Summary

تحليل خلية واحدة من إيمونوفينوتيبي وإنتاج سيتوكين في الدم كله الطرفية عبر الخلوي الشامل

Published: June 26, 2018
doi:

Summary

هنا يصف لنا نهجاً البروتين وحيد الخلية لتقييم المناعة المظهرية والوظيفية (سيتوكين داخل الخلايا التعريفي) تعديلات في عينات الدم كله المحيطية، حلل عبر الخلوي الشامل.

Abstract

السيتوكينات تلعب دوراً محوريا في الآلية المرضية لأمراض المناعة الذاتية. ومن ثم تم قياس مستويات سيتوكين تركيز دراسات متعددة في محاولة لفهم آليات محددة تؤدي إلى انهيار سيلفتوليرانسي والمناعة الذاتية اللاحقة. النهج حتى الآن قد تم استناداً إلى دراسة جانب محدد من الجهاز المناعي (واحد أو بعض أنواع الخلايا أو السيتوكينات)، ولا توفر تقييما شاملا لأمراض المناعة الذاتية المعقدة. في حين أتاحت الدراسات المستندة إلى الأمصال المريض أفكاراً هامة في المناعة الذاتية، لا توفر مصدر السيتوكينات dysregulated الكشف عن الهاتف الخلوي محددة. اتباع نهج شامل في خلية واحدة لتقييم إنتاج سيتوكين في عدة مجموعات فرعية في الخلايا المناعية، في سياق “الجوهرية” الخاصة بالمريض البلازما تعميم العوامل، يرد هنا. هذا النهج يتيح رصد النمط الظاهري المناعي الخاصة بالمريض (علامات السطحية) والدالة (السيتوكينات)، أما لأن أصلي “الجوهرية المسببة للأمراض” مرض الدولة، أو في وجود العوامل العلاجية (في فيفو أو السابقين فيفو).

Introduction

أمراض المناعة الذاتية سببا رئيسيا للمراضة والوفيات التي تؤثر على 3-8 في المائة من السكان. في الولايات المتحدة، اضطرابات المناعة الذاتية من بين الأسباب الرئيسية للوفاة بين الشباب ومتوسطي العمر النساء (الإعمار < 65 سنة)1،2. اضطرابات المناعة الذاتية تتميز بعرض السريرية غير متجانسة والعمليات المناعية الأساسية المتنوعة. كذلك تمثل الطيف من عدم التجانس عبر الاضطرابات المختلفة، مثل مشاركة المشترك في التهاب المفاصل الرثياني (RA) والأمراض العصبية في التصلب المتعدد (MS). ومع ذلك، يتمثل هذا المستوى من عدم التجانس أيضا داخل اضطراب واحد، مثل الذئبة الحمامية الجهازية (SLE): يجوز تقديم بعض المرضى بأمراض الكلي، بينما يعاني الآخرون من مشاركة الدموية أو المشتركة3.

إيمونوباثوجينيسيس الكامنة في اضطرابات المناعة الذاتية مرايا التغايرية السريرية، التي تشمل وفرط-التنشيط التلقائي لعدة مجموعات فرعية الخلايا المناعية الفطرية والتكيف، وإنتاج سيتوكين dysregulated المصاحبة. بينما السيتوكينات تلعب دوراً محوريا في الآلية المرضية لأمراض المناعة الذاتية، فهم دورها المحدد في إليه المرض ثبت أن التحدي. تتميز السيتوكينات pleiotropy (سيتوكين واحد يمكن أن يكون آثار متعددة على أنواع مختلفة من الخلية)، التكرار (السيتوكينات متعددة يمكن أن يكون نفس التأثير)، وازدواجية (سيتوكين واحد يمكن أن يكون آثار برو أو مكافحة inflammatory تحت ظروف مختلفة)، واللدونه (يمكن أن يكون مصبوب السيتوكينات في دوراً مختلفاً عن واحدة “الأصلي”، اعتماداً على البيئة)4،،من56. ونتيجة لذلك، لا يميز أساليب السكان مستوى الاستجابات الخلوية غير المتجانسة لنفس “سيتوكين الوسط”. وبالمثل، لا تقدم تصاميم الدراسة التي تركز على جانب واحد من جوانب محددة في الجهاز المناعي (نوع وحيد الخلية أو سيتوكين)، تقييما شاملا لجميع العناصر المتورطة في أمراض المناعة الذاتية المعقدة. في حين أتاحت الدراسات المستندة إلى الأمصال المريض أفكاراً هامة في المناعة الذاتية، لا توفر مصدر السيتوكينات dysregulated الكشف عن الهاتف الخلوي محددة.

مؤخرا، طورنا نهجاً البروتين وحيد الخلية تقييم أنواع الخلايا المناعية متعددة في وقت واحد، والكشف عن هذه الاضطرابات سيتوكين مختلف في الوسط المريض “الممرضة” بلازما الدم الطرفية يتناقل عوامل محددة. سير العمل الموضحة هنا يتسم باستخدام عينات الدم كله الطرفية سليمة، بدلاً من خلايا الدم المحيطية المنعزلة وحيدات النوى (ببمكس). الدم كله هامشية تمثل المركبة الأكثر فسيولوجيا ذات الصلة لدراسة المرض المناعي بوساطة النظامية، بما في ذلك خلايا الدم 1) غير-وحيدات النوى غالباً ما تشارك في أمراض المناعة الذاتية (أي، العَدلات، والصفائح الدموية)، و 2) البلازما تعميم العوامل، مثل الأحماض النووية ومجمعات محصنة السيتوكينات، التي لها أدوار تفعيل المناعة. للقبض “الجوهرية المسببة للأمراض” إنتاج سيتوكين dysregulated، الدم المحيطي معالجة العينات مباشرة بعد سحب الدم (T0، الساعة الصفر)، وبعد ح 6 من الحضانة عند 37 درجة مئوية (درجة حرارة الجسم الفسيولوجية) مع نقل بروتين المانع في غياب أي شرط تحفيز خارجية (T6، ح 6 الوقت)، للكشف عن إنتاج سيتوكين (تراكم، T6-T0) التي تعكس حالة المرض “الجوهرية” (الشكل 1). دراسة العمليات dysregulated التي تعكس مدى أو التنشيط الناقص من إشارات سبل المشاركة في الاستجابات المناعية ذات الصلة بالمرض، وعينات الدم المحيطي تعامل (ح 6 الحضانة عند 37 درجة مئوية مع مثبط نقل بروتين) مع خارجية حفز شرط أن يعكس منشأ المرض، مثل عدد القتلى-مثل-مستقبلات (TLR) يضع في حالة الذئبة الحمامية المجموعية (T6 + R848، الساعة 6 ح مع 1 ميكروغرام/مل R848)، للكشف عن إنتاج سيتوكين التي تعكس استجابة للأحماض النووية (مقارنة T0 مقابل T6 مقابل T6 + R848، الشكل 1). دراسة الآثار إيمونومودولاتوري للعلاجات المتاحة السابقين فيفو، كما أنها تتصل بالعمليات الدقيقة dysregulated المناعة للمرضى محددة، يتم التعامل مع عينات الدم المحيطي مع مثبط جاك في ذات الصلة تكون العلاجية تركيز (هنا، 5 أم روكسوليتينيب؛ T6 + 5R، الوقت ح 6 مع 5 أم روكسوليتينيب)، للكشف عن التغييرات في حالة المرض “الجوهرية” في الاستجابة للدواء (T0 مقابل T6 مقابل T6 + 5R، الشكل 1). وقد اختير مثبط جاك لهذه الدراسة لمثبطات جاك قد ثبت نجاحها في علاج أمراض المناعة الذاتية مثل رع.

في نفس الوقت تقييم dysregulated العمليات الوارد وصفها أعلاه في متعددة الخلايا المناعية مجموعات فرعية، عينات الدم المحيطي من الذئبة الحمامية المجموعية معالجتها كما هو موضح أعلاه وتحليلها بواسطة الخلوي الشامل المرضى وضوابط صحية. الشامل الخلوي، المعروف أيضا قياس الوقت-الطيران، يقدم التحليل خلية واحدة من المعلمات ما يزيد على 40 دون تداخل القضايا الطيفي7،،من89. ويستخدم هذا الأسلوب نظائر المعادن الأرضية النادرة في شكل أيونات المعادن القابلة للذوبان كعلامات ملزمة للأجسام المضادة، بدلاً من فلوروفوريس10. ويمكن الاطلاع على تفاصيل إضافية فيما يتعلق بمنصة تكنولوجية الخلوي الشامل (أي ضبط ومعايرة، والحصول على عينة) في Leipold et al. ومكارثي et al. 11 , 12 العالية-أبعاد للخلوي الشامل تمكن قياس السيتوكينات متعددة في جميع أنحاء الخلية المناعية الفطرية وتكيفية مجموعات فرعية متزامنة مع خلية واحدة الحبوبية (جدول المواد).

معلمات السريرية والمختبرية التقليدية الحالية غالباً ليست حساسة أو محددة بما يكفي للكشف عن نشاط المرض الجارية أو الرد على إيمونومودولاتورس محددة13، مما يعكس الحاجة إلى ترسيم أفضل المناعة الكامنة التغييرات التي تدفع تفجر. نظراً لانتشار التقلبات سيتوكين في أمراض المناعة الذاتية، وقد حشدا نهج العلاج باستخدام الأجسام المضادة أو مثبطات الجزيئية صغيرة تستهدف السيتوكينات أو إشارات البروتينات المشاركة في تنظيم إنتاج سيتوكين ظهرت مؤخرا. في شكله الأساسي، النهج التحليلي الدم المحيطي الموصوفة هنا منبرا لتحديد مجموعات فرعية خلية dysregulated الخاصة بالمريض وإنتاج سيتوكين غير طبيعي في أمراض المناعة الذاتية مع مظاهر جهازية. تسمح هذه المنهجية لتخصيص الخيارات العلاجية كما يمكن التعرف على السيتوكينات dysregulated محددة، ومعاملة محددة يمكن أن تكون خيارات اختبار فيفو السابقين لتقييم قدرتها على إيمونومودولاتي المرض محددة المريض عملية.

Protocol

تمت الموافقة على جميع الأساليب الموصوفة هنا بولاية كولورادو متعددة المؤسسية استعراض المجلس (كوميرب) من جامعة كولورادو. يجب أن يتم تنفيذ جميع الإجراءات الموصوفة أدناه في غطاء زراعة الأنسجة عقيمة ما لم ينص على خلاف ذلك، مع نصائح الماصة التي تمت تصفيتها، وتصفية جميع المواد الكاشفة. <p class="jo…

Representative Results

الشكل 1 يوضح سير العمل للتحفيز وتجهيز عينات الدم المحيطية، بما في ذلك تخصيص مختبرين عينة الدم، النقل توقيت إضافة عوامل التحفيز، بروتين مثبط كوكتيل، والحضانة مرات حتى تحلل خلايا الدم الحمراء (RBC) والتثبيت. وسيتوقف اختيار عوامل حفز على مسارات الإشارات وسيت?…

Discussion

هنا يصف لنا الرواية، خلية واحدة، نهج البروتين لتقييم أنواع الخلايا المناعية متعددة في وقت واحد، والكشف عن هذه الاضطرابات سيتوكين مختلف في الوسط المريض “الممرضة” بلازما الدم الطرفية يتناقل عوامل محددة. يستخدم هذا الأسلوب الدم كله الطرفية كأداة تحليلية، والخلوي الشامل كأداة لتقييم المناع?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نود أن نشكر إيمي بوغ برنار لها مساهمات فكرية وتعليقات مفيدة. وأيد هذا العمل ووارنج “بوتشير مؤسسة ويب جائزة البحوث الطبية الحيوية” عدد K23-1K23AR070897 من المعاهد الوطنية للصحة لايلينا W.Y. هسيه. كما أيدها عدد جائزة K12-HD000850 من يونيس كينيدي شرايفر المعهد الوطني لصحة الطفل والتنمية البشرية وولوسيل باكارد لصحة الأطفال، وجامعة ستانفورد كتسا UL1 TR001085، وأبحاث صحة الطفل جامعة معهد ستانفورد.

Materials

Ruxolitinib Santa Cruz SC-364729A Stock Conc: 10 mM; Final Conc: 5 μM
R848 Invivogen tlrl-r848-5 Stock Conc: 1 μg/μL; Final Conc: 1 μg/mL
LPS-EK Invivogen tlrl-eklps Stock Conc: 1 μg/μL; Final Conc: 0.1 μg/mL
Sterile PBS Lonza 17-516F
Lyse/Fix Buffer BD biosciences 558049 Stock Conc: 5X; Final Conc: 1X (dilute in ddH2O)
 BD Phosflow perm/wash buffer I BD biosciences 557885 Stock Conc: 10X; Final Conc: 1:10 (dilute in ddH2O)
RPMI Gibco 21870-076
Sodium Azide (NaN3) Sigma-Aldrich S-8032 Stock Conc: >99.9%; Final Conc: 0.0002
Protein Transport Inhibitor (PTI) eBiosciences 00-4980-93 Stock Conc: 500X; Final Conc: 1X
DNA Intercalator Fluidigm 201192B Stock Conc: 500 μM; Final Conc: 0.1 μM
Cell Staining Media (CSM) PBS + 0.5% BSA, 0.02% NaN3
MaxPar Barcode Perm Buffer Fluidigm 201057 Stock Conc: 10X; Final Conc: 1X
20-plex Pd Barcode Set Fluidigm S0014 Stock Conc: n/a; Final Conc: n/a
EQ TM Four Element Calibration Beads Fluidigm 201078 Stock Conc: 10X; Final Conc: 1X
16% MeOH-free Formaldehyde Solution Thermo 28908 Stock Conc: 16% (w/v); Final Conc: 1.6% (w/v)
Sterile round bottom polystyrene tubes VWR 60818-496 Stock Conc: n/a; Final Conc: n/a
Polypropylene cluster tubes Light Labs A-9001 Stock Conc: n/a; Final Conc: n/a
Helios CyTOF instrument Fluidigm Helios All solutions to be used in CyTOF analysis need to be free of metal contamination. ddH2O is used in the preparation of any solutions should have a resistivity of at least 18.0 MΩ.cm. ddH2O and any self-prepared solutions should be stored in new plastic or glass bottles that have never been autoclaved.
Name Company Catalog Number Comments
Antibodies used for Mass Cytometry
Surface markers
CD1c Biolegend L161 Mass: 161
CD3 BD UCHT1 Mass: 144
CD4 Biolegend SK3 Mass: 174
CD7 BD M-T701 Mass: 149
CD8 Biolegend SK1 Mass: 142
CD11b Fluidigm ICRF44 Mass: 209
CD11c BD B-ly6 Mass: 152
CD15 BD HI98 Mass: 115
CD14 Biolegend M5E2 Mass: 154
CD16 eBioscience/Thermo B73.1 Mass: 165
CD19 Santa Cruz SJ25C1 Mass: 163
CD21 Biolegend Bu32 Mass: 141
CD27 BD L128 Mass: 155
CD38 Fluidigm HIT2 Mass: 172
CD45 total Biolegend HI30 Mass: 89
CD45RA Biolegend HI100 Mass: 153
CD56 Miltenyi REA196 Mass: 168
CD66 BD B1.1/CD66 Mass: 113
CD86 Fluidigm IT2.2 Mass: 150
CD123 Fluidigm 6H6 Mass: 143
CD278/ICOS Biolegend C398.4A Mass: 156
CD179/PD1 Biolegend EH12.2H7 Mass: 162
IgD Biolegend IA6-2 Mass: 146
IgM Biolegend MHM-88 Mass: 151
CXCR5 BD RF8B2 Mass: 173
HLADR Biolegend L243 Mass: 167
Cytokines
IL-1α Biolegend 364-3B3-14 Mass: 147
IL-1β Biolegend  H1b-98 Mass: 169
IL-1RA Santa Cruz  AS17 Mass: 157
IL-6 Biolegend MQ2-13A5 Mass: 164
IL-8 BD E8N1 Mass: 160
IL-12/IL-23p40 Biolegend  C8.6 Mass: 171
IL-17A Biolegend  BL168 Mass: 148
IL23p19 eBioscience/Thermo 23dcdp Mass: 176
MIP1β BD D21-1351 Mass: 158
MCP1 BD 5D3-F7 Mass: 170
IFNα Miltenyi  LT27:295 Mass: 175
IFNγ Biolegend 4S.B3 Mass: 165
PTEN BD A2B1 Mass: 159
TNFα Biolegend Mab11 Mass: 166
Note: If the manufacturer is stated as Fluidigm, this antibody was purchased from Fluidigm with metal pre-conjugated. If the manufacturer is stated as other than Fluidigm, this antibody was self-conjugated using the MaxPar Multi-Metal Labeling  Kit (Fluidigm Cat: 201300) according to manufacturer protocol. 

References

  1. Walsh, S. J., Rau, L. M. Autoimmune diseases: a leading cause of death among young and middle-aged women in the United States. American journal of public health. 90 (9), 1463-1466 (2000).
  2. Mak, A., Cheung, M. W. -. L., Chiew, H. J., Liu, Y., Ho, R. C. -. M. Global trend of survival and damage of systemic lupus erythematosus: meta-analysis and meta-regression of observational studies from the 1950s to 2000s. Seminars in arthritis and rheumatism. 41 (6), 830-839 (2012).
  3. Kaul, A., Gordon, C., et al. Systemic lupus erythematosus. Nature reviews. Disease primers. 2, 16039 (2016).
  4. Annunziato, F., Romagnani, S. Heterogeneity of human effector CD4+ T cells. Arthritis Research & Therapy. 11 (6), 257 (2009).
  5. Peck, A., Mellins, E. D. Plasticity of T-cell phenotype and function: the T helper type 17 example. Immunology. 129 (2), 147-153 (2010).
  6. Basso, A. S., Cheroutre, H., Mucida, D. More stories on Th17 cells. Cell research. 19 (4), 399-411 (2009).
  7. Ornatsky, O., Bandura, D., Baranov, V., Nitz, M., Winnik, M. A., Tanner, S. Highly multiparametric analysis by mass cytometry. Journal of Immunological Methods. 361 (1-2), 1-20 (2010).
  8. Ornatsky, O., Baranov, V. I., Bandura, D. R., Tanner, S. D., Dick, J. Multiple cellular antigen detection by ICP-MS. Journal of Immunological Methods. 308 (1-2), 68-76 (2006).
  9. Bendall, S. C., Simonds, E. F., et al. Single-Cell Mass Cytometry of Differential Immune and Drug Responses Across a Human Hematopoietic Continuum. Science. 332 (6030), 687-696 (2011).
  10. Bandura, D. R., Baranov, V. I., et al. Mass Cytometry: Technique for Real Time Single Cell Multitarget Immunoassay Based on Inductively Coupled Plasma Time-of-Flight Mass Spectrometry. Analytical Chemistry. 81 (16), 6813-6822 (2009).
  11. Leipold, M. D., Maecker, H. T. Mass cytometry: protocol for daily tuning and running cell samples on a CyTOF mass cytometer. Journal of visualized experiments : JoVE. (69), e4398 (2012).
  12. McCarthy, R. L., Duncan, A. D., Barton, M. C. Sample Preparation for Mass Cytometry Analysis. Journal of visualized experiments : JoVE. (122), (2017).
  13. Rahman, A., Isenberg, D. A. Systemic lupus erythematosus. The New England journal of medicine. 358 (9), 929-939 (2008).
  14. O’Gorman, W. E., Hsieh, E. W. Y., et al. Single-cell systems-level analysis of human Toll-like receptor activation defines a chemokine signature in patients with systemic lupus erythematosus. The Journal of allergy and clinical immunology. 136 (5), 1326-1336 (2015).
  15. O’Gorman, W. E., Kong, D. S., et al. Mass cytometry identifies a distinct monocyte cytokine signature shared by clinically heterogeneous pediatric SLE patients. Journal of Autoimmunity. 81, 74-89 (2017).
  16. Simonds, E. F., Bendall, S. C., et al. Extracting a cellular hierarchy from high-dimensional cytometry data with SPADE. Nature Biotechnology. , 1-8 (2011).
  17. Amir, E. -. A. D., Davis, K. L., et al. viSNE enables visualization of high dimensional single-cell data and reveals phenotypic heterogeneity of leukemia. Nature Biotechnology. 31 (6), 545-552 (2013).
  18. Bruggner, R. V., Bodenmiller, B., Dill, D. L., Tibshirani, R. J., Nolan, G. P. Automated identification of stratifying signatures in cellular subpopulations. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (26), E2770-E2777 (2014).
  19. Levine, J. H., Simonds, E. F., et al. Data-Driven Phenotypic Dissection of AML Reveals Progenitor-like Cells that Correlate with Prognosis. Cell. 162 (1), 184-197 (2015).
  20. Samusik, N., Good, Z., Spitzer, M. H., Davis, K. L., Nolan, G. P. Automated mapping of phenotype space with single-cell data. Nature Publishing Group. 13 (6), 493-496 (2016).
  21. Spitzer, M. H., Gherardini, P. F., et al. IMMUNOLOGY. An interactive reference framework for modeling a dynamic immune system. Science. 349 (6244), 1259425 (2015).
  22. Fienberg, H. G., Simonds, E. F., Fantl, W. J., Nolan, G. P., Bodenmiller, B. A platinum-based covalent viability reagent for single-cell mass cytometry. Cytometry Part A. 81 (6), 467-475 (2012).
  23. Jansen, K., Blimkie, D., et al. Polychromatic flow cytometric high-throughput assay to analyze the innate immune response to Toll-like receptor stimulation. Journal of Immunological Methods. 336 (2), 183-192 (2008).
  24. Zunder, E. R., Finck, R., et al. Palladium-based mass tag cell barcoding with a doublet-filtering scheme and single-cell deconvolution algorithm. Nature Protocols. 10 (2), 316-333 (2015).
  25. Lai, L., Ong, R., Li, J., Albani, S. A CD45-based barcoding approach to multiplex mass-cytometry (CyTOF). Cytometry Part A. , (2015).
  26. Mei, H. E., Leipold, M. D., Schulz, A. R., Chester, C., Maecker, H. T. Barcoding of live human peripheral blood mononuclear cells for multiplexed mass cytometry. The Journal of Immunology. 194 (4), 2022-2031 (2015).
  27. Finck, R., Simonds, E. F., et al. Normalization of mass cytometry data with bead standards. Cytometry Part A. 83 (5), 483-494 (2013).
  28. Takahashi, C., Au-Yeung, A., et al. Mass cytometry panel optimization through the designed distribution of signal interference. Cytometry. Part A : the journal of the International Society for Analytical Cytology. 91 (1), 39-47 (2017).

Play Video

Cite This Article
Baxter, R. M., Kong, D. S., Garcia-Perez, J. E., O’Gorman, W. E., Hsieh, E. W. Single-cell Analysis of Immunophenotype and Cytokine Production in Peripheral Whole Blood via Mass Cytometry. J. Vis. Exp. (136), e57780, doi:10.3791/57780 (2018).

View Video