Culture de tissus ovariens pour visualiser les phénomènes dans les ovaires de souris

Ovaires de souris femelles contiennent plusieurs milliers de follicules¹, et l’ovulation périodique mûrit environ dix ovocytes à chaque cycle oestrus. Follicules sont classées en plusieurs stades de développement : primordial, primaire, secondaire, antre et follicules de Graaf, selon la forme de la couche cellulaire de la granulosa entourant chaque ovocyte. La plupart des follicules primordiaux sont en dormance, et certains d’entre eux sont activent et se développer dans les follicules primaires à chaque cycle oestrus². Après la phase folliculaire secondaire, le développement folliculaire est principalement régie par gonadotrophines, folliculaires stimulante (FSH) et l’hormone lutéinisante (LH). Cependant, développement du follicule primordial et primaire est indépendant de gonadotrophine et les mécanismes de régulation qui régissent ces étapes restent mal inderstood^3,4,5. En plus de facteurs de croissance et les hormones, le follicule primordial et primaire est régi par les interactions entre les follicules^6,7. Donc, nous avons effectué des analyses de la dynamique du follicule dans les tissus de souris ovaire et a étudié les mécanismes de régulation associés à l’aide de cultures de tissus ovariens^8,9,10.

Ici, nous présentons deux méthodes de modèle de culture de tissu ovarien. Le premier est utilisé pour analyser le développement folliculaire par mesure des zones folliculaires, et le second est utilisé pour étudier le mécanisme de régulation au début du développement folliculaire de primordiale au stade de follicule secondaire avec des souris transgéniques. Pour l’analyse du développement folliculaire, nous avons utilisé principalement ovaires de souris femelles 4 – semaine vieux parce qu’ils permettent de faciliter la visualisation des follicules. Pour induire l’ovulation périodique et élaboration d’un modèle in vivo follicule, nous avons reproduit de LH et l’ovulation observée, l’atrésie folliculaire et la sécrétion d’estradiol dans des conditions de culture de tissus. Images des ovaires cultivées ont été capturés, et les processus de développement du follicule ont été analysées par des changements de traçage dans la région folliculaire. Toutefois, dans les analyses de champ lumineux de la microscopie, la distinction entre les follicules primaires primordiales et au début n’était pas claire. Ainsi, nous avons développé une méthode pour détecter les petits follicules et faire la distinction entre le primordial, principal, et follicule secondaire en culture des tissus ovariens à l’aide de Oogenesin1 pro3 (Oog1). 9 et les ovaires de souris transgéniques R26-H2B-mCherry 0 et 4 jours après la naissance,¹¹. Oog1 expression est détectable dans les ovocytes après l’entrée en méiose et augmente progressivement avec le développement du follicule, permettant l’observation de la transition de primordial à follicules primaires en utilisant des images de Time-lapse du tissu de l’ovaire cultivées^{11 ,},¹². Même si les méthodes morphologiques ont servi à étudier les facteurs qui activent des follicules primordiaux dormants^13,14,15,16, développement physiologique de follicules dans les ovaires est difficile à observer, et les effets de divers facteurs restent indéterminés. Les méthodes actuelles de culture ont été conçus pour répondre à cette pénurie en temps réel des analyses de facteurs de la cible.

Dans la présente étude, nous avons suivi le développement folliculaire à l’aide d’une méthode d’imagerie Time-lapse et caractérisé le processus du développement folliculaire. Nos nouvelles méthodes offrent un outil sans précédent pour l’étude de la physiologie des ovaires.