Questo articolo descrive una metodologia dettagliata per mutagenesi casuale di un determinato gene in lievito di fissione. Ad esempio, noi target rpt4 +, che codifica per una subunità del proteasoma 19S e schermo per le mutazioni che destabilizzare eterocromatina.
Mutagenesi casuale di geni bersaglio è comunemente usata per identificare le mutazioni che producono il fenotipo desiderato. Dei metodi che possono essere utilizzati per raggiungere mutagenesi casuale, errori PCR è una strategia conveniente ed efficiente per la generazione di un pool di diverso mutanti (i. e., una libreria mutante). Errori PCR è il metodo di scelta quando un ricercatore cerca di mutare una regione pre-definita, come la regione di codificazione di un gene lasciando inalterato altre regioni genomiche. Dopo la libreria mutante è amplificata dalla PCR errori, deve essere clonato in un plasmide adatto. La dimensione della biblioteca generata da errori PCR è limitata dall’efficienza del passaggio clonazione. Tuttavia, il lievito di fissione, Schizosaccharomyces pombe, il clonazione passo possa essere sostituito dall’uso di una fusione altamente efficiente One-Step PCR per generare costrutti per la trasformazione. Mutanti di fenotipi desiderati quindi sono selezionabili utilizzando appropriati ai giornalisti. Qui, descriviamo questa strategia in dettaglio, prendendo come esempio, un reporter inserito all’eterocromatina centromerica.
Genetica in avanti è un metodo classico, in cui i ricercatori cercano mutanti naturali che visualizzano un fenotipo particolare ed eseguire analisi genetiche. In genetica inversa, mutazioni vengono introdotti in un gene di interesse ed il fenotipo è esaminato. In quest’ultimo caso, mutagenesi casuale di un gene target viene spesso utilizzata per generare un pool di mutanti che sono successivamente selezionato per desiderata fenotipi, come sensibilità di temperatura o alterati di attività enzimatica. Possono essere utilizzati vari metodi per raggiungere mutagenesi casuale, tra cui errori PCR1; Di irradiazione UV2; mutageni chimici, ad esempio methanesulfonate etilico (EMS) o acido nitroso3; l’uso di ceppi di mutator temporanei, come quelli che sovraesprimono mutD5 4; e DNA shuffling5.
Qui, descriviamo una strategia inversa-genetica in cui utilizziamo errori PCR per generare mutanti piscine per un gene dell’obiettivo del lievito di fissione. Come si potrebbe intuire dal suo nome, questo metodo genera mutazioni introducendo deliberatamente errori durante la PCR. A differenza di altri metodi di mutagenesi, errori PCR permette all’utente di definire la regione a essere mutagenizzato. Questo rende particolarmente utile negli sforzi per studiare la funzione di una proteina/dominio di interesse.
Per illustrare questa procedura di mutagenesi casuale, qui usiamo rpt4 +, che codifica per la subunità del proteasoma 19S, come un esempio. Rpt4 ha dimostrato di avere funzioni di proteolisi-indipendente negli organismi diversi da fissione lievito6,7,8,9, e un difetto nella proteolisi potrebbe causare effetti indiretti alterando proteine livelli. Abbiamo, quindi, sottoposti a screening per mutanti che ha attivato la proteolisi-indipendente modifiche, con l’obiettivo di indagare la funzione del proteasoma su eterocromatina.
Errori PCR può essere applicato a qualsiasi regione del gene regolando la posizione a cui associare il primer. Mutanti che presentano la variazione fenotipica desiderata possono essere identificati con i giornalisti appropriati. Qui, abbiamo utilizzato un reporter ade6 + inserito al centromero 1 esterno ripetere (otr) regione10. Eterocromatina costitutiva è formata a questa regione11, così il ade6 + reporter viene messo a tacere nella condizione di selvaggio-tipo; Questo è indicato da colonie rosse10. Una mutazione che destabilizza l’eterocromatina costitutiva al centromero porterà all’espressione del ade6 + reporter, che è visualizzato come colonie bianchi.
Mutagenesi casuale tramite PCR errori è un potente strumento per la generazione di un pool di diverso mutanti in una determinata regione. Questa tecnica è particolarmente utile per gli studi che cercano di valutare la funzione di una proteina in una circostanza specifica. Ad esempio, abbiamo utilizzato nel presente documento errori PCR per valutare la funzione della 19S proteasome subunità, Rpt4, nella manutenzione di eterocromatina. Variando la regione mirato dalla PCR errori e regolare le condizioni di selezione, si…
The authors have nothing to disclose.
Finanziamento per questo progetto è stato fornito dal programma di ricerca di scienza base attraverso la National Research Foundation di Corea (NRF) finanziato dal Ministero delle scienze e TIC (2016R1A2B2006354).
1. Media | |||
Glucose | Sigma-Aldrich | G8270-10KG | |
Yeast extract | BD Biosciences | 212720 | |
L-Leucine | JUNSEI | 87070-0310 | |
Adenine sulfate | ACR | 16363-0250 | |
Uracil | Sigma-Aldrich | U0750 | |
L-Histidine | Sigma-Aldrich | H8125 | |
KH2PO4 | Sigma-Aldrich | 1.05108.0050 | |
NaCl | JUNSEI | 19015-0350 | |
MgSO4•7H2O | Sigma-Aldrich | 63140 | |
CaCl2 | Sigma-Aldrich | 12095 | |
Potassium phthalate | Sigma-Aldrich | P6758-500g | |
Inositol | Sigma-Aldrich | I7508-50G | |
Biotin | Sigma-Aldrich | B4501-100MG | |
Boric Acid | Sigma-Aldrich | B6768-1KG | |
MnSO4 | Sigma-Aldrich | M7634-500G | |
ZnSO4•7H2O | JUNSEI | 83060-031 | |
FeCl2•4H2O | KANTO | CB8943686 | |
Sodium molybdate dihydrate | YAKURI | 31621 | |
KI | JUNSEI | 80090-0301 | |
CuSO4•5H2O | YAKURI | 09605 | |
D-myo-inositol | MP biomedicals | 102052 | |
Pantothenate | YAKURI | 26003 | |
Nicotinic Acid | Sigma-Aldrich | N4126-500G | |
(NH4)2SO4 | Sigma-Aldrich | A4418-100G | |
Agarose | Biobasic | D0012 | |
G418, geneticin | LPS | G41805 | |
2. Enzyme reactions | |||
PfuUltra II Fusion HS DNA Polymerase | Aglient | 600380 | For site-directed mutagenesis |
GeneMorphII Random mutagenesis Kit | Aglient | 200500 | For error-prone PCR |
Phusion High-Fidelity DNA Polymerase | Thermo Fisher | F-530L | For fusion PCR |
Ex Taq DNA Polymerase | Takara | RR001b | For general PCR |
BamH1 | New England BioLabs | R0136S | |
Xho1 | New England BioLabs | R0146S | |
Dpn1 | New England BioLabs | R0176S | |
3. Equipment | |||
Velveteen square, black | VWR | 89033-116 | For replica |
Replica-plating tool | VWR | 25395-380 | For replica |
MicroPulser Electroporator | Biorad | 1652100 | For fission yeast transformation |
Electroporation Cuvettes, 0.2 cm gap | Biorad | 1652086 | For fission yeast transformation |
Thermal Cycler | Bioer | BYQ6078 | For fusion PCR ramp reaction |