Aquí, presentamos un protocolo para distinguir murino granulocyte-macrophage-colony-stimulating-factor-producing T (THGM) linfocitos de células T CD4 + de ingenuo, incluyendo el aislamiento de las células CD4 + T de ingenuo, diferenciación de THGM, y Análisis de las células THGM diferenciadas. Este método puede ser aplicado a los estudios de la regulación y función de las células THGM.
El factor del granulocyte-macrófago-estimulante de colonias (GM-CSF)-producción de la célula de T helper (THGM) es un subconjunto de células helper T nuevamente identificado que predominantemente segrega GM-CSF sin producir interferón (IFN) γ o interleukin (IL) -17 y se encuentra a juega un papel esencial en la neuroinflamación autoinmune. Un método de aislamiento de ingenuo de células T CD4 + de una suspensión unicelular de esplenocitos y generación de células THGM de las células T CD4 + de ingenuo sería una técnica útil en el estudio de la inmunidad mediada por células T y enfermedades autoinmunes. Aquí describimos un método que distingue las de células T CD4 + ingenuo de ratón en células THGM promovidas por IL-7. El resultado de la diferenciación fue evaluado mediante el análisis de la expresión de citoquinas utilizando diferentes técnicas, entre ellas citoquinas intracelulares tinción combinada con citometría de flujo, una reacción en cadena en tiempo real cuantitativa de la polimerasa (PCR), y análisis enzima-ligado del inmunosorbente (ELISA). Utilizando el protocolo de diferenciación de THGM tal como se describe aquí, alrededor del 55% de las células expresan GM-CSF con una mínima expresión de IFNα o IL-17. La expresión predominante de GM-CSF de las células THGM más fue confirmada por el análisis de la expresión del GM-CSF, IFNα y IL-17 en los niveles de mRNA y proteína. Así, este método puede utilizarse para diferenciar ingenuo de células T CD4 + t cells GMH en vitro, que serán útiles en el estudio de la biología de la célula de THGM.
De células T CD4 + helper (TH) son componentes esenciales del sistema inmune, teniendo papeles cruciales en la defensa del huésped frente a patógenos microbianos, en la vigilancia del cáncer y autoinmunidad1,2,3. Sobre la activación de células T del receptor (TCR), ingenuo de células T CD4 + se pueden distinguir en TH1, TH2, TH , reglamentarios o de 17 células de T (Treg) bajo la influencia de citocinas diferentes ambientes2,4, 5. recientemente, un nuevo subconjunto de células TH , que principalmente produce el GM-CSF, se identificó y nombró THGM6. La diferenciación de las células THGM es conducida por IL-7 a través de la activación de un transductor de señal y activador de la transcripción 5 (STAT5). Estas células expresan una gran cantidad de GM-CSF al mismo tiempo que una baja expresión de otros TH-célula citocinas firma como IFNγ y la IL-176. GM-CSF fue encontrado para desempeñar un papel crítico en el desarrollo de CD4 + neuroinflamación mediada por células T7,8. En comparación con las células autorreactivas T expresa IFNγ o con IL-17, GM-CSF-expresar T células transferido a tipo salvaje ratones (WT) causadas un inicio anterior de la enfermedad y mayor severidad de la enfermedad. Además, Csf2– / – células de T no pudieron inducir la encefalomielitis autoinmune experimental (EAE) después siendo transferido eventualmente a los destinatarios de la WT, mientras que las células T carente de IFNγ, IL-17A o retenido la capacidad de mediar EAE7. Por otra parte, un bloqueo de GM-CSF con anticuerpos neutralizantes mejoró EAE de severidad de la enfermedad8. Además, una deficiencia de STAT5 en células T en ratones resultó en una menor generación de THGM y, por tanto, en una resistencia de los ratones a EAE desarrollo6. Estos resultados subrayan la importancia de las células de T de GM-CSF-expresandoH en enfermedad autoinmune capensis. Por lo tanto, establecer un método para distinguir las células de T de GM-CSF-expresandoH de células T CD4 + de ingenuo sería importante en el estudio de la patogenia autoinmune neuroinflamación y la respuesta inmune mediada por células T. Sin embargo, un protocolo eficientemente genera células THGM de murino ingenuo que CD4 + no ha sido establecida.
Aquí presentamos un método que distingue las células de THGM murinas de células T CD4 + de ingenuo. Este protocolo describe el procedimiento entero, incluyendo la extracción del bazo de ratón, la preparación de una suspensión unicelular, la selección positiva de CD4, la célula activada por fluorescencia (FACS) de clasificación y la célula de TH diferenciación y análisis. Las T helper células diferenciadas, son analizadas por citoquinas intracelulares tinción combinada con citometría de flujo para determinar la expresión de citocinas a nivel unicelular, de una PCR cuantitativa en tiempo real para determinar la expresión de citoquinas a nivel de mRNA, y por ELISA para evaluar la expresión de citoquinas a nivel de la proteína. Este método puede ser aplicado a los estudios de Biología de la célula de THGM bajo varias condiciones, tales como EAE, donde GM-CSF juega un papel importante en la patogenesia.
Aquí hemos descrito un protocolo de una diferenciación de THGM en vitro de las células del ratón ingenuo CD4 +, seguido de un análisis de las células diferenciadas para validar el método. De nota, bazo y ganglios linfáticos puede utilizarse para ingenuo CD4 + células de T de purificación y la diferenciación de THGM. La expresión de citocina determinada por citoquinas intracelulares tinción combinada con citometría de flujo mostró que alrededor del 55% de las células fueron i…
The authors have nothing to disclose.
Este estudio fue apoyado por becas de la Universidad Nacional salud sistema de Singapur (Oct-12-2014 T1 y T1-2015 Sep-10).
RPMI 1640 | Biowest | L0500-500 | |
FBS Heat Inactivated | Capricorn | FBS-HI-12A | |
Penicillin-Streptomycin | Gibco | 15140122 | |
10x PBS | 1st Base | BUF-2040-10 | Diluted to 1x PBS in sterile water |
EDTA | 1st Base | BUF-1053-100ml-pH8.0 | |
10X ACK buffer | Biolegend | 420301 | diluted in sterile water |
cell strainer | SPL Life Sciences | 93070 | |
CD4 microbeads | Miltenyi Biotec | 130-049-201 | |
2-Mercaptoethanol | Sigma | M7522 | |
LS column | Miltenyi Biotec | 130-042-401 | |
magnetic stand | Miltenyi Biotec | 130-042-303 | |
1ml syringe | Terumo | SS+01T | |
Centrifuge | Eppendorf | Eppendorf 5810R | |
Sony SY3200 cell sorter | Sony | Sony SY3200 cell sorter | |
50ml conical centrifuge tube | Greiner Bio-One | 210261 | |
15m conical centrifuge tube | Greiner Bio-One | 188271 | |
FACS tube | Corning | 352054 | |
24 well cell culture plate | Greiner Bio-One | 662160 | |
anti-mouse CD4 PerCP-eFluor 710 | eBioscience | 46-0041-82 | |
PE conjugated anti-mouse CD25 (IL-2Ra, p55) | eBioscience | 12-0251-82 | |
anti-human/mouse CD44 APC | eBioscience | 17-0441-82 | |
anti-mouse CD62L FITC | eBioscience | 11-0621-85 | |
Neubauer-improved counting chamber | Marienfeld | 640010 | |
Hyclone Trypan Blue Solution | GE healthcare Life Sciences | SV30084.01 | |
microscope | Nikon | Nikon Elipse TS100 | |
Purified anti-mouse CD3e antibody | Biolegend | 100314 | |
Purified hamster anti-mouse CD28 | BD Biosciences | 553295 | |
Purified Rat anti-mouse IFNγ | eBioscience | 16-7312-85 | |
Purified anti-mouse IL-4 Antibody | Biolegend | 504102 | |
Recombinant Mouse IL-7 Protein | R&D system | 407-ML | |
Recombinant Mouse IL-6 | R&D system | 406‑ML | |
recombinant human TGF-beta | R&D system | 240-B-010 | |
PMA | Merck Millipore | 19-144 | |
Ionomycin | Sigma | I0634 | |
GolgiPlug protein transport inhibitor | BD Biosciences | 51-2301KZ | |
Intracellular Fixation&Permeabilization buffer set | eBioscience | 88-8824-00 | |
anti-mouse GM-CSF PE | eBioscience | 12-7331-82 | |
FITC anti-mouse IL-17A | Biolegend | 506908 | |
APC anti-mouse IFN-gamma | Biolegend | 505810 | |
GO Taq qPCR master mix | Promega | A6002 | |
mouse GM-CSF ELISA Ready-SET-Go! | invitrogen | 88-7334-88 | |
Mouse IL-17A Uncouted ELISA | invitrogen | 88-7371-22 |