Un système d’analyse image logicielle fournit une autre méthode pour étudier la morphologie des espèces stolonifères et rhizomateuses. Ce protocole permet de mesurer de la longueur et le diamètre des stolons et rhizomes et peut être appliqué à des échantillons avec une grande quantité de biomasse et à une grande variété d’espèces.
Longueur et diamètre des stolons ou rhizomes sont habituellement mesurés à l’aide des étriers et des règles simples. Cette procédure est lente et laborieuse, il est souvent utilisé sur un nombre limité de stolons ou de rhizomes. Pour cette raison, ces traits sont limités dans leur utilisation pour la caractérisation morphologique des plantes. L’utilisation des technologies de logiciel analyse l’image numérique peut surmonter les erreurs de mesure due à des erreurs humaines, qui ont tendance à augmenter car le nombre et la taille des échantillons aussi augmentent. Le protocole peut être utilisé pour tout type de culture, mais est particulièrement adapté aux plantes fourragères ou de graminées, où les plantes sont petites et nombreuses. Des échantillons de gazon se composent de la biomasse aérienne et une couche de terre supérieure à la profondeur du développement de rhizome maximale, selon l’espèce d’intérêt. Dans les études, les échantillons sont lavés dans le sol et stolons/rhizomes sont nettoyés à la main avant l’analyse par logiciel d’analyse des images numériques. Les échantillons sont séchés davantage dans un laboratoire de chauffage du four pour mesurer le poids sec ; par conséquent, pour chaque échantillon, les données résultantes sont de longueur totale, poids sec total et le diamètre moyen. Images numérisées peuvent être corrigées avant l’analyse, en excluant les éléments visibles, tels que le restant des racines ou des feuilles ne pas enlevés avec le processus de nettoyage. En effet, ces fragments ont normalement beaucoup plus petits diamètres que les stolons ou de rhizomes, donc ils peuvent être facilement exclus de l’analyse en fixant le diamètre minimal au-dessous duquel les objets ne sont pas considérés. Stolon ou rhizome densité surfacique peut alors être calculée basé sur la taille de l’échantillon. L’avantage de cette méthode est rapide et efficace de mesure de la longueur et le diamètre moyen des numéros de grands échantillons de rhizomes ou de stolons.
L’étude de la morphologie de la plante est largement abordée dans toutes les disciplines des sciences de plantes y compris écologie, agronomie, biologie et physiologie. Le système de racine de plante est largement étudié pour son importance dans la tolérance au stress, la stabilité des sols, la croissance des plantes et la productivité. Stolons et rhizomes sont également largement étudiés pour leur rôle dans les stratégies de multiplication de plantes, régénérabilité et stockage des glucides. Stolons et rhizomes sont des tiges modifiées qui poussent horizontalement, soit au-dessus du sol (stolons) ou souterraines (rhizomes). Stolons et rhizomes contiennent également des nœuds régulièrement espacés et entrenoeuds, ainsi que méristématiques nœuds qui sont capables de faire naître de nouvelles racines et pousses1. Il y a eu un grand nombre d’études sur différents sujets, enquête sur les racines, stolons et rhizomes de diverses plantes2,3,4,5,6,7, 8. Système racinaire, stolons et rhizomes de turfgrasses sont étudiés en raison de leur importance dans le gazon qualité9, verdissement printemps après l’hiver dormance10et la tolérance d’usure et régénérabilité11. En outre, ces organes sont également étudiés dans d’autres cultures, turfgrasses tels que le riz12,4de soja, maïs13et pâturages où les tiges latérales jouent un rôle clé dans l’érosion de sol commande5.
La densité des racines longueur (longueur de racine par volume de sol) et le diamètre moyen sont couramment mesurées au moyen de balayage logiciel3,4,5,9,14,15, 16,17,18. À l’inverse, la longueur et le diamètre des stolons ou rhizomes sont habituellement mesurés avec une règle et d’étrier de19,3,20 et nécessitent beaucoup de temps et du travail21,22 , 23 , 24. par conséquent, ils sont souvent mesurés dans un nombre restreint de stolons ou rhizomes11,20,25 et se limitent souvent à la caractérisation morphologique des plantes uniquement. L’étude des traits de stolons et rhizomes dans une verrière mature implique d’échantillonnage d’une grande quantité de biomasse afin qu’habituellement seulement stolons et rhizomes poids sec densité (poids sec par unité de surface) sont déterminés7,11, 26 , 27. la masse sèche de stolons, en fait, peut être plus facilement mesurables que stolon longueur et le diamètre par échantillons dans une étuve de séchage. Toutefois, la longueur de stolon est une espèce importante et caractère variétal qui n’est pas bien lié à la masse sèche. Une étude récente sur le ray-grass anglais (Lolium perenne) a démontré qu’échantillons avec densité linéaire haute stolon n’avaient pas nécessairement stolon haute densité de poids6.
Analyse d’images systèmes permettent l’analyse des racines plus rapide28,29, plus précises et moins sujettes à l’erreur humaine30,21 que les méthodes manuelles traditionnelles31,32, 33. en outre, ces systèmes fournissent la grande flexibilité et outils facile à utiliser, y compris la lumière, configuration optique et la résolution, qui sont souvent calibré pour chaque scannés image34. Pornaro et al. 24 a démontré que le système de WinRHIZO, un système d’analyse image spécialement conçu pour la mesure des racines lavées, peut fournir une autre méthode pour analyser les traits de stolons et rhizomes plus complètement que les méthodes actuelles en surmontant erreurs de mesure causées par des erreurs humaines. Pour une description morphologique et des informations quantitatives sur la croissance des stolons et rhizomes, systèmes d’analyse d’images permet d’analyser un grand nombre d’échantillons rapidement, même avec une grande quantité de biomasse, ce qui permet d’augmenter la précision statistique. Par conséquent, progiciels de racine analyse fournissent une méthode de rechange, fiable et rapide pour l’étude de la croissance et la morphologie des stolons et rhizomes de plantes différentes espèces24.
Nous présentons une expérience menée en Italie du Nord-est pour étudier le développement de stolons et rhizomes de quatre cultivars d’observé (Cynodon SPP.). L’étude visait à accroître les connaissances sur le développement des stolons et rhizomes dans épépiné (« LaPaloma » et « Yukon ») et végétatives cultivars (« Patriot » et « Tifway ») d’observé. L’expérience a été établie en mai 2013 et gazon échantillons ont été prélevés sur trois dates d’échantillonnage par an, de l’automne 2013 à l’été 2015 [mars (avant la place verte), juillet (pleine saison) et octobre (avant la dormance hivernale)]. Pour la description et l’explication de cette méthode, nous avons utilisé des échantillons prélevés durant l’été de la deuxième saison de croissance (juillet 2014), dont l’importante biomasse des échantillons en ce moment a justifié la nécessité d’une analyse rapide. Le WinRHIZO, un outil de logiciel d’analyse d’images numériques spécialement conçu pour les mesures de la racine lavée, a servi à déterminer la densité de stolon longueur et diamètre moyen.
Le protocole décrit ici a été conçu et évalué pour l’étude des turfgrasses. Toutefois, il peut être utilisé sur un éventail d’espèces stolonifères ou rhizomateuses, avec les adaptations nécessaires selon leurs caractéristiques morphologiques, des conditions environnementales et échantillon nettoyage de précision.
Le diamètre moyen estimé par le présent protocole ne peut pas être comparé au diamètre entre-nœud mesuré avec un pied à coulisse. L’analyse d’image numérique comprend des nœuds et entrenoeuds dans le calcul du diamètre moyen, qui est le rapport entre la surface de projection total et total longueur. Tel que discuté par Pornaro et al. 24du diamètre moyen obtenu pour les stolons observé avec WinRHIZO système surestimé diamètre moyen valeurs mesurées avec l’étrier à l’entre-noeud. Diamètre du stolon est généralement utilisé pour décrire le diamètre des entrenœuds stolon et est un paramètre commun utilisé pour la description botanique18,25. Pour cette raison, Pornaro et al. 24 a souligné que diamètre moyen estimé par le biais de système de WinRHIZO et le diamètre de l’entre-nœud mesurée manuellement décrire deux aspects de la morphologie différente.
Le temps nécessaire pour effectuer ce protocole reste un facteur limitant pour l’analyse de routine. La plus longue phase est le nettoyage des échantillons (étape 2,4). Basé sur notre expérience, un échantillon de pelouse avec une grande quantité de biomasse de nettoyage (c’est-à-dire, 20 x 20 cm) nécessite environ trois personnes travaillant pour 2 à 4 heures. Comme décrit dans le protocole, le processus de nettoyage est nécessaire pour les deux le système d’analyse numérique et lors de l’utilisation de l’étrier et le souverain. Lorsque les échantillons sont constitués d’un nombre limité de stolons/rhizomes, le temps nécessaire pour recueillir des données avec les deux méthodes est semblable. Cependant, comme la taille de l’échantillon est augmentée, la méthode informatisée n’a pas un moment ultérieur augmenter, comme le seul facteur limitant est la surface du scanner. Au contraire, le temps nécessaire pour mesurer les organes avec la règle et l’étrier augmente avec le nombre des stolons ou rhizomes composant l’échantillon.
L’étude des traits de stolons et rhizomes dans turfgrasses mature a toujours été basée sur la mesure de la longueur de l’entre-nœud et le diamètre et la masse sèche poids7,11,26,27. En raison du grand temps nécessaire pour traiter les échantillons et la diminution de précision avec l’augmentation de la taille de l’échantillon, les mesures manuelles devraient se limiter à un petit nombre de stolons ou rhizomes11,20,25. Par conséquent, ils ne peuvent être appropriés pour les expériences de single-plante. L’avantage d’un système d’analyse image par rapport aux méthodes traditionnelles est qu’il qui permet de mesurer la longueur du grand stolon ou rhizome échantillons et calculer la densité de longueur et poids spécifique (rapport poids-longueur).
Ce protocole permet la mesure de longueur de stolons et rhizomes et calcul des densités de longueur dans les échantillons avec importante biomasse (pour lesquelles stolon ou rhizome poids est actuellement le seul paramètre utilisé pour la description de la morphologie). Longueur de stolon ou rhizome peut être un paramètre important dans de nombreuses études qui ne peut pas être estimée avec les techniques actuelles. Des études récentes sur gazon différentes espèces6 ont démontré que les densités de poids et de longueur stolon ne sont pas toujours corrélées, indiquant qu’il pourrait être souhaitable de mesurer plusieurs paramètres pour évaluer adéquatement le système stolons et rhizomes. Cette méthode devrait être particulièrement adapté pour le cultivar ou culturel comparaison des pratiques de gestion.
Plusieurs étapes dans le protocole sont essentiels pour une estimation réussie de longueur et un diamètre moyen de stolons et rhizomes. En raison de la forte variabilité de la morphologie de la plante sous des conditions environnementales différentes, le nombre d’échantillons (taille de l’échantillon) et zone de sol dimensions qui doivent être échantillonnés (dimension de l’échantillon) devraient être évalués avec soin et être aussi représentatif que possible de la population afin de réduire la variabilité des données. En outre, nettoyage racines et les feuilles des stolons avant que l’analyse est méticuleux travail nécessitant une attention particulière afin d’éviter des surestimations. Enfin, avant de traiter les images, il est recommandé de choisir soigneusement la largeur des classes et minimum diamètre en utilisant les options d’exclure tout ce qui n’est pas un stolon ou le rhizome de l’analyse. Chaque expérience requiert la sélection d’un diamètre minimum, comme le diamètre varie avec les espèces et les conditions environnementales, y compris les pratiques culturelles.
The authors have nothing to disclose.
Aucun.
laboratory tape | Any | NA | Tags may be used to label samples |
plastic bags | Any | NA | Any plastic bag can be used to keep samples until they have been cleened |
paper bags | Any | NA | Any paper bag can be used to keep cleaned samples to avoid mold formation |
paper towels | Any | NA | After samples have been washed with water and before to clean them with scissors it is helpful to put them on a paper towel to absorb water |
scissor | Any | NA | Any scissor with fine tips |
aluminium box | Any | NA | Any aluminium box large enough to contain the sample |
trays | Any | NA | It is helpful to use plastic tray to hold samples during the cleaning process |
sieve with 0.5-1.5 mm openings | Any | NA | Any sieve |
soil core sampler | Any | NA | We use core sampler for soil collection with diameter of at least 8 cm |
squared frame | Any | NA | To collect large samples we use squared frame (10 x 10 cm, or 15 x 15 cm, or 20 x 20 cm) |
spade | Any | NA | We use spade to pull out samples delimited with squared frame |
precision electronic balance | Any | NA | Any precision electronic balance |
laboratory oven | Any | NA | Any laboratory oven |
freezer | Any | NA | Any freezer |
WinRHIZO software | Regent Instruments Inc., Quebec | NA | Excluded the "basic" version |
WinRHIZO scanner | Regent Instruments Inc., Quebec | NA | WinRHIZO system includes a scanner calibrated for the software |
WinRHIZO scanner accessories | Regent Instruments Inc., Quebec | NA | WinRHIZO system includes accessories, as plastic tray and positioner, to be used with the scanner |