Aquí, presentamos un método para generar sistemas de transcripción binario tejidos específicos en Drosophila sustituyendo el primer exón de la codificación de los genes con los conductores de la transcripción. El método basado en el CRISPR/Cas9 coloca una secuencia de transactivator bajo la regulación endógena de un gen sustituyó y en consecuencia facilita la expresión de transctivator exclusivamente en los patrones espacio-temporales de gene-específico.
Sistemas de transcripción binario son poderosas herramientas genéticas utilizadas para visualizar y manipular el celular destino y expresión genética en grupos específicos de células o tejidos en organismos modelo. Estos sistemas contienen dos componentes como líneas transgénicas. Una línea de conductor expresa un activador transcripcional bajo el control de promotores específicos de tejido/potenciadores y un puertos de línea de reportero/efector un gene de la blanco se coloca aguas abajo para el sitio de unión del activador de transcripción. Animales que ambos componentes inducen la transactivación específica de tejido de una expresión del gen objetivo. Precisa expresión espaciotemporal del gen en tejidos específicos es fundamental para la interpretación objetiva de la actividad del gene de la célula. Por lo tanto, es esencial el desarrollo de un método para generar líneas exclusivo controlador de células/tejidos específicos. Aquí presentamos un método para generar sistema de expresión específicos altamente específica de tejido mediante el empleo de un “cluster regularmente Interspaced corto palindrómico Repeat/CRISPR-asociados” (CRISPR/Cas)-basado en genoma edición técnica. En este método, la endonucleasa Cas9 está dirigido por dos quimérica guía RNAs (gRNA) a sitios específicos en el primer exón de la codificación de un gen en el genoma de Drosophila para crear roturas de doble cadena (DSB). Posteriormente, usando un plásmido donante exógeno que contenga la secuencia del transactivator, la maquinaria de reparación celular autónoma permite reparación dirigida de homología (HDR) del OSD, dando por resultado la eliminación precisa y reemplazo del exón con el transactivator secuencia. El transactivator noqueó en se expresa exclusivamente en las células donde el cis-elementos regulatorios del gen sustituyó son funcionales. El protocolo paso a paso detallado presentado aquí para generar un controlador transcripcional binario expresado en Drosophila fgf/servicios-produciendo células epiteliales/neuronales puede adoptarse para cualquier expresión del gene o tejido específico.
La caja de herramientas genética para genes específicos se ha desarrollado bien en Drosophila, convirtiéndolo en uno de los mejores sistemas de modelo para investigar la función de genes implicados en una amplia variedad de procesos celulares. Sistemas de expresión binaria, como levadura Gal4/UAS (secuencia de activación upstream), primero fue adoptada para regiones reventado y gen potenciador de tejidos específicos en el modelo genético de Drosophila 1 (figura 1). Este sistema facilita el desarrollo de un gran número de técnicas tales como la regulación espacio-temporal de sobreexpresión de genes, regiones, golpe de gracia en determinados grupos de células, así como en la ablación de la célula, marca de celular, en rastreo de celulares y moleculares procesos en el embrión y los tejidos, rastreo de linaje y mosaico análisis durante el desarrollo. Un número del sistema binario de la transcripción, como la bacteriana LexALexAop (figura 1) y Q-sistema de Neurospora , son poderosas herramientas genéticas que son ampliamente utilizados en Drosophila, además el original sistema de Gal4/UAS dirigida gene expresión1,2,3.
Aquí, presentamos un método para generar sistema fiable expresión binaria de tejidos específicos mediante el empleo de una técnica de edición del genoma. Los recientes avances en la tecnología de edición CRISPR/Cas9 genoma han permitido oportunidades sin precedentes hacer cambios de genoma dirigido en una amplia gama de organismos. En comparación con las otras técnicas de edición de genoma disponible, el sistema CRISPR/Cas9 es barato, eficiente y confiable. Esta tecnología utiliza componentes del sistema inmune adaptativo bacteriano: una endonucleasa Cas9 de Streptococcus pyogenes que crea una rotura de doble cadena (DSB) y un ARN quimérico guía (gRNA), que guía la Cas9 a un sitio particular del genoma para específicas OSD4. Las células contienen la maquinaria para reparar el OSD mediante diferentes vías. No homólogos se terminan uniendo (NHEJ) lleva a pequeñas inserciones o eliminaciones interrumpir funciones de los genes, mientras que la reparación dirigida de homología (HDR) presenta un definida dirigida/deseable genómico knock-en/knock-out mediante un donador exógeno de HDR como una plantilla. La estrategia de reemplazo basada en HDR puede utilizarse eficientemente para generar un sistema altamente confiable expresión binaria de tejidos específicos, que puede superar todas las limitaciones de los métodos de trampa tradicional potenciador. Describimos un procedimiento paso a paso para la utilización de reparación HDR CRISPR/Cas9-basado en la generación de una línea de controlador binario de transcripción que se expresa bajo el control de la regulación transcripcional y postranscripcional endógena de un Drosophila gen. En este protocolo, se demuestra la generación de una línea de controlador específica para servicios (bnl) gen codificando una proteína familia FGF que regula la morfogénesis ramificación de la vía aérea traqueal epitelio5. En este ejemplo, el primer exón de la codificación del gene del bnl fue substituido por la secuencia de una secuencia de transactivator bacteriana LexA sin alterar cualquier endógeno cis-secuencias reguladoras del gene del bnl . Nos muestran que la estrategia genera una línea de conductor de bnl-LexA que spatiotemporally controla la expresión de un gen reportero colocado aguas abajo de LexAoperator (LexAop o LexO) exclusivamente en bnl- expresando las células epiteliales/mesenquimales/neuronal.
Tradicionalmente, las trampas de potenciador de Drosophila fueron generadas por dos métodos diferentes. Una de las formas incluye inserción al azar de un conductor (ej., Gal4) secuencia en el genoma por transposición (e.g., transposición de elemento P)1 . Por otra parte, las secuencias de controlador pueden colocarse bajo el control transcripcional de una región enhancer putativos/promotor en una construcción del plásmido, que luego se integrarían en un sitio ect…
The authors have nothing to disclose.
Agradecemos Dr. F. Port, Dr. K. o ‘ Connor-Giles y el Dr. S. Feng debates sobre estrategia CRISPR; Dr. T.B. Kornberg y el centro de Stock de Bloomington de reactivos; Instalaciones de centrales de UMD; y el financiamiento de NIH: R00HL114867 y R35GM124878 al SR.
X-Gal/IPTG | Gentrox (Genesee Scientific) | 18-218 | cloning |
LB-Agar | BD Difco | BD 244520 | cloning |
Tris-HCl | Sigma Aldrich | T3253 | Molecular Biology |
EDTA | Sigma Aldrich | E1161 | Molecular Biology |
NaCl | Sigma Aldrich | S7653 | Molecular Biology |
UltraPure DNase/RNase-Free Water | ThermoFisher Scientific | 10977-023 | Molecular Biology |
10%SDS | Sigma Aldrich | 71736 | Molecular Biology |
KOAc | Fisher-Scientific | P1190 | Molecular Biology |
EtOH | Fisher-Scientific | 04-355-451 | Molecular Biology |
GeneJET Miniprep | ThermoFisher Scientific | K0503 | Miniprep |
PureLink HiPure Plasmid Maxipep kits | ThermoFisher Scientific | K210006 | Maxiprep |
BbsI | NEB | R0539S | Restriction enzyme |
Primers | IDT-DNA | PCR | |
pCFD4 | Kornberg Lab | DNA template and vector for gRNA | |
KAPA HiFi Hot Start- (Kapa Biosystems) | Kapa biosystems | KK2601 | PCR |
Q5-high fidelity Taq | NEB | NEB #M0491 | PCR |
Gibson Assembly Master Mix | NEB | NEB #E2611 | DNA assembly |
pBPnlsLexA:p65Uw | Addgene | DNA template for LexA amplification | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | 25530049 | Molecular Biology |
2x PCR PreMix, with dye (red) | Sydlab | MB067-EQ2R | Molecular Biology |
Gel elution kit | Zymo Research (Genesee Scientific) | 11-300 | Molecular Biology |
TRI reagent | Sigma-Aldrich | Molecular Biology | |
Direct-zol RNA purification kits | Zymo Research (Genesee Scientific) | 11-330 | Molecular Biology |
OneTaq One-Step RT-PCR Kit | NEB | E5315S | Molecular Biology |
lexO-CherryCAAX | Kornberg Lab | Fly line | |
UAS-CD8:GFP | Kornberg lab | Fly line | |
btl-Gal4 | Kornberg lab | Fly line | |
MKRS/TB6B | Kornberg lab | Fly line | |
Confocal Microscope SP5X | Leica | Imaging expression pattern | |
CO2 station | Genesee Scientific | 59-122WCU | fly pushing |
Stereo microscope | Olympus | SZ-61 | fly pushing |
Microtube homogenizing pestles | Fisher-Scientific | 03-421-217 | genomic DNA isolation |
NanoDrop spectrophotometer | ThermoFisher Scientific | ND-1000 | DNA quantification |