Summary

導出とイヌの卵巣間葉系幹細胞の分化

Published: December 16, 2018
doi:

Summary

ここで、分離、拡張、および犬の卵巣組織から間葉系幹細胞の分化の手法について述べる。

Abstract

間葉系幹細胞 (MSCs) の金利は、分離、拡張、および文化の容易にするため過去 10 年間増加しています。最近、研究はこれらの細胞を持っている広い分化能力を実証しています。卵巣は、MSCs が豊富です、それは頻繁、生物系廃棄物として卵巣摘出手術後破棄されるため細胞ベースの治療のための有望な候補を表します。隔離、拡張のための手順を説明し、細胞選別の必要なし、犬の卵巣由来の分化技術。このプロトコルは、臨床試験のこれらの高い微分可能セルの幅広い適用性のため再生医療のための重要なツールを表し、治療を使用します。

Introduction

幹細胞に焦点を当てるを過去 10 年間強力な再生医療の治療法の発見の集団の目標によって支えられている研究努力で大幅に増加している発表された研究の数です。幹細胞がある 2 つの主要な定義のマーカー: 自己改修と分化。間葉系幹細胞は正規の組織の売り上げ高し、分化1胚性幹細胞と比較した場合の制限のより強い能力を持っています。最近では、多くの研究は、MSCs の分化の広い範囲を示しているし、の議論の下でトピックがすべて2胎児および成体幹細胞の違いが存在するかどうか。

卵巣表面上皮は、コミットされていない細胞の層、比較的少ない差別化、表現両方上皮と間葉系マーカー3、さまざまな種類の細胞に分化する能力を保持します。環境シグナル4。卵巣の幹細胞の正確な位置はよく知られている; ないです。しかし、逃げずに bipotential 前駆細胞が生殖細胞5に上昇を与えることが提案されている.これらの細胞が間質起源6を持っているまたはまたは卵巣表面7に近位に存在する、免疫学的研究、仮説を立てた。迅速な接着と細胞の人口の選択セルの人口を明確に特定するという仮説を検証する実験が設計された以来、間葉系幹細胞は、細胞接着8で重要な役割を果たす多くの受容体を表現、自然の中に間葉系として characterizable。最近、私たちのグループは、MSCs の迅速な接着9電池の精製された人口を得るために、文化の最初の 3 時間で培養皿のプラスチック表面への密着性の能力に基づく卵巣組織からの派生を報告しました。ここでは、卵巣組織から間葉系幹細胞分離法の開発について述べる.

Protocol

この実験は、犬の滅菌プログラムで手術後寄贈 4 雑種メス犬の卵巣を行った。この実験は UNESP-FCAV (プロトコル番号 026991/13) の動物の使用の倫理委員会で承認されました。 1. 実験準備 準備またはダルベッコ滅菌リン酸緩衝生理食塩水 (DPBS) カルシウムやマグネシウムなしの 500 mL を購入します。 準備、コラゲナーゼの DPBS 1 mL に酵素 40 μ g を混合することに…

Representative Results

犬の卵巣から幹細胞の分離: 卵巣の MSC 分離手順は、図 1のとおりです。手術、組織のミンチ、コラゲナーゼの消化力、メディア変更文化の初めの後の 3 時間後、急速なプラスチック接着特性と推定される MSC 人口が犬の卵巣組織から正常に分離された.収穫された細胞は培養?…

Discussion

ここ MSCs が卵巣摘出後生物系廃棄物をある犬の卵巣組織から分離でき、証拠を提供します。卵巣に多くの細胞のタイプを見つけることができます、という事実のために、プラスチックは、線維芽細胞のような形態の単分子膜の成長細胞を正常に選択への急速な遵守に基づいて MSCs を選択するプロトコルを提案しました。

MSCs の骨髄からの派生の最初レポートは文化<sup clas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者は、卵巣を提供する親切 UNESP-FCAV で犬の滅菌プログラムを認めます。この作品は、FAPESP (プロセス号 2013/14293-0) と岬からの補助金によって支えられました。

Materials

DPBS  Thermo Fisher 14190144
Collagenase I Thermo Fisher 17100017
Tissue flask Corning CLS3056
DMEM low glucose Thermo Fisher 11054020
FBS Thermo Fisher 12484-010
TrypLE express Thermo Fisher 12604021
StemPro Adipogenesis Differentiation Kit Thermo Fisher A1007001
StemPro Chondrogenesis Differentiation Kit Thermo Fisher A1007101
StemPro Osteogenesis Differentiation Kit Thermo Fisher A1007201
STEMdiff Definitive Endoderm Kit StemCell 5110
Penicillin-Streptomycin Thermo Fisher 15070063
CD45 AbD Serotec MCA 2035S
CD34 AbD Serotec MCA 2411GA
CD90 AbD Serotec MCA 1036G
CD44 AbD Serotec MCA 1041
Nestin Milipore MAB353
β-Tubulin  Milipore MAB1637
DDX4 Invitrogen PA5 -23378
IgG- FITC AbD Serotec STAR80F
IgG- FITC AbD Serotec STAR120F

References

  1. Gazit, Z., Pelled, G., Sheyn, D., Kimelman, N., Gazit, D., Atala, A., Lanza, R. Mesenchymal stem cells. Handbook of Stem Cells (2nd Edition). , 513-527 (2013).
  2. Zipori, D. The nature of stem cells: state rather than entity. Nature Reviews Genetics. 5 (11), 873-878 (2004).
  3. Auersperg, N., Wong, A. S., Choi, K. C., Kang, S. K., Leung, P. C. Ovarian surface epithelium: biology, endocrinology, and pathology. Endocrine Reviews. 22 (2), 255-288 (2001).
  4. Ahmed, N., Thompson, E. W., Quinn, M. A. Epithelial-mesenchymal interconversions in normal ovarian surface epithelium and ovarian carcinomas: an exception to the norm. Journal of Cellular Physiology. 213 (3), 581-588 (2007).
  5. Bukovsky, A., Svetlikova, M., Caudle, M. R. Oogenesis in cultures derived from adult human ovaries. Reproductive Biology and Endocrinology. 3 (1), 17 (2005).
  6. Gong, S. P., et al. Embryonic stem cell-like cells established by culture of adult ovarian cells in mice. Fertility and Sterility. 93 (8), 2594-2601 (2010).
  7. Johnson, J., Canning, J., Kaneko, T., Pru, J. K., Tilly, J. L. Germline stem cells and follicular renewal in the postnatal mammalian ovary. Nature. 428 (6979), 145 (2004).
  8. Deans, R. J., Moseley, A. B. Mesenchymal stem cells: biology and potential clinical uses. Experimental Hematology. 28 (8), 875-884 (2000).
  9. Trinda Hill, A. B. T., Therrien, J., Garcia, J. M., Smith, L. C. Mesenchymal-like stem cells in canine ovary show high differentiation potential. Cell Proliferation. 50 (6), 12391 (2017).
  10. Dominici, M. L. B. K., et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8, 4315-4317 (2006).
  11. Friedenstein, A. J., Piatetzky-Shapiro, I. I., Petrakova, K. V. Osteogenesis in transplants of bone marrow cells. Development. 16 (3), 381-390 (1966).
  12. Kuznetsov, S. A., et al. Single-colony derived strains of human marrow stromal fibroblasts form bone after transplantation in vivo. Journal of Bone and Mineral Research. 12 (9), 1335-1347 (1997).

Play Video

Cite This Article
Hill, A. B., Hill, J. E., Bressan, F. F., Miglino, M. A., Garcia, J. M. Derivation and Differentiation of Canine Ovarian Mesenchymal Stem Cells. J. Vis. Exp. (142), e58163, doi:10.3791/58163 (2018).

View Video