Здесь мы представляем протокол для характеризующие Моноцит подмножеств подачей cytometry цельной крови. Это включает в себя описанием как ворота подмножества и оценить их выражение поверхностных маркеров и дает пример оценки выражения (воспалительных) М1 и м2 маркеры (противовоспалительное).
Моноциты являются важнейшими действующими лицами в различных воспалительных заболеваниях и изменения этих ячеек, включая их подмножество пропорции и функции, может иметь патологическое значение. Идеальный способ для изучения изменения моноциты является цельной крови: проточная цитометрия, как минимальной обработки образцов этим методом ограничивает активации артефакты клеток. Однако многие применяются различные подходы для ворот Моноцит подмножеств, ведущих к несовместимым идентификации подмножеств между исследованиями. Здесь мы показываем методом проточной цитометрии цельной крови для выявления и характеризуют человека Моноцит подмножеств (классический, промежуточные и неклассические). Мы приводим как подготовить образцов крови для проточной цитометрии, ворота подмножеств (обеспечение загрязняющих клетки были удалены) и определить выражение подмножество Моноцит поверхностных маркеров — в этом примере M1 и M2 маркеров. Этот протокол может распространяться на другие исследования, которые требуют стробирования стандартный метод для оценки Моноцит подмножество пропорции и Моноцит подмножество выражение других функциональных маркеров.
Моноциты являются тип белых кровяных клеток, которые играют важную роль в поощрении и урегулировании воспаления. Существует три основных подмножество моноциты признанных, классическая (~ 85%), средний (~ 5%) и неклассические моноцитов (~ 10%), которые характеризуются их уровень Кластер дифференцировки (CD) 14 и CD16 выражение1. Пропорции Моноцит подмножеств могут отличаться с наличием болезней, например увеличение доли интермедиатов в различных воспалительных заболеваниях2,3 , включая сердечно-сосудистые заболевания, где уровень промежуточных является связанные с клинических явлений4,5. Кроме того в условиях заболевания, моноциты можно также пройти функциональные изменения, со многими изменениями, обнаруживаемых разница в поверхности маркер выражения6,7. Одним из таких примеров является Моноцит M1-наклон, увеличение маркеров, связанных с M1 макрофагов, который наблюдается в сердечно-сосудистых заболеваний и диабета, ожирение, метаболический синдром7,8,9 , 10.
Несмотря на популярность проточной цитометрии для оценки доли подмножество Моноцит и функции существует значительная изменчивость в пробоподготовки и подмножество стробирования между исследованиями, которые делает его трудным для сравнения результатов между такими исследованиями. Главное не существует консенсуса в демаркации Моноцит подмножеств, но стандартизированный подход необходим ввиду клиническую значимость изменений в пропорциях подмножества в нескольких заболеваний. Часть трудностей в стробирования проистекает из того факта, что моноциты дифференцировать от классической через промежуточные для неклассических подмножество11 и как таковой, моноциты существует как непрерывный спектр, а не отдельных популяций12 . Интересно, что Завада et al. показал, что использование либо прямоугольной или трапециевидные стробирования промежуточных подмножества, оба в результате подмножество выше промежуточных, предсказал сердечно конечной13. Это подчеркивает, что, по крайней мере для расчета пропорции, ключевым вопросом применение последовательной стробирования стратегии между различными образцы (исследования), вместо того, чтобы окончательно различать подмножеств. Хотя окончательное стробирования может быть более важным при оценке функции, изменения в маркер выражения между подмножествами добавочный12,14, и таким образом снова, последовательность в стробирования возможно является ключевым. Таким образом необходим объективный стробирования метод, который можно воспроизвести раскладками Моноцит подмножеств между различными образцами. Цель метода, представленные здесь заключается в ворота Моноцит подмножества с четкое объяснение и обоснование метода стробирования занятых и оценить подмножества для поверхности маркер выражения, обеспечивая тем самым метод, который позволяет исследователям иметь уверенность в использовании этой техники при оценке различных образцов.
Цельной крови проточной цитометрии является идеальный подход для изучения моноцитов, как клетки рассматриваются в условиях, приближенных к их физиологической микроокружения, обеспечивая понимание их роли в инфекции и воспалительных процессов. Кроме того использование свежих (т.е., необработанные) образцы крови сводит к минимуму изменения или преобразования клеток, которые могут произойти из-за хранения или обработки18,19, таких, как известно, происходят с замораживания размораживания моноцитов 20. подготовка оперативного образца рекомендуется как некоторые маркеры upregulated если образцы хранятся при комнатной температуре до переработке19. Титрование были определены оптимальные концентрации М1 и м2 маркеров, и это должно быть сделано для любых новых антитела ограничить неспецифической привязки, при одновременном обеспечении степени сдвиг объясняется выражение антигена и не ограничивается отсутствием антител. Удаление красных кровяных клеток и фиксации белых кровяных клеток с лизис решение является важным шагом в этом протоколе, как наличие красных кровяных клеток может мешать потока цитометрии21,22. Обратите внимание, что хотя некоторые лизис решения совместимы с без мыть окрашивание, яснее населения проявляется в наших руках, когда мыть шаг используется.
Правильную настройку проточный цитометр также имеет решающее значение при сравнении выражение Моноцит маркеров. Мы рекомендуем, что исследователи поддерживать интенсивностью флюоресценции последовательного целевого управления бисера и выполнять контроль качества на документа, который должен использоваться для обеспечения что последовательные результаты через различные образцы работать на разные дни. В дополнение к этому изотипа элементы управления используются для оказания помощи в толковании любой неспецифичный фонового сигнала, создаваемые неспецифическими антитела связывая. Моноциты имеют высокий уровень Fc рецепторов11 и поэтому подвержены неспецифической привязки. Следует отметить уровень неспецифической привязки отличается для разных подмножеств, и таким образом использование isotype управления становится важным при сравнении степень маркер выражения между подмножествами.
Другим важным критерием для рассмотрения является стробирования шаги работают. Некоторые исследования показывают, что важно привлечь туго ворота вокруг Моноцит населения в FSC(A)/SSC(A) участок избавиться от большинства не monocytic CD16 позитивные клетки23,24,25, но это может привести к потере некоторых Моноциты как non Моноцит клетки могут перекрываться с моноциты на FSC/SSC участки26. Скорее чтобы исключить любые другие клетки крови, которые могут загрязнить моноцитов, включение маркера третьего моноцитов CD14 и CD16, является важным26,27. По этой причине HLA-DR часто используется и является идеальным, поскольку он не выражен NK клеток или нейтрофилов17,28. Хотя лимфоциты (В-клетки и Т-клетки) могут выразить HLA-DR, они отличаются от моноцитов в отношении CD14 выражение. В то время как HLA-DR является идеальным третий маркер, CD86 также было рекомендовано5,27,29 , но здесь не используется как это также маркер M1 и таким образом была оценена степень его выражения на Моноцит подмножеств.
Проверка стробирования стратегия используется имеет решающее значение. В то время как клетки известны перекрываются с не classicals, если они не являются воротами из28, мы замечаем, что клетки B также могут перекрываться с не classicals (Рисунок 2B); является ли это случай в других исследованиях может зависеть от флюрохром выбор, инструмент конфигурации, чувствительности или даже болезнь условие рассматривается. Здесь, перекрывающиеся B клеток показали высокая экспрессия HLA-DR и были не закрытый, выбор HLA-DR клеток в Рисунок 1 d. Скорее, чтобы удалить клетки B мы использовали дополнительный участок CD14 / HLA-DR, где клетки B отделить от не classicals вследствие их выше HLA-DR и низким CD14 выражение.
Есть также много различных способов, в которых ворота для моноцитов, сами нарисовали в литературе; к ним относятся квадратами (подмножества разделяются квадрант маркеры) и прямоугольной или трапеции коробки13 (с отдельным коробки для каждого подмножества), который Кроме того отличают в их размещения, разграничение где заканчивается одно подмножество и начинается другой. Эти различия могут отражать тот факт, что моноциты существует континуум клеток, дифференцировать от классического к неклассической, а четко населения. Однако потому что различия в методах для определения подмножества, сами может привести к различиям в пропорциях подмножество вычисляемых Моноцит, становится важным, что метод стробирования достаточно объективный, а не субъективным, как это будет Сделайте этот метод более надежных и воспроизводимых. Некоторые исследования использовать элемент изотипа для окрашенных CD16 + для определения границы между классической и промежуточных подмножеств30. С другой стороны чтобы определить разделение интермедиаты и не classicals, было предложено, что светотеневой границы может быть вертикальный или наклонный, с выбором до следователей, условии, что она должна быть воспроизводимой, но прямоугольные ворота было рекомендовано для облегчения сопоставлений между исследования13,30,31. Здесь повышение объективности был получен путем печати данных на участке Зебра и применяя объективный визуальные правила, потому что Зебра участков обеспечивают дополнительные визуализации кий, смешивая цвета градиента для каждой равной вероятностью бен над традиционными контурное. Правая граница классической подмножества было обращено таким образом, чтобы население было равномерно распределены вокруг средней населения. Разделение между интермедиатов и не classicals также были стандартизированы, имея базы интермедиатов выровнять с нижней части концентрических кругов в рамках классической населения (т.е., промежуточные населения четко выражает высокий уровень CD14, согласно стандартной номенклатуры1).
Хотя некоторые исследования показали использования дополнительных маркеров, такие как C-C хемокиновых рецепторов типа 2 (CCR2) или 6-сульфогруппу LacNAc (SLAN) для получения успешного перечисление моноцитов и выявить их клиническое значение32,33 , в наших руках уровень выражения многих Моноцит функциональных маркеров широко варьируется от лица14. Такая вариация может ограничить полезность этих маркеров для определения подмножества на основе их выражения. Автоматизированной вычислительной подходы также были использованы для визуализации и кластер Моноцит подмножеств, включая визуальные интерактивные стохастических встраивание сосед (viSNE), t распределенных стохастика сосед встраивания (tSNE) или прогрессирования Spanning дерево Анализ плотности нормированный события (лопата)34,35, который может обеспечить визуальное представление ячеек, основанных на наборе используется несколько маркеров. В то время, как это было показано для повышения точности стробирования стратегии Моноцит подмножество классификации, признано, что недостатком является количество антител (и соответствующих Флюорофор каналов). Его полезность будет зависеть на вопросы; Дополнительные сложности не могут быть оправданными, например, в исследованиях перечисления.
Моноциты, закрытый с нашей техникой Показать пропорции согласно литературе и можно легко определить выражение поверхностных маркеров на три подгруппы. В целом методика и методология, объяснил здесь обеспечивает стандартизированный и простой метод перечисления Моноцит подмножество пропорции и оценки выражения поверхности маркер, который может быть расширен для включения других маркеров, а, тем самым проверка их функциональной роли в различных условиях.
The authors have nothing to disclose.
Проточной цитометрии была исполнена в поток цитометрии основного объекта, который поддерживается путем Уэстмид института исследований, Westmead институт медицинских исследований концентратор, рака Нового Южного Уэльса и национального здравоохранения и медицинских исследований Совета. Это исследование было поддержано клинических исследований химии и Фонд образования.
BD vacutainer blood collection set | Becton Dickinson | 367286 | |
BD vacuitainer K2E 5.5 mg plus blood collection tubes -3.0 ml | Becton Dickinson | 7128959 | |
Phospahate Buffered Saline (PBS) | Lonza | 17-516F | |
5ml polystyrene round bottom FACS tube (12 x 75 mm style) | Invitro technologies | 352054 | |
V450 Mouse Anti-Human CD14 Antibody [MφP9] | BD Biosciences | 560349 | |
APC Mouse monoclonal Anti-CD16 Antibody [3G8] | Abcam Australia | ab140477 | |
Per CP Anti-Human HLA-DR Antibody [L243] | BioLegend | 307628 | |
PE Mouse IgG1 κ Isotype Control [MOPC-21] | BD Biosciences | 555749 | Lot # 4283901 |
PE Mouse Anti-Human CD163 Antibody [GHI/61] | BD Biosciences | 556018 | Lot # 2335626 |
PE Mouse Anti-Human CD64 Antibody [10.1] | BD Biosciences | 558592 | Lot # 36768 |
PE Mouse Anti-Human CD86 Antibody [2331 (FUN-1)] | BD Biosciences | 555658 | Lot # 3109766 |
PE Mouse Anti-Human CD11b/Mac-1 Antibody [ ICRF44] | BD Biosciences | 561001 | Lot # 3228959 |
PE Mouse IgG2A Isotype control [20102] | R&D Systems | IC003P | Lot # 1212031 |
PE Human TNF RII/TNFRSF1B Antibody [22235] | R&D Systems | FAB226P | Lot # 612051 |
PE Mouse IgG1, κ Isotype Control [MOPC-21] | BioLegend | 400112 | Lot # B220359 |
PE Anti-human CD93 Antibody [VIMD2] | BioLegend | 336107 | Lot # B143544 |
PE Mouse Anti-Human CD3 Antibody [SK7] | BD Biosciences | 347347 | Lot # 3010929 |
PE Mouse Anti-Human CD19 Antibody [HIB19] | BD Biosciences | 561741 | Lot # 2307721 |
PE Mouse Anti-Human CD56 Antibody [B159] | BD Biosciences | 561903 | Lot # 3011796 |
PE Anti-human CD66b Antibody [G10F5] | BioLegend | 305105 | Lot # B154037 |
OptiLyse C | Beckman Coulter | A11895 | |
Formaldehyde solution 37% | Sigma | F1635 | |
BD FACSCanto II Flow Cytometer | BD Biosciences | ||
Automatic haematology analyser, XT-1800i | Sysmex | ||
Centrifuge GS-6R | Beckman | ||
Flowjo software v10.0.7 | Tree Star Inc |