Qui, presentiamo un metodo per la generazione di sistemi di trascrizione binario tessuto-specifici in Drosophila , sostituendo il primo esone codifica dei geni con driver di trascrizione. Il metodo basato su CRISPR/Cas9 inserisce una sequenza di transactivator ai sensi del regolamento endogeno di un gene sostituito e di conseguenza facilita transctivator espressione esclusivamente in reticoli spatiotemporal gene-specifico.
Sistemi di trascrizione binario sono potenti strumenti genetici ampiamente usati per la visualizzazione e manipolazione cellulare destino e l’espressione genica in specifici gruppi di cellule o tessuti in organismi modello. Questi sistemi contengono due componenti distinte linee transgeniche. Un’autista linea esprime un attivatore trascrizionale sotto il controllo di promotori tessuto-specifici/Enhancer, un reporter/effettrici linea porticcioli e un gene bersaglio posizionato a valle per il sito di legame dell’attivatore di trascrizione. Animali che harboring entrambi i componenti inducono la transattivazione di tessuto-specifica di un’espressione di gene di destinazione. Spazio-temporale precisa espressione del gene in tessuti mirati è critica per interpretazione imparziale dell’attività del gene e delle cellule. Di conseguenza, lo sviluppo di un metodo per la generazione di linee di esclusivo cellula/tessuto-specifico driver è essenziale. Qui presentiamo un metodo per generare il sistema di espressione mirati altamente tessuto-specifica con l’ausilio di un “cluster regolarmente Interspaced breve palindromi Repeat/CRISPR-associated” (CRISPR/Cas)-base tecnica di editing genomico. In questo metodo, l’endonucleasi Cas9 è bersagliato da due chimerico guida RNAs (gRNA) a siti specifici nel primo esone codifica di un gene nel genoma della drosofila per creare rotture a doppio filamento (DSB). Successivamente, utilizzando un plasmide di donatore esogeno contenente la sequenza di transactivator, il macchinario di riparazione delle cellule-autonoma consente il ripristino diretto di omologia (HDR) del DSB, con conseguente eliminazione precisa e sostituzione dell’essone con il transactivator sequenza. Il transactivator bussò-in è espresso esclusivamente in cellule dove il cis-elementi regolatori del gene sostituito sono funzionali. Il protocollo dettagliato passo-passo qui presentato per la generazione di un driver binario trascrizionale espresso in Drosophila fgf/prive-producendo le cellule epiteliali/neuronali può essere adottato per qualsiasi espressione di gene – o tessuto-specifico.
Casella degli strumenti genetico per espressione genica mirata è stato ben sviluppato in Drosophila, che lo rende uno dei migliori sistemi di modello per studiare la funzione dei geni coinvolti in un’ampia varietà di processi cellulari. Sistemi di espressione binaria, come il lievito Gal4/UAS (sequenza di attivazione a Monte), fu adottato per risultati di intrappolamento e gene tessuto-specifici enhancer in Drosophila modello genetico1 (Figura 1). Questo sistema ha facilitato lo sviluppo di un gran numero di tecniche come la regolazione spazio-temporale della sovraespressione genica, risultati, Ko in gruppi selezionati di cellule pure come ablazione delle cellule, cellule marcatura, tracciatura dal vivo di cellulari e molecolari processi in embrione e tessuti, lignaggio traccia e analisi di mosaico durante lo sviluppo. Un numero del sistema binario trascrizione, ad esempio il batterica LexA/LexAop system (Figura 1) e Neurospora Q-system, sono potenti strumenti genetici che ora sono ampiamente usati in Drosophila, oltre a l’originale sistema Gal4/UAS per gene bersaglio espressione1,2,3.
Qui, presentiamo un metodo per generare il sistema altamente affidabile tessuto-specifica espressione binaria impiegando una tecnica di modifica del genoma. I recenti progressi nella tecnologia di editing CRISPR/Cas9 genoma hanno permesso opportunità senza precedenti per apportare modifiche di genoma diretto in una vasta gamma di organismi. Rispetto ad altre tecniche di editing disponibili genoma, il sistema CRISPR/Cas9 è economico, efficiente e affidabile. Questa tecnologia utilizza componenti del sistema immunitario adattativo batterico: un’endonucleasi di Cas9 di Streptococcus pyogenes che crea una rotture a doppio filamento (DSB) e un RNA chimerico guida (gRNA), che guida il Cas9 a un sito particolare genoma per mirati DSB4. Le cellule contengono i macchinari per riparare il DSB utilizzando percorsi diversi. Non-omologa fine unirsi (NHEJ) conduce a piccoli inserimenti o eliminazioni di perturbare la funzione del gene, mentre riparazione omologia-diretto (HDR) introduce un definito diretto/desiderabile genomico knock-in/knock-out utilizzando un donatore HDR esogeno come modello. La strategia di sostituzione basato su HDR possa essere utilizzata in modo efficiente per generare un sistema altamente affidabile espressione binaria di tessuto-specifici, in grado di superare tutte le limitazioni dei metodi tradizionali enhancer trap. Descriviamo una procedura dettagliata per l’utilizzo di riparazione basato su CRISPR/Cas9 HDR nella generazione di una linea di driver binario trascrizione che si esprime sotto il controllo del regolamento endogeno trascrizionale e di un di Drosophila gene. In questo protocollo, dimostriamo la generazione di una linea di driver specifica per prive (bnl) gene codifica per una proteina di famiglia di FGF che regola la morfogenesi di ramificazione della via aerea tracheale epitelio5. In questo esempio, il primo esone codifica del gene di bnl è stato sostituito dalla sequenza di una sequenza di transactivator LexA batterica senza alterare qualsiasi endogeno cis-sequenze regolarici del gene di bnl . Mostriamo che la strategia generato una linea di driver di bnl-LexA che spatiotemporally controlla l’espressione di un gene del reporter posizionato a valle di LexAoperator (LexAop o LexO) esclusivamente in bnl- che esprimono le cellule epiteliali/mesenchymal/neuronali.
Tradizionalmente, trappole del rinforzatore di Drosophila sono stati generati da due diversi metodi. Uno dei modi include l’inserimento casuale di un driver (es., Gal4) sequenza del genoma di recepimento (ad es., trasposizione elemento P)1 . In alternativa, le sequenze di driver possono essere posizionate sotto il controllo trascrizionale di una regione enhancer/promotore presunto in un costrutto di plasmide, che sarebbe poi integrato in una sede ectopica del genoma<sup …
The authors have nothing to disclose.
Ringraziamo il Dr. F. porta, Dr. K. o ‘ Connor-Giles e Dr. S. Feng per discussioni sulla strategia CRISPR; Dr. T.B. Kornberg e il centro di Stock di Bloomington per reagenti; Funzione di imaging UMD; e finanziamenti da NIH: R00HL114867 e R35GM124878 a SR.
X-Gal/IPTG | Gentrox (Genesee Scientific) | 18-218 | cloning |
LB-Agar | BD Difco | BD 244520 | cloning |
Tris-HCl | Sigma Aldrich | T3253 | Molecular Biology |
EDTA | Sigma Aldrich | E1161 | Molecular Biology |
NaCl | Sigma Aldrich | S7653 | Molecular Biology |
UltraPure DNase/RNase-Free Water | ThermoFisher Scientific | 10977-023 | Molecular Biology |
10%SDS | Sigma Aldrich | 71736 | Molecular Biology |
KOAc | Fisher-Scientific | P1190 | Molecular Biology |
EtOH | Fisher-Scientific | 04-355-451 | Molecular Biology |
GeneJET Miniprep | ThermoFisher Scientific | K0503 | Miniprep |
PureLink HiPure Plasmid Maxipep kits | ThermoFisher Scientific | K210006 | Maxiprep |
BbsI | NEB | R0539S | Restriction enzyme |
Primers | IDT-DNA | PCR | |
pCFD4 | Kornberg Lab | DNA template and vector for gRNA | |
KAPA HiFi Hot Start- (Kapa Biosystems) | Kapa biosystems | KK2601 | PCR |
Q5-high fidelity Taq | NEB | NEB #M0491 | PCR |
Gibson Assembly Master Mix | NEB | NEB #E2611 | DNA assembly |
pBPnlsLexA:p65Uw | Addgene | DNA template for LexA amplification | |
Proteinase K | ThermoFisher Scientific | 25530049 | Molecular Biology |
2x PCR PreMix, with dye (red) | Sydlab | MB067-EQ2R | Molecular Biology |
Gel elution kit | Zymo Research (Genesee Scientific) | 11-300 | Molecular Biology |
TRI reagent | Sigma-Aldrich | Molecular Biology | |
Direct-zol RNA purification kits | Zymo Research (Genesee Scientific) | 11-330 | Molecular Biology |
OneTaq One-Step RT-PCR Kit | NEB | E5315S | Molecular Biology |
lexO-CherryCAAX | Kornberg Lab | Fly line | |
UAS-CD8:GFP | Kornberg lab | Fly line | |
btl-Gal4 | Kornberg lab | Fly line | |
MKRS/TB6B | Kornberg lab | Fly line | |
Confocal Microscope SP5X | Leica | Imaging expression pattern | |
CO2 station | Genesee Scientific | 59-122WCU | fly pushing |
Stereo microscope | Olympus | SZ-61 | fly pushing |
Microtube homogenizing pestles | Fisher-Scientific | 03-421-217 | genomic DNA isolation |
NanoDrop spectrophotometer | ThermoFisher Scientific | ND-1000 | DNA quantification |