Un sistema de análisis de imágenes basada en software proporciona un método alternativo para estudiar la morfología de la especie estolonífera y rizomatosa. Este protocolo permite la medición de la longitud y diámetro de estolones y rizomas y puede aplicarse a muestras con una gran cantidad de biomasa y una gran variedad de especies.
Longitud y diámetro de estolones o rizomas generalmente se miden utilizando pinzas y reglas simples. Este procedimiento es lento y laborioso, así que a menudo es utilizado en un número limitado de estolones o rizomas. Por esta razón, estos rasgos están limitados en su uso para la caracterización morfológica de las plantas. El uso de tecnología de software de análisis de imagen digital puede superar errores de medición debido a errores humanos, que tienden a aumentar a medida que también aumentan el número y tamaño de las muestras. El protocolo puede ser utilizado para cualquier tipo de cultivo pero es particularmente conveniente para forraje o pastos, donde las plantas son pequeñas y numerosas. Muestras de césped consiste en biomasa aérea y una capa de tierra superior a la profundidad de desarrollo rizoma máximo, dependiendo de la especie de interés. En los estudios, las muestras se lavan del suelo y estolones/rizomas se limpian con la mano antes del análisis por software de análisis de imagen digital. Las muestras se secan aún más en un laboratorio de calefacción horno para medir peso seco; por lo tanto, para cada muestra, los datos resultantes son longitud total, peso seco total y diámetro medio. Imágenes escaneadas se pueden corregir antes de análisis excluyendo partes extrañas visibles, como las restantes raíces o las hojas que no se elimina con el proceso de limpieza. De hecho, estos fragmentos normalmente tienen diámetros mucho más pequeños que los estolones o rizomas, así que puede ser fácilmente excluidas del análisis fijando el diámetro mínimo por debajo del cual no se consideran objetos. Densidad de estolones o rizomas por unidad de área puede entonces calcularse basado en tamaño de la muestra. La ventaja de este método es rápida y eficiente medición de la longitud y el diámetro promedio de los números de muestra grande de estolones o rizomas.
El estudio de la morfología vegetal se trata en gran medida en todas las disciplinas de la ciencia de las plantas incluyendo la ecología, la agronomía, la biología y la fisiología. El sistema de raíces de la planta es ampliamente estudiado por su importancia en la tolerancia al estrés, estabilidad del suelo, crecimiento de las plantas y productividad. Estolones y rizomas son también ampliamente estudiados por su papel en las estrategias de propagación de planta, capacidad de recuperación y almacenamiento de hidratos de carbono. Estolones y rizomas son tallos modificados que crecen horizontalmente, ya sea por encima del suelo (estolones) o subterránea (rizomas). Estolones y rizomas también contienen nodos espaciados regularmente y entrenudos, así como nodos meristemos que son capaces de dar lugar a nuevas raíces y brotes de1. Ha habido un gran número de estudios sobre diferentes temas de investigación de las raíces, estolones y rizomas de varias plantas2,3,4,5,6,7, 8. Sistemas de raíces, estolones y rizomas de céspedes se estudian debido a su importancia en el turf calidad9, primavera green-up después de invierno de latencia10y tolerancia de desgaste y recuperación capacidad11. Además, estos órganos se estudian también en otros cultivos, céspedes como arroz12,4de soja y maíz13y pastizales donde tallos laterales juegan un papel clave en el suelo erosión control5.
Densidad de longitud de raíz (longitud de raíces por volumen de suelo) y diámetro medio comúnmente se miden utilizando análisis de software3,4,5,9,14,15, 16,17,18. Por el contrario, la longitud y diámetro de estolones o rizomas generalmente se miden con una regla y calibrador3,19,20 y requieren mucho tiempo y mano de obra21,22 , 23 , 24. por lo tanto, que se miden a menudo en un número restringido de estolones o rizomas11,20,25 y a menudo se limitan a la caracterización morfológica de plantas espaciadas solamente. El estudio de rasgos de estolón y rizoma en un dosel maduro implica una gran cantidad de biomasa de muestreo que generalmente sólo estolón y rizoma seco densidad (peso seco por unidad de superficie) son determinados7,11, 26 , 27. masa seca de estolones, de hecho, puede ser más fácilmente medibles de diámetro y longitud de estolón secando las muestras en un horno. Sin embargo, la longitud de estolón es una especie importante y carácter varietal que no está bien relacionado a masa seca. Un estudio reciente en arrastramiento de ballico perenne (Lolium perenne) demostró que las muestras con densidad de longitud de estolón alta no necesariamente tienen estolones alto peso densidad6.
Los sistemas de análisis de imagen hacen el análisis de las raíces más rápido28,29, más preciso y menos propensos a error humano30,21 que métodos tradicionales, manual31,32, 33. por otra parte, estos sistemas proporcionan gran flexibilidad y fácil de usar herramientas, incluyendo la luz, configuración óptica y la resolución, que a menudo están calibrados para cada escaneado imagen34. Pornaro et al. 24 demostró que el sistema WinRHIZO, un sistema de análisis de imagen diseñado específicamente para la medición de raíces lavadas, puede proporcionar un método alternativo para analizar rasgos de estolón y rizoma más completa que los métodos actuales de superación errores de medición causados por errores humanos. Para una descripción morfológica y la información cuantitativa sobre el crecimiento del estolón y rizoma, sistemas de análisis de imagen pueden utilizarse para analizar un gran número de muestras rápidamente, incluso con una gran cantidad de biomasa, lo que permite mayor precisión estadística. Por lo tanto, paquetes de software de análisis de raíz proporcionan un método alternativo, rápida y fiable para estudiar el crecimiento y la morfología de los estolones y rizomas de plantas diferentes especies24.
Presentamos un experimento llevado a cabo en el noreste de Italia para estudiar desarrollo de estolón y rizoma de cuatro cultivares de pasto Bermuda (Cynodon spp.). El estudio pretende incrementar el conocimiento sobre el desarrollo de estolones y rizomas en semillas (“LaPaloma” y “Yukon”) y vegetativo (“Patriot” y “Bermuda”) variedades de pasto Bermuda. El experimento se estableció en mayo de 2013, y se tomaron muestras de césped en tres muestreos por año, a partir de otoño de 2013 para el verano de 2015 [marzo (antes de la marcha verde), julio (estación de crecimiento completa) y octubre (antes de la dormancia invernal)]. Para la descripción y la explicación de este método, se utilizaron muestras recolectadas en el verano de la segunda temporada de crecimiento (julio de 2014), como la gran biomasa de las muestras en este momento la necesidad de un análisis rápido. WinRHIZO, una herramienta de software de análisis digital de imágenes específicamente diseñada para la medición de la raíz lavada, se usó para determinar la densidad de longitud de estolón y diámetro medio.
El protocolo descrito aquí fue desarrollado y evaluado para el estudio de los céspedes. Sin embargo, puede ser utilizado en un rango de especie estolonífera o rizomatosa con ajustes necesarios según sus características morfológicas, condiciones ambientales y limpieza de precisión de la muestra.
El diámetro medio estimado por medio de este Protocolo no puede ser comparado con el diámetro de entrenudo medido con un calibrador. El análisis de imagen digital incluye nodos y entrenudos en el cálculo del diámetro medio, que es la relación entre la superficie de proyección total y total longitud. Según lo discutido por Pornaro et al. 24, diámetro promedio obtenido para estolones de Bermuda con WinRHIZO sistema sobrevalorado diámetro promedio valores medidos con la pinza en el entrenudo. Estolón de diámetro se utiliza normalmente para describir el diámetro de los entrenudos de estolones y es un parámetro común utilizado para la descripción botánica18,25. Por esta razón, Pornaro et al. 24 señaló que diámetro medio estimado a través del sistema WinRHIZO y el diámetro medido manualmente entrenudo describir dos aspectos de morfología diferentes.
El tiempo necesario para llevar a cabo este protocolo sigue siendo un factor limitante para el análisis de rutina. La fase más desperdiciadora de tiempo es la limpieza de las muestras (paso 2.4). Basándonos en nuestra experiencia, limpieza de una muestra de césped con una gran cantidad de biomasa (es decir, 20 x 20 cm) requiere aproximadamente tres trabajadores de 2 a 4 horas. Como se describe en el protocolo, el proceso de limpieza es necesario para el sistema de análisis digital y al utilizar la pinza y la regla. Las muestras consisten en un número limitado de estolones/rizomas, el tiempo necesario para recopilar datos con los dos métodos es similar. Sin embargo, como se aumenta el tamaño de la muestra, el método basado en el software no tiene un tiempo posterior aumentan, como el único factor limitante es la superficie del escáner. Por el contrario, el tiempo necesario para medir los órganos con la regla y calibrador aumenta con el número de estolones o rizomas que componen la muestra.
El estudio de los rasgos de estolón y rizoma en los céspedes maduros siempre se ha basado en la medición de la longitud del entrenudo y diámetro y masa seca peso7,11,26,27. Debido al gran tiempo necesario para procesar las muestras y la disminución en la precisión con el aumento de tamaño de la muestra, mediciones manuales deben limitarse a un pequeño número de estolones o rizomas11,20,25. Como tal, sólo pueden ser convenientes para los experimentos de sola planta. La ventaja de un sistema de análisis de imagen sobre los métodos tradicionales es que lo que se puede medir la longitud de grandes estolones o rizomas muestras y calcular la densidad de longitud y peso específico (relación peso-longitud).
Este protocolo permite la medición de longitud de estolón y rizoma y cálculo de densidades de longitud de las muestras con gran biomasa (para que el rizoma o estolón peso es actualmente el único parámetro que se utiliza para la descripción de la morfología). Longitud de estolón y rizoma puede ser un parámetro importante en muchos estudios que no pueda ser estimado con las técnicas actuales. Estudios recientes sobre césped diferentes especies6 han demostrado que las densidades de peso y longitud de estolones no siempre correlacionan, indicando que pueden ser deseable para medir varios parámetros para evaluar adecuadamente el sistema de estolón y rizoma. Este método debe ser particularmente conveniente para cultivar o cultural gestión de prácticas de comparación.
Varios pasos en el protocolo son críticos para una estimación acertada de longitud y diámetro medio de estolones y rizomas. Debido a la alta variabilidad de la morfología de la planta bajo condiciones de ambiente diferente, el número de muestras (tamaño muestral) y de superficie dimensiones que deben ser muestrean (dimensión de la muestra) deben ser evaluados cuidadosamente y ser lo más representativas posible de la población con el fin de reducir la variabilidad de los datos. Por otra parte, limpieza de raíces y hojas de los estolones antes de análisis es el trabajo meticuloso que requiere especial atención para evitar sobrestimaciones. Por último, antes de procesamiento de imágenes, se recomienda seleccionar cuidadosamente la anchura de las clases y mínimo diámetro usando opciones de software para excluir todo lo que no es un estolón rizoma a partir del análisis. Cada experimento requiere la selección de un diámetro mínimo diámetro varía con la especie y condiciones ambientales, incluyendo las prácticas culturales.
The authors have nothing to disclose.
Ninguno.
laboratory tape | Any | NA | Tags may be used to label samples |
plastic bags | Any | NA | Any plastic bag can be used to keep samples until they have been cleened |
paper bags | Any | NA | Any paper bag can be used to keep cleaned samples to avoid mold formation |
paper towels | Any | NA | After samples have been washed with water and before to clean them with scissors it is helpful to put them on a paper towel to absorb water |
scissor | Any | NA | Any scissor with fine tips |
aluminium box | Any | NA | Any aluminium box large enough to contain the sample |
trays | Any | NA | It is helpful to use plastic tray to hold samples during the cleaning process |
sieve with 0.5-1.5 mm openings | Any | NA | Any sieve |
soil core sampler | Any | NA | We use core sampler for soil collection with diameter of at least 8 cm |
squared frame | Any | NA | To collect large samples we use squared frame (10 x 10 cm, or 15 x 15 cm, or 20 x 20 cm) |
spade | Any | NA | We use spade to pull out samples delimited with squared frame |
precision electronic balance | Any | NA | Any precision electronic balance |
laboratory oven | Any | NA | Any laboratory oven |
freezer | Any | NA | Any freezer |
WinRHIZO software | Regent Instruments Inc., Quebec | NA | Excluded the "basic" version |
WinRHIZO scanner | Regent Instruments Inc., Quebec | NA | WinRHIZO system includes a scanner calibrated for the software |
WinRHIZO scanner accessories | Regent Instruments Inc., Quebec | NA | WinRHIZO system includes accessories, as plastic tray and positioner, to be used with the scanner |