Здесь мы предлагаем недорогой и надежный метод для создания electroporated мозга organotypic срез культур из эмбрионов мыши подходит для confocal микроскопии и жить изображений техники.
ГАМК интернейронов (INs) являются важнейшими компонентами нейрональных сетей, которые управляют познания и поведения. Модули, предназначенные для заполнения коры мигрируют касательной от их места происхождения в вентральной конечного мозга (в том числе от медиальной и хвостовой Ганглиозный Высокопреосвященства (MGE, КГЭ)) спинной пластины корковых в ответ на разнообразные внутренние и внешние подсказки. Были разработаны различные методологии годами генетически манипулировать конкретные пути и исследовать, как они регулируют динамических цитоскелета изменения, необходимые для правильного в миграции. В утробе матери электропорации широко применяется для изучения эффекта генов репрессий или гиперэкспрессия в конкретных в подтипы оценивая влияние на морфологию и окончательную позицию. Однако, хотя этот подход легко используется для изменения радиально мигрирующих пирамидных клеток, это более технически сложно при ориентации соц.страх в утробе матери электропорации генерирует низкой урожайностью, учитывая снижение выживаемости потомства при Электропорация проводится перед e14.5, как это принято при изучении МГЕ производные INs. В альтернативный подход МГЕ эксплантов обеспечивают легкий доступ к МГЕ и облегчить изображений генетически модифицированных модулей. Однако в этих эксплантов INs мигрируют в искусственных матрицы, лишенный эндогенного указания подсказки и таламуса входов. Это побудило нас, чтобы оптимизировать метод, где модули можно перенести в более натуралистических окружающей среды, в обход технических проблем в утробе матери подходов. В настоящем документе мы описываем сочетание бывших utero электропорации мозги эмбриона мыши следуют organotypic срез культур легко отслеживать, изображения и реконструировать генетически модифицированных модулей мигрируют вдоль их естественные пути в ответ на эндогенные подсказки. Этот подход позволяет для количественной оценки динамических аспектов миграции с покадровой конфокальная томография, а также подробный анализ различных морфологических параметров, с помощью нейронов реконструкций на фиксированной полученных ткани.
Корковых интернейронов ГАМК (INs) разнообразны в отношении их биохимических свойств, физиологические свойства и связи, и они посредником различные функции в зрелых сетей1,2,3 ,4,5. Спецификация различные подтипы корковых INs жестко регулируется через генетических каскадов, которые были широко изучены1,2. Большинство (70%) корковых ГАМК INs происходят из прародителей в медиальной Ганглиозный возвышение (MGE), вентрально расположен эмбриональной структурой и необходимо перенести на относительно большие расстояния до корковых пластина1, 2 , 6. Хотя кортикального слоя пирамидальных клеток мигрировать радиально от желудочков зоны (VZ) коры пластины вдоль радиальной глии эшафот, тангенциальная миграции модулей, которые не присоединены к такой леску, требует целого ряда внутренних и внешние сигналы для привлечения мигрирующих нейронов к пластину кортикального слоя, при этом направляя их от не корковых структур2,,78. После выхода клеточного цикла, модули отталкиваются от MGE от химио отвратительный подсказки, выраженных в VZ MGE, который вызывает тангенциальная миграции к корковых плита9,10. Перенос INs избежать стриатума с помощью различных отталкивающим подсказки11 и, после достижения корковых пластины, они с тангенциальным переключиться в режим радиальная миграция и добраться до их окончательного ламинарные позиции, частично в ответ на сигналы от пирамидальной клетки12 и других клеточных популяций13. Миграция модули, что касается других нейрональных популяций, включает в себя различные динамические морфологических изменений разрешить фактическое движение нейрона. Этот так называемый нейронов локомоции характеризуется повторяющихся циклов трех последовательных этапов: удлинение ведущих процесс, активно антероградная движения ядра (nucleokinesis) и Ретракция конечные процесса14. В миграции регулируется многочисленные внутренние и внешние сигналы, которые управляют ветвления и активного ремоделирования ведущих процесса для руководства INs в правильном направлении, определение ориентации и скорость миграции14,15 ,16.
В последние годы1,2,7,,1718,19,20, широко изучены факторы, регулирующие корковых в миграции и нарушения в некоторых из этих молекулярных субъектов было постулировано приведет к нервной расстройств, например педиатрических огнеупорных эпилепсии или аутизм спектра расстройства1,2,21, 22 , 23 , 24. Таким образом, чтобы существенно продвинуть вперед нашу способность изучать этот динамичный процесс, как ранее рассмотренных25проводилась разработки различных подходов in vitro и in vivo . В vitro методы, включая Бойден Пробирной палаты и полоса выбор Assay, обеспечивают быстрый и наиболее воспроизводимого средства оценки требования и клеток автономная воздействия конкретных генов и белков во время миграции нейронов, без влияния других факторов25. Эти анализы являются особенно полезными, когда в сочетании с живой изображений8,,2627. С помощью этих методов модули легко извлекаются из e13.5 МГЕ и изолированные ферментативные и механических диссоциации, после чего можно исследовать различные сигнальные пути и указания подсказки, как показано ранее8,28 . Однако эти анализы проходят в искусственных внеклеточного матрикса в отсутствие трехмерные ткани архитектуры, которые могут изменить нейрональных поведение и ячейки свойства, потенциально влияющие ячейки миграции и/или выживание25. Чтобы обойти эти ограничения, ex vivo МГЕ эксплантов были разработаны как альтернативную инструмент для количественной оценки динамических морфологические изменения, происходящие во время миграции, а также такие параметры, как скорость и ориентации в14, 29. Создание МГЕ эксплантов является относительно простым и была широко описано в других разделах30. Это предполагает покрытие небольшой экстракт МГЕ на монослое смешанных корковых клеток или в смеси matrigel и коллагена в присутствии привлекательным или отталкивающего подсказки25, хотя последние являются Факультативным31. МГЕ эксплантов позволяют высоким разрешением изображений малонаселенных помеченных клеток, упрощение исследования внутриклеточных процессов, таких как цитоскелета реконструкции в процессе ведущих ветвления, как показано ранее32,33 ,34 и в настоящем исследовании. МГЕ эксплантов успешно использовались для оценки динамических цитоскелета изменения во время миграции в 2D среде, например после конкретных фармакологических или эозинофилов манипуляций (см., например, Тиленс et al. 201633) . Однако с этим подходом, INs мигрируют в пределах искусственного матрицы, и это может привести к изменению в поведении и воспроизводимость и значимость экспериментальные результаты.
Напротив в утробе матери электропорации позволяет генетические манипуляции INs в их родной среде и широко используемый метод, чтобы быстро и эффективно оценить влияние выгоды и потери функции гена в обход ограничений дорогостоящей и трудоемкой Выбивное и стук в стратегии25,35. В утробе матери электропорации может быть смещенной в отношении в прародителей, используя ячейки типа конкретных промоутеров и позиционирование электрода к вентромедиального структур, в том числе МГЕ36. Кроме того в утробе матери электропорации позволяет своевременно выражение экспериментальных конструкций в течение 1-2 дней, по сравнению с 7-10 дней, необходимых для конструкции выражения с использованием вирусных векторов25. Однако в утробе матери электропорации из в прародителями клонит быть малой мощности. Действительно, хотя пирамидальной клетке прародителями, расположенных в зоне спинной желудочков может эффективно transfected в утробе матери электропорация, ориентации более вентрально расположен структур, таких как MGE, более технически сложных, особенно в небольших e13.5 эмбрионы и высокий уровень эмбриональных летальность далее уменьшает экспериментальная урожайность25.
Чтобы обойти некоторые технические ограничения, связанные с in vitro МГЕ explant экспериментов и в естественных условиях в утробе электропорация, ex vivo organotypic срез культур были развитыми8,37, 38,39. Мозг organotypic срез культур предложение условия преимущество передразнивать в естественных условиях , будучи менее дорогостоящим и длительным, чем формирование животных моделей25. Действительно эти препараты позволяют легко доступ к MGE, наряду с конкретными визуализации INs и могут быть объединены с фокуса электропорации расследовать конкретные молекулярные пути в Син, перенос в более физиологических окружающей среды8 , 39 , 40 , 41. Поэтому мы оптимизировали подход для organotypic культур38, который мы в сочетании с экс-utero электропорации и time-lapse конфокальная томография, для дальнейшей оценки происходящих морфологических и динамичный процесс во время тангенциального миграции МГЕ-модулей. Настоящий Протокол была адаптирована и оптимизирована от других, которые использовали для изучения миграции пирамидальных клеток42,43 бывших внутриутробно или в утробе матери мозга электропорации и organotypic срез культур и корковых INs36,,3944. В частности обезглавлен эмбрионов мыши и MGE является electroporated ex vivo после внутрижелудочкового введения экспериментальной плазмиды, позволяя более эффективной и точной ориентации МГЕ прародителей чем то, что может быть достигнуто с в утробе матери электропорации. Затем извлекаются мозги и секционного корональных ломтиками весь мозг, которые могут быть культивировали на несколько дней, таким образом позволяя непрерывное отслеживание и изображений из transfected INs. Этот подход обычно этикетки вскользь миграция модули 5-20 на срез мозга, свести к минимуму количество экспериментальных итераций, необходимых для достижения статистической значимости, при маркировке достаточно редкий нейронов населения для обеспечения легко разделение отдельных нейронов для реконструкции и тонкой морфологической оценки. Кроме того по сравнению с МГЕ эксплантов, organotypic культур убедитесь, что миграция модули подвергаются более естественной окружающей среды, включая локально выделяется chemokines и входы от таламуса афферентов. Таким образом, этот подход является хорошо подходит для количественного определения направленности и пути миграции, принятых transfected INs, предлагая достаточно анатомические детали, чтобы позволить характеристика тонкой динамических процессов, таких как ведущий процесс ветвления, nucleokinesis и завершающие процесс отзыва.
В этой статье мы предоставляем надежный метод для выполнения ex utero электропорации МГЕ мыши на e13.5 и для поколения organotypic культурах эмбриональных мозга фрагментов. Хотя в vitro методы, такие как Пробирная палата Бойден, сравнительно легко выполнить и могут быть использованы для оц…
The authors have nothing to disclose.
Эта работа была поддержана операционной гранты от Фонда Savoy и лечения эпилепсии Фонда и оборудованием гранты от Канадского фонда для инноваций E.R (Конфокальный микроскоп) и G.H (вращение диска конфокального микроскопа). Е.р. получает премию карьеры от Fonds de recherche дю Квебек-Santé (FRQ-S; Премия Clinician-Scientist) также, как от канадской институтов для медицинских исследований (КНИИЗ; Молодой следователь Award). Г.Х. — старший ученый FRQ-S. ЕГ.Ф является получателем Steriade-Savoy докторантура награду от Фонда Savoy, Чу Сент-Жюстин фонд докторантура премии и премии докторантура FRQ-S, в партнерстве с Фондом звёзд. Этот проект стал возможным мозга Канады через Фонд исследований мозга Канады, при финансовой поддержке Министерства здравоохранения Канады, присуждена л.е.
Neurobasal Medium | ThermoFisher Scientific | 21103049 | Commercially available neuron-specific culture medium. Complete formulation available on this website: https://www.thermofisher.com/ca/en/home/technical-resources/media-formulation.251.html |
B-27 serum-free supplement | ThermoFisher Scientific | 17504044 | 50X Serum-free neuron specific supplement |
15 mL sterile centrifuge tubes | Sarstedt | 62.554.002 | |
Leibovitz's (1X) L-15 Medium (+ L-Glutamine) | ThermoFisher Scientific | 11415064 | Commercially available neural-based culture medium supplemented with amino acids, vitamins and inorganic salts. Complete formulation available on the distributor's website |
L-Glutamine | Invitrogen | 25030-081 | |
Horse serum, heat inactivated | Millipore-Sigma | H1138-500ML | |
Neurocell supplement N-2 100X | Wisent | 305-016 | Botteinstein's N-2 Formulation |
VWR Square PETG Media Bottles 125 mL | VWR | 89132-062 | |
Class II Type A Biosafety Cabinet | Nuaire | NU-540 | |
Sucrose | BioShop | SUC700.1 | |
Sodium Chloride | BioShop | SOD001.1 | |
Sodium bicarbonate | ThermoFisher Scientific | S233-500 | |
D+ glucose | Millipore-Sigma | G7528-250G | |
Potassium Chloride | ThermoFisher Scientific | P217-500 | |
Sodium phosphate monobasic anhydrous | BioShop | SPM400.500 | |
Calcium chloride dihydrate | ThermoFisher Scientific | C79-500 | |
Magnesium sulfate heptahydrate | BiosShop | MAG522 | |
Agarose | BioShop | AGA002.500 | |
50 mL sterile centrifuge tubes | Sarstedt | 62.547.004 | |
1.5 mL centrifuge tubes | Sarstedt | 72.690.001 | |
P-97 Flaming/Brown Micropipette puller | Sutter Instruments Co. | Model P-97 | |
0.4 mm I.D. x 75 mm Capillary Tube | Drummond scientific | 1-000-800/12 | |
Ethanol | VWR | E193 | |
5 mL syringe | Becton Dickinson & Co | 309646 | |
Mineral Oil (heavy) | Rougier Pharma | ||
WPI Swiss Tweezers #5 | World Precision Instruments | 504511 | 11 cm, straight, 0.06×0.07mm tips, antimagnetic. You will need 2 of these. |
WPI Swiss Tweezers #7 | World Precision Instruments | 504504 | 11.5 cm, 0.18×0.2mm, curved tips |
HTC Tweezers | World Precision Instruments | 504617 | 11 cm, Straight, flat |
Operating scissors | World Precision Instruments | 501225 | 16 cm, Sharp/sharp, straight. You will need 3 of these. |
Dressing Forceps | World Precision Instruments | 501217 | 12.5 cm, straight, serrated |
Iris Forceps | World Precision Instruments | 504478 | 10.2 cm, full curve, serrated |
DeBakey Tissue Forceps | World Precision Instruments | 501996 | 15 cm, 45° angle, Delicate Jaw, 1.5mm wide |
Fisherbran Microspatula with rounded ends | FisherScientific | 21-401-5 | You will need 2 of these. |
Nanoject II Auto-Nanoliter Injector | Drummond scientific | 3-000-204 | |
TC Dish 60, Standard | Sarstedt | 83.3901 | 60-mm dish |
Tissue culture dish | Sarstedt | 83.1800 | 35-mm dish |
Black Wax | FisherScientific | S17432 | |
Transfer pipettes | Ultident | 170-CTB700-212 | 3 mL, small bulb |
Stereo Microscope | Leica Biosystems | Leica M80 | In replacement to our stereomicroscope which has been discontinued by the manufacturer (StereoMaster from FisherScientific) |
Electro Square Porator | BTX Harvard Apparatus | ECM 830 | |
Tweezertrodes, Plattinum Plated, 3mm | BTX Harvard Apparatus | 45-0487 | |
25G 1 1/2 | Becton Dickinson & Co | 305127 | |
Leica VT1000S Vibrating blade microtome | Leica Biosystems | VT1000S | |
GEM, Single edge razor blade | Electron Microscopy Sciences | 71952-10 | Remove the blunt end before inserting in the blade designated space of the vibratome |
µ-Slide 8 well | Ibidi | 80827 | Pack of 15 |
Millicell cell culture insert | Millipore-Sigma | PICM0RG50 | 30 mm, hydrophilic PTFE, 0.4 µm pore, pack of 50. |
Leica DMi6000 microscope | Leica Microsystems | N/A | |
Spinning disk confocal head Ultraview Vox | Perkin Elmer | N/A | |
Volocity 6.0 acquisition software | Improvision/Perkin Elmer | N/A | |
LiveCell Stage top incubation system | Pathology devices | LC30030 | Provides Temperature, CO2 and humidity control. |
SP8 confocal microscope | Leica | ||
mCherry-Lifeact-7 | Addgene | 54491 | Gift from Michael Davidson |
Fast Green FCF | Millipore-Sigma | F7258-25G | 25G bottle, certified by the Biological Stain Commission |