Summary

Détection de l’activité de la Phospholipase C dans l’homogénat de cerveau de l’abeille

Published: September 14, 2018
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Summary

Pour tester les effets inhibiteurs des agents pharmacologiques sur la phospholipase C (PLC) dans différentes régions du cerveau de l’abeille, nous présentons une analyse biochimique pour mesurer l’activité du PLC dans ces régions. Cet essai pourrait être utile pour comparer l’activité PLC entre les tissus, ainsi que chez les abeilles présentant des comportements différents.

Abstract

L’abeille est un organisme modèle pour l’évaluation des comportements complexes et des fonctions cérébrales supérieures, telles que l’apprentissage, la mémoire et la division du travail. Le corps du champignon (MB) est un centre de cerveau supérieur a proposé d’être le substrat neuronal de comportements complexes abeille. Bien que les études antérieures identifié des gènes et protéines différentiellement exprimés dans la ROM et des autres régions du cerveau, l’activité des protéines dans chaque région n’est pas encore pleinement comprise. Pour révéler les fonctions de ces protéines dans le cerveau, analyse pharmacologique est une approche possible, mais il faut d’abord confirmer que des manipulations pharmacologiques modifient en effet l’activité de la protéine dans ces régions du cerveau.

Nous identifié précédemment une expression plus élevée des gènes codant la phospholipase C (PLC) en les MBs que dans d’autres régions du cerveau et évalués sur le plan pharmacologique l’implication du PLC dans le comportement des abeilles. Dans cette étude, nous avons biochimiquement testé deux agents pharmacologiques et confirmé qu’elles ont baissé d’activité PLC dans la ROM et des autres régions du cerveau. Nous présentons ici une description détaillée de la façon de détecter l’activité PLC dans l’homogénat de cerveau des abeilles. Dans ce système de dosage, homogénats provenant de différentes régions du cerveau sont réagit avec un substrat fluorogène synthétique, et fluorescence provenant des activités PLC est quantifiée et une comparaison entre les régions du cerveau. Nous décrivons également notre évaluation des effets de certains médicaments inhibiteurs sur l’activité PLC en utilisant le même système. Bien que ce système est probablement affectée par les autres composés endogènes fluorescence et/ou l’absorption des éléments d’analyse et des tissus, la mesure de l’activité PLC à l’aide de ce système est plus sûr et plus facile que celui utilisant l’analyse traditionnelle, qui nécessite des substrats. La procédure simple et manipulations permettent d’examiner l’activité PLC dans le cerveau et d’autres tissus des abeilles en participant à différentes tâches sociales.

Introduction

L’abeille européenne (Apis mellifera L.) est un insecte eusocial, et les abeilles femelles Voir la reproduction de caste-dépendante et fonction de l’âge de division du travail. Par exemple, dans la caste stérile des abeilles dénommé « travailleurs », des individus plus jeunes nourrissent les couvées tandis que les plus âgés fourrage de nectar et pollen à l’extérieur de la ruche1. Apprentissage et la mémoire capacité est extrêmement importante dans la vie de l’abeille, parce que les butineuses doivent à plusieurs reprises, aller et venir entre les sources de nourriture et de leur nid et puis communiquer les emplacements des bonnes sources alimentaires à leurs congénères par le biais de danse communication1. Des études antérieures ont démontré que le MB, un centre du cerveau plus élevé chez les insectes, est impliqué dans la capacité d’apprentissage et la mémoire des abeilles2,3,4. Expression différentielle des gènes et des protéines ont été identifiées dans les différentes régions du cerveau de l’abeille5,6,7,8,9,10 ,11, ce qui suggère qu’elles sont liées aux fonctions uniques de chaque région du cerveau. Bien que l’inhibition pharmacologique ou l’activation d’une protéine d’intérêt est une approche très utilisée pour révéler la fonction de la protéine à l’abeille comportement12,13,14, on ne sait pas si tous les médicaments ont des effets fonctionnels dans différentes régions du cerveau de l’abeille. La validation des fonctions de ces drogues renforcera les conclusions dans les études de pharmacologie comportementale.

Ici, nous nous concentrons sur PLC, l’un des enzymes impliqués dans la cognition de souris15,16,17,18. PLC déclencheurs calcium signalisation par dégradants phosphatidylinositol 4, 5-bisphosphate (PIP2) dans l’inositol 1,4,5-trisphosphate (IP-3) et diacylglycerol (DAG)19,20,21. IP3 ouvre IP3 récepteurs sur le réticulum endoplasmique (re), aboutissant à la libération des ions de calcium de l’ER. Le calcium libéré active fois calcium/calmoduline-dépendante de protéine-kinase II (CaMKII) avec la calmoduline et la protéine kinase C (PKC) en présence de DAG. Les deux protéines kinases sont impliqués dans l’apprentissage et la mémoire22,23, compatibles avec l’implication de PLC dans ce processus. Automates programmables sont catégorisés en sous-types, y compris la PLCβ, PLCγ et PLCε, basée sur leurs structures20. Chaque sous-type PLC intervient dans un contexte différent de20, et des gènes codant ces sous-types sont exprimés différentiellement dans différents tissus. Nous avons démontré précédemment qu’abeilles MBs expriment des gènes codant pour des sous-types PLCβ et PLCε à des niveaux plus élevés que le reste des régions cérébrales24, et que deux inhibiteurs de la pan-PLC (édelfosine et néomycine sulfate [néomycine]) diminuent l’activité PLC dans différentes régions du cerveau et, en effet, affecter la capacité d’apprentissage et la mémoire des abeilles24.

Traditionnellement, l’activité enzymatique de PLC a été mesurée selon radiomarquées PIP225, qui nécessite des installations, l’équipement et une formation appropriée. Récemment, un substrat fluorogène synthétique de PLC a été établie26, rendant facile évaluer l’activité PLC en laboratoire standard. Nous présentons ici un protocole détaillé pour détecter l’activité PLC dans différentes régions du cerveau de l’abeille en utilisant le substrat fluorogène et ensuite tester les effets inhibiteurs de l’édelfosine et la néomycine sur PLC dans ces tissus. Parce que le protocole nécessite des manipulations de base seulement, elle peut être applicable aux études de l’activité PLC dans d’autres tissus ou zones du cerveau chez les abeilles affectées à des tâches sociales différentes.

Protocol

1. prise d’alimentation des abeilles Acheter des colonies d’abeilles chez un distributeur local. À l’aide d’un filet à insectes, attraper les abeilles ensileuses qui retournent à la ruche avec des sacs de pollen sur leurs pattes. Transférer les abeilles dans un tube conique en plastique standard de 50 mL et le capuchon du tube (Figure 1). Mettre le tuyau sur la glace pour anesthésier les abeilles.NOTE : Porter les vestes désignés pour l’apiculture é…

Representative Results

Concentrations de protéine dans des homogénats de cerveau :Nous avons préparé des homogénats utilisant des abeilles de l’ensileuse. Les concentrations de protéine calculé dans des homogénats de l’originales sont indiquées à la Figure 3. Les concentrations de protéine approximative dans l’homogénat original étaient comme suit : 1,5 mg/mL dans les MBs et 2,3 mg/mL, dans d’autres régions du cerveau. Nous avons utilis?…

Discussion

L’examen biochimique de l’activité de la protéine est profondément important pour comprendre la signalisation moléculaire dans le cerveau, parce que l’activité d’une enzyme est affectée par diverses molécules, comme substrats et inhibiteurs et peut, ainsi, passer le long d’avec comportement animal (p. ex., apprentissage et mémoire)5. Dans les études de l’abeille, enzymes comme dépendante de l’AMP cyclique protéine kinase A, protéine kinase dépendante du GMP cycl…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Figure 4 b 4D a été modifiée de Suenami et al. 24 avec la permission de biologie ouvert. Les auteurs sont reconnaissants à l’éditeur pour l’autorisation. Ce travail a été soutenu par le Human Frontier Science Program (RGY0077/2016) à Shota Suenami et Ryo Miyazaki.

Materials

Pierce BCA Protein Assay Kit ThermoFisher Scientific 23227 The reagent kit for measurement of protein concentration
Pierce Bovine Serum Albumin Standard Ampules 2mg/mL ThermoFisher Scientific 23209 The standard samples used in BCA assay
Paraffin wax GC 13B1X00155000141 Dental wax used as dissection stage
Insect pin Shiga No. 0 Stainless, solid head
PLCglow KXT Bio KCH-0001 A fluorogenic substrate of PLC
384-well microplate Corning 4511 Low-volume, round-bottom plate in black color
Gemini EM microplate reader Molecular Devices
Edelfosine Santa Cruz Biotechnology sc-201021 pan-PLC inhibitor
Neomycin sulfate Santa Cruz Biotechnology sc-3573 pan-PLC inhibitor

References

  1. Winston, M. L. . The Biology of the Honey Bee. , (1991).
  2. Szyszka, P., Galkin, A., Menzel, R. Associative and non-associative plasticity in Kenyon cells of the honeybee mushroom body. Frontiers in Systems Neuroscience. 2, 3 (2008).
  3. Müßig, L., et al. Acute disruption of the NMDA receptor subunit NR1 in the honeybee brain selectively impairs memory formation. The Journal of Neuroscience. 30 (23), 7817-7825 (2010).
  4. Devaud, J. -. M., et al. Neural substrate for higher-order learning in an insect: mushroom bodies are necessary for configural discriminations. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (43), E5854-E5862 (2015).
  5. Grünbaum, L., Müller, U. Induction of a specific olfactory memory leads to a long-lasting activation of protein kinase C in the antennal lobe of the honeybee. The Journal of Neuroscience. 18 (11), 4384-4392 (1998).
  6. Kamikouchi, A., Takeuchi, H., Sawata, M., Natori, S., Kubo, T. Concentrated expression of Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase II and protein kinase C in the mushroom bodies of the brain of the honeybee Apis mellifera L. The Journal of Comparative Neurology. 417 (4), 501-510 (2000).
  7. Sen Sarma, M., Rodriguez-Zas, S. L., Hong, F., Zhong, S., Robinson, G. E. Transcriptomic profiling of central nervous system regions in three species of honey bee during dance communication behavior. PLoS ONE. 4 (7), e6408 (2009).
  8. Kaneko, K., et al. In situ hybridization analysis of the expression of futsch, tau, and MESK2 homologues in the brain of the European honeybee (Apis mellifera L.). PLoS ONE. 5 (2), e9213 (2010).
  9. Kaneko, K., et al. Novel middle-type Kenyon cells in the honeybee brain revealed by area-preferential gene expression analysis. PLoS ONE. 8 (8), e71732 (2013).
  10. Pasch, E., Muenz, T. S., Rössler, W. CaMKII is differentially localized in synaptic regions of kenyon cells within the mushroom bodies of the honeybee brain. The Journal of Comparative Neurology. 519 (18), 3700-3712 (2011).
  11. Suenami, S., et al. Analysis of the differentiation of Kenyon cell subtypes using three mushroom body-preferential genes during metamorphosis in the honeybee (Apis mellifera L.). PLoS ONE. 11 (6), e0157841 (2016).
  12. Farooqui, T., Robinson, K., Vaessin, H., Smith, B. H. Modulation of early olfactory processing by an octopaminergic reinforcement pathway in the honeybee. The Journal of Neuroscience. 23 (12), 5370-5380 (2003).
  13. Matsumoto, Y., et al. Cyclic nucleotide-gated channels, calmodulin, adenylyl cyclase, and calcium/calmodulin-dependent protein kinase II are required for late, but not early, long-term memory formation in the honeybee. Learning & Memory. 21 (5), 272-286 (2014).
  14. Scholl, C., Kübert, N., Muenz, T. S., Rössler, W. CaMKII knockdown affects both early and late phases of olfactory long-term memory in the honeybee. Journal of Experimental Biology. 218, 3788-3796 (2015).
  15. Miyata, M., et al. Deficient long-term synaptic depression in the rostral cerebellum correlated with impaired motor learning in phospholipase C β4 mutant mice. European Journal of Neuroscience. 13 (10), 1945-1954 (2001).
  16. Koh, H. -. Y., Kim, D., Lee, J., Lee, S., Shin, H. -. S. Deficits in social behavior and sensorimotor gating in mice lacking phospholipase Cβ1. Genes, Brain and Behavior. 7 (1), 120-128 (2008).
  17. Quan, W. -. X., et al. Characteristics of behaviors and prepulse inhibition in phospholipase Cε-/- mice. Neurology,Psychiatry and Brain Research. 18 (4), 169-174 (2012).
  18. Rioult-Pedotti, M. -. S., Pekanovic, A., Atiemo, C. O., Marshall, J., Luft, A. R. Dopamine promotes motor cortex plasticity and motor skill learning via PLC activation. PLoS ONE. 10 (5), e0124986 (2015).
  19. Ghosh, A., Greenberg, M. E. Calcium signaling in neurons: molecular mechanisms and cellular consequences. Science. 268 (5208), 239-247 (1995).
  20. Smrcka, A. V., Brown, J. H., Holz, G. G. Role of phospholipase Cε in physiological phosphoinositide signaling networks. Cellular Signalling. 24 (6), 1333-1343 (2012).
  21. Dusaban, S. S., Brown, J. H. PLCε mediated sustained signaling pathways. Advances in Biological Regulation. 57, 17-23 (2015).
  22. Elgersma, Y., Sweatt, J. D., Giese, K. P. Mouse genetic approaches to investigating calcium/calmodulin-dependent protein kinase II function in plasticity and cognition. The Journal of Neuroscience. 24 (39), 8410-8415 (2004).
  23. Giese, K. P., Mizuno, K. The roles of protein kinases in learning and memory. Learning & Memory. 20 (10), 540-552 (2013).
  24. Suenami, S., Iino, S., Kubo, T. Pharmacologic inhibition of phospholipase C in the brain attenuates early memory formation in the honeybee (Apis mellifera L.). Biology Open. 7 (1), (2018).
  25. Zhu, L., McKay, R. R., Shortridge, R. D. Tissue-specific expression of phospholipase C encoded by the norpA gene of Drosophila melanogaster. The Journal of Biological Chemistry. 268 (21), 15994-16001 (1993).
  26. Huang, W., Hicks, S. N., Sondek, J., Zhang, Q. A fluorogenic, small molecule reporter for mammalian phospholipase C isozymes. ACS Chemical Biology. 6 (3), 223-228 (2011).
  27. Yoshioka, T., Inoue, H., Hotta, Y. Absence of phosphatidylinositol phosphodiesterase in the head of a Drosophila visual mutant, norpA (no receptor potential A). The Journal of Biochemistry. 97 (4), 1251-1254 (1985).
  28. Janjanam, J., Chandaka, G. K., Kotla, S., Rao, G. N. PLCβ3 mediates cortactin interaction with WAVE2 in MCP1-induced actin polymerization and cell migration. Molecular Biology of the Cell. 26 (25), 4589-4606 (2015).
  29. Fiala, A., Müller, U., Menzel, R. Reversible downregulation of protein kinase A during olfactory learning using antisense technique impairs long-term memory formation in the honeybee, Apis mellifera. The Journal of Neuroscience. 19 (22), 10125-10134 (1999).
  30. Thamm, M., Scheiner, R. PKG in honey bees: spatial expression, Amfor gene expression, sucrose responsiveness, and division of labor. The Journal of Comparative Neurology. 522 (8), 1786-1799 (2014).
  31. Balfanz, S., et al. Functional characterization of transmembrane adenylyl cyclases from the honeybee brain. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 42 (6), 435-445 (2012).
  32. Lopez, I., Mak, E. C., Ding, J., Hamm, H. E., Lomasney, J. W. A novel bifunctional phospholipase C that is regulated by Gα12 and stimulates the Ras/mitogen-activated protein kinase pathway. The Journal of Biological Chemistry. 276 (4), 2758-2765 (2001).
  33. Huang, W., et al. A membrane-associated, fluorogenic reporter for mammalian phospholipase C isozymes. The Journal of Biological Chemistry. 293 (5), 1728-1735 (2018).

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Cite This Article
Suenami, S., Miyazaki, R., Kubo, T. Detection of Phospholipase C Activity in the Brain Homogenate from the Honeybee. J. Vis. Exp. (139), e58173, doi:10.3791/58173 (2018).

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