de suportar métodos microbiana6. Este trabalho apresenta um método para uma incubadora confiável construída a partir de materiais que são relativamente barato e amplamente disponível. Os componentes elétricos são relativamente fáceis de fonte e montar, exigindo apenas limitada experiência. Além disso, o projeto do escudo de incubadora é flexível e, portanto, pode ser construído a partir de materiais disponíveis localmente. Isto é especialmente desejável para aqueles que viajam para locais remotos, desde que o espaço de bagagem não é necessário para um escudo pesado e volumoso. Dependendo o shell usado, o volume da incubadora também é adaptável e pode ser dimensionado para acomodar um tamanho de amostra específica. O set-up apresentado pode ser usado na – e fora da rede, que o torna robusto para cortes de energia ou ausência de alimentação elétrica confiável. Enquanto certas limitações de projeto foram observadas, esta configuração acima geralmente provou para ser eficaz sob uma variedade de condições de temperatura ambiente (3,5 ° C a 39 ° C).

Há várias etapas no protocolo que são críticas para a consecução de um projeto de incubadora apropriado para necessidades. A primeira é a seleção dos componentes elétricos da incubadora. Componentes alternativos podem ser escolhidos com base no preço ou a disponibilidade local. Dependendo do material selecionado e suas especificações técnicas, a incubadora pode ter alterado performances em comparação com os resultados apresentados. Outro passo crítico no protocolo é a escolha do material de shell, que deve ser feita com base na faixa esperada de temperaturas ambientes, locais de alimentação e disponibilidade de materiais. A baixas temperaturas ambientes (< 25 ° C), um reservatório construído de espuma de poliestireno ou uma caixa do refrigerador difícil recomenda-se para atingir uma temperatura de 37 ° C, a 44,5 ° C. Com base nos dados experimentais apresentados, estes conjunto ups podem ser esperados para alcançar a temperatura programada em 96-45 minutos e consumir 0,78 – 1.05 kWh/24h em ambientes frios (3,5 a 7,5 ° C). Caixa de papelão com cobertor de sobrevivência não é recomendada para uso em ambientes com temperatura inferiores desde isso montamos nunca atingiu que um estábulo conjunto temperatura durante o período de observação experimental. A temperatura ambiente moderada (27 ° C) qualquer um dos tipos concha testados são aceitáveis, com semelhante ao ligeiramente maior consumo de energia observado para o conjunto de caixa de papelão até. À temperatura ambiente mais elevada (39 ° C), os projetos da incubadora aqui apresentados eram propensos a se superaquecimento a menos que a temperatura era ainda maior (ou seja, 44,5 ° C). Portanto, tais condições que requerem um dispositivo de resfriamento ou usar em um espaço de clima controlado.

O custo da construção da incubadora aqui apresentada foi cerca de 300 USD quando materiais eram provenientes da Suíça. No entanto, estes custos podem ser consideravelmente mais baixos em locais diferentes, especialmente se as taxas para os componentes eletrônicos principais de transporte pode ser mantido a um mínimo. Modificação dos vários componentes descritos no protocolo pode reduzir ainda mais os custos. O protocolo apresentado aqui é limitado, em que ele compara apenas três tipos de materiais de casca em duas temperaturas de conjunto, bem como a verificação do crescimento microbiano para Escherichia coli só. A pesquisa futura deve testar a adequação deste projeto Incubadora sob uma gama maior de parâmetros de temperatura e uso de espécies indicadoras de microbiana adicionais (por exemplo, Enterococcus) e patógenos (por exemplo, as salmonelas, Vibrio cholerae). Futuras pesquisas devem centrar-se também no desenvolvimento de técnicas eficazes de refrigeração dentro da incubadora, que permita a sua utilização em ambientes extremamente quentes (> 40 ° C).

A nosso conhecimento, não há nenhum outra incubadora de campo conhecido que oferece a capacidade de volume adaptável e é facilmente desmontável, permanecendo transportáveis e de baixo custo. Esta alternativa inovadora para incubadoras disponíveis comercialmente atende a uma necessidade de governos e organizações com a qualidade da água e outros objectivos de testes baseados em cultura onde poucas instalações laboratoriais estão disponíveis. Quando combinadas com qualidade de água simples, equipamento de teste, esta incubadora pode ajudar os profissionais com capacidades limitadas para estabelecer laboratórios permanentes ou sazonais, a um custo razoável. Aumentando o número de laboratórios em áreas remotas, esforços para realizar a vigilância de qualidade de água regular ou alcançar acompanhamento pontual de operações do sistema vão se tornar cada vez mais viáveis.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Esta pesquisa foi apoiada pela Agência Suíça de cooperação para o desenvolvimento e o programa REACH financiados pela ajuda UK do Reino Unido departamento para desenvolvimento internacional (DFID) em benefício dos países em desenvolvimento (Áries código 201880). As opiniões expressados e informações contidas nele não são necessariamente aqueles da ou endossada por estas agências, que não podem aceitar nenhuma responsabilidade para tais opiniões ou informações, ou para qualquer confiança colocada sobre eles. Os autores também agradecer a Arnt Diener por suas contribuições para iterações anteriores do protótipo da incubadora de espuma de poliestireno.

Materials

Heating foil Thermo 2115337 Self-adhesive 10×20 cm; Operating voltage 12V; Power 20W
Axial fan Yen Sun Technology Corp. FD126025MB 6x6x2.5 cm; Operating voltage 12VDC; Power 1.44W; Max. current consumption 60mA
PID Temperature Controller Wachendorff Automation GmbH & Co. KG UR3274S PID controller 32×74 mm; Universal input for process signals, thermocouples, Pt100; Operating voltage 24 VDC; Outputs (thermostats) 10 A relay, 5 A relay, SSR, RS 485
Temperature sensor Pt100 Conrad 198466 Temperature range -100°C to 200°C; Sensor Pt100, Type FS-400P
Universal enclosure OKW Gehäuse System C2012201 Dimensions 200 x 120 x 60 mm
ON/OFF Switch SHIN CHIN INDUSTRIAL CO. R13-70A-01 Connection Type C CEE 7/16 plug 6.3 mm; Contact resistance Max 50 mΩ; Switching voltage 24 VDC; Switching current (mx.) 10A; Insulation resistance Min 100 MΩ/500 Vdc
DC/DC converter Traco Power TMDC 60-2412 Nominal voltage 24 VDC; Input voltage 9-36 VDC; Output voltage 12 VDC; Max. output current 5 A; Power 60W
AC power adapter Bicker Elektronik BET-0612 Output voltage 12 VDC; Max. output current 5 A; Input voltage 115-230 VAC
Spacer Schäfer Elektromechanik 20/4 Without thread; Thread size M4; Polystyrene; Distance 20 mm
Cable gland WISKA 10066410 M12 x 1.5 cm; clamping range 3 – 7 mm
Luster terminal Adels Contact 125312 Nominal current 25 A; Nominal Voltage 500V
Screw M4 x 50 Bossard 1579010 M4 x 50 mm
Screw nut M4 Bossard 1241478 M4
Washer M4 Bossard 1887505 M4
Screw M3 x 25 Bossard 1211099 M3 x 25 mm
Screw nut M3 Bossard 1241443 M3
Washer M3 Bossard 1887483 M3
Support plate  -   -  Insulating material (plastic or other); 28 x 25 cm

References

  1. Bain, R., et al. A summary catalogue of microbial drinking water tests for low and medium resource settings. International Journal of Environmental Research and Public Health. 9 (1609-1625), (2012).
  2. Köster, W., et al. Analytical methods for microbiological water quality testing. Assessing Microbial Safety of Drinking Water. , 237-277 (2003).
  3. World Health Organization (WHO). . Guidelines for Drinking Water Quality. , (2011).
  4. World Health Organization (WHO). . Safely Managed Drinking Water – Thematic Report on Drinking Water. , (2017).
  5. Peletz, R., Kumpel, E., Bonham, M., Rahman, Z., Khush, R. To what extent is drinking water tested in sub-Saharan Africa? A comparative analysis of regulated water quality monitoring. International Journal of Environmental Research and Public Health. 13 (3), 275 (2016).
  6. Diener, A., et al. Adaptable drinking-water laboratory unit for decentralised testing in remote and alpine regions. 40th WEDC International Conference. , 1-6 (2017).
  7. Malkin, R. A. Design of health care technologies for the developing world. Annual Review of Biomedical Engineering. 9 (1), 567-587 (2007).
  8. Rahman, Z., Khush, R., Gundry, S. Aquatest: Expanding Microbial Water Quality Testing for Drinking Water Management. Drinking Water Safety International. 1 (4), 15-17 (2010).
  9. DelAgua Water Testing Ltd. . DelAgua Portable Water Testing Kit: User Manual Version 5.0. , (2015).
  10. Aquagenx LLC. . Portable Incubator Fabrication Instructions. , (2015).
  11. Nair, J., Mathew, K., Ho, G. E. Experiences with implementing the H2S method for testing bacterial quality of drinking water in remote aboriginal communities in Australia. Water for all life: A decentralized infrastructure for a sustainable future. , (2007).
  12. Kandel, P., Kunwar, R., Lamichhane, P., Karki, S. Extent of fecal contamination of household drinking water in Nepal: Further analysis of Nepal Multiple Indicator Cluster Survey 2014. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 96 (2), 446-448 (2017).
  13. Edberg, S. C., Rice, E. W., Karlin, R. J., Allen, M. J. Escherichia coli: the best biological drinking water indicator for public health protection. Journal of Applied Microbiology. 88 (51), 1065-1165 (2000).
  14. Taylor, D. D. J., Khush, R., Peletz, R., Kumpel, E. Efficacy of microbial sampling recommendations and practices in sub-Saharan Africa. Water Research. 134, 115-125 (2018).

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Cite This Article
Schertenleib, A., Sigrist, J., Friedrich, M. N. D., Ebi, C., Hammes, F., Marks, S. J. Construction of a Low-cost Mobile Incubator for Field and Laboratory Use. J. Vis. Exp. (145), e58443, doi:10.3791/58443 (2019).

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