Summary

Rilevazione di piccolo GTPase prenilazione e GTP Binding mediante frazionamento di membrana e GTPase-collegata dell'immunosorbente

Published: November 11, 2018
doi:

Summary

Qui descriviamo un protocollo per studiare la prenilazione e guanosina-5′-trifosfato (GTP)-caricamento di Rho GTPasi. Questo protocollo è costituito da due metodi dettagliati, vale a dire del kit membrana frazionamento e un GTPase-collegata dell’immunosorbente. Il protocollo può essere utilizzato per misurare la prenilazione e GTP caricamento di diverse altre piccole GTPasi.

Abstract

La famiglia di Rho GTPasi appartiene alla superfamiglia Ras e comprende circa 20 membri in esseri umani. Rho GTPasi sono importanti nella regolazione di diverse funzioni cellulari, tra cui la dinamica del citoscheletro, motilità cellulare, polarità cellulare, guida assonale, traffico vescicolare e controllo del ciclo cellulare. Cambiamenti nella segnalazione di GTPasi Rho svolgono un ruolo normativo essenziale in molte condizioni patologiche, quali cancro, malattie del sistema nervoso centrale e malattie del sistema immunitario-dipendente. La modifica di posttranslational di Rho GTPasi (cioè, prenilazione di mevalonate pathway intermedi) e grippaggio di GTP sono fattori chiave che influenzano l’attivazione di questa proteina. In questa carta, sono disponibili due metodi semplici ed essenziali per rilevare una vasta gamma di Rho GTPasi prenilazione e attività obbligatorie di GTP. Dettagli delle procedure tecniche che sono state utilizzate sono spiegati passo dopo passo in questo manoscritto.

Introduction

Rho GTPasi sono un gruppo di piccole proteine (21-25 kDa), che sono ben conservate nel corso dell’evoluzione e formano un’unica sottofamiglia della superfamiglia Ras di piccolo GTPases. In ciascuna sottofamiglia all’interno di questa superfamiglia, c’è un nucleo di dominio condiviso di G che è coinvolto nella attività GTPasica e del nucleotide exchange1. La differenza tra la famiglia di Rho e le altre sottofamiglie di Ras è la presenza di un “dominio di inserto Rho” all’interno del filo del βth 5 e il 4th α elica in piccole GTPasi dominio2.

Secondo la classificazione recente, Rho GTPasi sono considerati una famiglia di proteine che si inseriscono nella superfamiglia Ras GTPase3di segnalazione. Mammiferi Rho GTPasi hanno 22 membri in base alla loro funzione specifica e caratterizzazione generale4 in cui RhoA, Rac1 e Cdc42 sono tra i membri più studiato in questo gruppo. Rho GTPasi sono collegati a intracellulare segnalazione vie tramite un meccanismo strettamente regolato che è dipendente da interruttori molecolari via proteina modifiche di posttranslational5.

GTP caricamento e idrolisi sono meccanismi essenziali nel ciclo di attivazione/disattivazione delle GTPasi Rho e sono regolamentati tramite proteine Gap (Gap). Le lacune sono responsabili dell’idrolisi del GTP e lavorano in concerto con fattori di scambio di nucleotide della guanina (GEF) che sono responsabili per la reazione di GTP-caricamento. Inibitori di Rho PIL dissociazione (GDIs) forniscono ulteriore regolamento di piccole GTPasi Rho via associazione per l’associazione a PIL Rho GTPasi. Questo inibisce la dissociazione di PIL e facilita sequestrante di Rho GTPasi dai siti intracellulari attiva della membrana. Ci è inoltre ulteriore regolamento delle proteine GTPasi Rho che coinvolgono la prenilazione di GDIs che regola sia idrolisi del nucleotide e cambio e controlli GDP/GTP ciclismo1,6,7,8.

GTP-caricamento sia Rho GTPasi prenilazione sono coinvolti nel movimento di Rho GTPasi tra citosol e membrane cellulari modificando le proprietà lipofiliche di queste proteine1,9. I regolatori di cui sopra interagiscono con i fosfolipidi della membrana cellulare e di altre proteine modulante dell’attività di scambio GDP/GTP10. Inoltre, GDIs, inibitori di dissociazione, bloccare sia l’idrolisi del GTP e lo scambio GDP/GTP. GDIs inibiscono la dissociazione delle proteine Rho inattive dal PIL e, pertanto, la loro interazione con effettori a valle. GDIs regolano anche il ciclismo delle GTPasi tra il citosol e membrana nella cella. L’attività di Rho GTPasi dipende in gran parte loro movimento alla membrana delle cellule; così, GDIs sono considerati come regolatori critici che possono sequestrare GTPasi nel citoplasma attraverso nascondendo loro regione/domini idrofobici11,12.

Per Rho GTPasi ad avere una segnalazione ottimale e la funzione in tutte le fasi del suo ciclo di attivazione, il ciclo dinamico di idrolisi del GTP-caricamento/GTP è cruciale. Qualsiasi tipo di alterazioni in questo processo può comportare modifiche successive di funzioni cellulari regolamentate da Rho GTPasi, come cellula polarità, proliferazione, morfogenesi, citochinesi, migrazione, adesione e la sopravvivenza di13,14.

L’attuale protocollo fornisce ai lettori con un metodo dettagliato monitoraggio piccolo RhoA GTPase attivazione tramite l’indagine sui loro prenilazione e GDP/GTP caricamento. Questo metodo può essere utilizzato anche per rilevare la prenilazione e grippaggio di GTP di una vasta gamma di piccole GTPasi. Il GTPase-collegata dell’immunosorbente può essere utilizzato per misurare il livello di attivazione di altri generi di GTPasi, come Rac1, Rac2, Rac3, H, K o N-Ras, Arf e Rho15. La simvastatina agente farmacologico è usato come un esempio, come recentemente è stato segnalato per essere coinvolti nella regolazione di piccole GTPasi Rho prenilazione e attività8,9,14,16.

Protocol

1. la determinazione della localizzazione di RhoA mediante membrana/Cytosol frazionamento Trattamento della cultura e simvastatina Seme 50.000 di U251 cellule in un 100mm piatto e cultura li in di Dulbecco per volta medio dell’Aquila (DMEM) (alto glucosio, 10% di siero fetale bovino [FB]). Quando 30% confluenti, trattare le cellule rimuovendo il mezzo e aggiungere mezzo contenenti simvastatina ad esso (10 µM di simvastatina disciolto in dimetilsolfossido [DMSO]) e incubar…

Representative Results

Frazionamento di membrana: Ultracentrifugazione è stato usato per il frazionamento dei componenti della membrana e citoplasma. Come illustrato nella Figura 1, il surnatante contiene la frazione citosolica e il pellet contiene la frazione di membrana. L’abbondanza di RhoA in andmembrane citosolico frazioni ottenute da cellule U251 è stato esaminato dopo il trattamento con simvastat…

Discussion

Qui descriviamo un metodo accurato per misurare piccole GTPasi prenilazione e mostrato come piccolo GTPase localizzazione subcellulare (membrana rispetto al cytosol) e Rho GTP caricamento del grippaggio di GTP. Piccole GTPasi sono espressi nelle cellule eucariotiche e svolgono un ruolo essenziale nella proliferazione cellulare, della motilità e della struttura. Sia prenilazione e grippaggio di GTP sono coinvolti nella regolazione dell’attività GTPasica; di conseguenza, le analisi per valutare la prenilazione e…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Saeid Ghavami è stata sostenuta da una sovvenzione di funzionamento di salute scienza centro, CHRIM grant e ricerca Manitoba nuovo investigatore uso Grant di funzionamento. Javad Alizadeh è stato sostenuto da studentship ricerca Manitoba. Shahla Shojaei era sostenuto da un uso di salute scienza Foundation grant e la borsa di studio post-dottorato MITACS accelerare. Adel Rezaei Moghadam è stato sostenuto da una sovvenzione che era detenuto da Joseph W. Gordon di funzionamento di NSERC. Amir r. Zeki è stata sostenuta dal premio NIH/NHLBI K08 (1K08HL114882-01A1). Marek J. Los gentilmente riconosce il sostegno da NCN concedere #2016/21/B/NZ1/02812, supportato da LE STUDIUM Institute for Advanced Studies (regione centro-Val de Loire, Francia) attraverso il suo programma generale di Smart Loire Valley e co-finanziato dalla Marie Azioni di Sklodowska-Curie, concedere #665790. Simone da Silva Rosa è stato sostenuto da studentship UMGF.

Materials

DMEM high Glucose VWR (Canada) VWRL0101-0500
Fetal Bovine Serum VWR (Canada) CA45001-106
Penicillin/Streptomycin VWR (Canada) 97062-806
EDTA (Ethylenediamine tetraacetic acid) VWR (Canada) CA71007-118
EGTA (Ethylene glycol bis(2-aminoethyl ether)-N,N,N',N'-tetraacetic acid) VWR (Canada) CAAAJ60767-AE
DTT (DL-Dithiothreitol) VWR (Canada) CA97061-340
Ammonium Persulfate VWR (Canada) CABDH9214-500G
Tris-Hydroxymethylaminomethane VWR (Canada) CA71009-186
30% Acrylamide/Bis Solution Biorad (Canada) 1610158
TEMED Biorad (Canada) 1610801
Protease Inhibitor cocktail Sigma/Aldrich (Canada) P8340-5ML 1:75 dilution
Rho-GTPase Antibody Sampler Kit Cell Signaling (Canada) 9968 1:1000 dilution
Pan-Cadherin antibody Cell Signaling (Canada) 4068 1:1000 dilution
GAPDH antibody Santa Cruz Biotechnology (USA) sc-69778 1:3000 dilution
RhoA G-LISA Activation Assay (Luminescence format) Cytoskeleton Inc. (USA) BK121 Cytoskeleton I. G-LISA Activation Assays Technical Guide. 2016.
RhoA Antibody Cell Signaling 2117
ECL Amersham-Pharmacia Biotech RPN2209
Anti-Rabbit IgG (whole molecule) Peroxidase antibody Sigma A6154-1ML
SpectraMax iD5 Multi-Mode Microplate Reader Molecular Devices  1612071A Spectrophotometer
Nonidet P-40 Sigma 11332473001 non-denaturing detergent, octylphenoxypolyethoxyethanol
DMSO Sigma D8418-50ML
PBS Sigma P5493-1L
Phophatase Inhibitor cocktail Sigma P5726-5ML 1:75 Dilution

References

  1. Yeganeh, B., et al. Targeting the mevalonate cascade as a new therapeutic approach in heart disease, cancer and pulmonary disease. Pharmacology & Therapeutics. 143 (1), 87-110 (2014).
  2. Valencia, A., Chardin, P., Wittinghofer, A., Sander, C. The ras protein family: evolutionary tree and role of conserved amino acids. Biochemistry. 30 (19), 4637-4648 (1991).
  3. Hall, A. Rho family GTPases. Biochemical Society Transactions. 40 (6), 1378-1382 (2012).
  4. Rojas, A. M., Fuentes, G., Rausell, A., Valencia, A. The Ras protein superfamily: evolutionary tree and role of conserved amino acids. The Journal of Cell Biology. 196 (2), 189-201 (2012).
  5. Cherfils, J., Zeghouf, M. Regulation of small GTPases by GEFs, GAPs, and GDIs. Physiological Reviews. 93 (1), 269-309 (2013).
  6. Shojaei, S., et al. Perillyl Alcohol (Monoterpene Alcohol), Limonene. Enzymes. 36, 7-32 (2014).
  7. Ghavami, S., et al. Airway mesenchymal cell death by mevalonate cascade inhibition: integration of autophagy, unfolded protein response and apoptosis focusing on Bcl2 family proteins. Biochimica et Biophysica Acta. 1843 (7), 1259-1271 (2014).
  8. Alizadeh, J., et al. Mevalonate Cascade Inhibition by Simvastatin Induces the Intrinsic Apoptosis Pathway via Depletion of Isoprenoids in Tumor Cells. Scientific Reports. 7, 44841 (2017).
  9. Ghavami, S., et al. Mevalonate cascade regulation of airway mesenchymal cell autophagy and apoptosis: a dual role for p53. PLoS One. 6 (1), e16523 (2011).
  10. Tang, Y., Olufemi, L., Wang, M. T., Nie, D. Role of Rho GTPases in breast cancer. Frontiers in Bioscience: A Journal and Virtual Library. 13, 759-776 (2008).
  11. DerMardirossian, C., Bokoch, G. M. GDIs: central regulatory molecules in Rho GTPase activation. Trends in Cell Biology. 15 (7), 356-363 (2005).
  12. Garcia-Mata, R., Boulter, E., Burridge, K. The ‘invisible hand’: regulation of RHO GTPases by RHOGDIs. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 12 (8), 493-504 (2011).
  13. Etienne-Manneville, S., Hall, A. Rho GTPases in cell biology. Nature. 420 (6916), 629-635 (2002).
  14. Ghavami, S., et al. Geranylgeranyl transferase 1 modulates autophagy and apoptosis in human airway smooth muscle. American Journal of Physiology – Lung Cellular and Molecular Physiology. 302 (4), L420-L428 (2012).
  15. Clark, E. A., Golub, T. R., Lander, E. S., Hynes, R. O. Genomic analysis of metastasis reveals an essential role for RhoC. Nature. 406 (6795), 532-535 (2000).
  16. Ghavami, S., et al. Statin-triggered cell death in primary human lung mesenchymal cells involves p53-PUMA and release of Smac and Omi but not cytochrome c. Biochimica et Biophysica Acta. 1803 (4), 452-467 (2010).
  17. Cordle, A., Koenigsknecht-Talboo, J., Wilkinson, B., Limpert, A., Landreth, G. Mechanisms of statin-mediated inhibition of small G-protein function. Journal of Biological Chemistry. 280 (40), 34202-34209 (2005).
  18. Waiczies, S., Bendix, I., Zipp, F. Geranylgeranylation but not GTP-loading of Rho GTPases determines T cell function. Science Signaling. 1 (12), pt3 (2008).
  19. Waiczies, S., et al. Geranylgeranylation but not GTP loading determines rho migratory function in T cells. Journal of Immunology. 179 (9), 6024-6032 (2007).
  20. Satori, C. P., Kostal, V., Arriaga, E. A. Review on Recent Advances in the Analysis of Isolated Organelles. Analytica Chimica Acta. 753, 8-18 (2012).
  21. Berndt, N., Sebti, S. M. Measurement of protein farnesylation and geranylgeranylation in vitro, in cultured cells and in biopsies, and the effects of prenyl transferase inhibitors. Nature Protocols. 6 (11), 1775-1791 (2011).
  22. Keely, P. J., Conklin, M. W., Gehler, S., Ponik, S. M., Provenzano, P. P. Investigating integrin regulation and signaling events in three-dimensional systems. Methods in Enzymology. 426, 27-45 (2007).
  23. Oliver, A. W., et al. The HPV16 E6 binding protein Tip-1 interacts with ARHGEF16, which activates Cdc42. British Journal of Cancer. 104 (2), 324-331 (2011).
  24. Moniz, S., Matos, P., Jordan, P. WNK2 modulates MEK1 activity through the Rho GTPase pathway. Cellular Signalling. 20 (10), 1762-1768 (2008).

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Alizadeh, J., Shojaei, S., da Silva Rosa, S., Rezaei Moghadam, A., Zeki, A. A., Hashemi, M., Los, M. J., Gordon, J. W., Ghavami, S. Detection of Small GTPase Prenylation and GTP Binding Using Membrane Fractionation and GTPase-linked Immunosorbent Assay. J. Vis. Exp. (141), e57646, doi:10.3791/57646 (2018).

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