Цель настоящего Протокола заключается в количественном определении ремонт определенных ДНК белковых сшивки на плазмидной ДНК. Пораженного плазмид transfected в получателей mammalian клетки линии и низкомолекулярных вес, собирают в несколько раз очков после transfection. Кинетика ремонта ДНК количественно с помощью расширения ленты специфического праймера, следуют ПЦР.
Этот метод призван служить гибким, быстрое и количественные техники для изучения кинетики ДНК белковых crosslink (DPC) ремонт в mammalian клетки линии. Вместо того чтобы глобально опробование удаления ксенобиотик индуцированной или спонтанное хромосомных DPC удаления, этот assay исследует ремонт однородной, химически определенных поражения, специально введена в одном месте в субстрат ДНК плазмиды. Важно отметить, что этот подход позволяет избежать использования радиоактивных материалов и не зависит от дорогих или высоко специализированной технологии. Вместо этого он полагается на стандартных рекомбинантной ДНК процедур и широко доступны в реальном времени, количественных полимеразной цепной реакции (ПЦР) инструментария. Учитывая гибкость стратегии использованы, размер высокоструктурированные белка, а также природу химической связи и точные ДНК последовательность контексте вложение сайта может быть изменено по решению соответствующего вклада этих параметры общей эффективности DPC ремонта. С помощью этого метода, плазмиды, содержащие участкам DPC были transfected в клетки и ДНК низкой молекулярной массой оправился в разное время после transfection. Восстановленные ДНК затем подвергается нити специфического праймера расширение (ПСПЭ) используя праймер дополняет стренги поврежденных плазмида. После поражения DPC блоков полимеразы дна Taq можно количественно оценить соотношение отремонтированы в ООН отремонтированы ДНК с помощью ПЦР. Цикла порог (CT) значения используются для расчета процента ремонта в различные моменты времени в соответствующих клеточных линий. Этот метод ГНПП ПЦР может также использоваться для количественной оценки ремонта кинетика любой ДНК аддукт что блоков Taq-полимеразы.
Описанные здесь называется на основе ПЦР анализа ГНПП ПЦР. Цель этого метода заключается в количественном определении DPC ремонт на что transfected в ремонт несовершенным и опытным mammalian клеток ДНК плазмиды. Этот assay быстрое, количественных, чрезвычайно гибкой, и непосредственно мер восстановления деятельности. Хотя настоящий доклад сосредоточен на использование этой методологии для изучения ремонт DPC, представленные ниже результаты показывают, что ремонт любой поражения что блоков Taq-полимеразы могут быть изучены с использованием этой методологии.
В развитие этого метода лежит лучше понять механизмы, через которые mammalian клеток ремонт DPC. В отличие от других типов повреждения ДНК DPC, массово разнообразных1,2. Исследования показали, что сотни клеточных белков может стать высокоструктурированные ДНК, и что для каждого белка, в принципе, есть многочисленные боковые цепи аминокислоты, которые могли бы стать ковалентно присоединены к клеточной ДНК3. Кроме того существуют многочисленные химические крепления для белков на ДНК позвоночника, включая несколько позиций на нуклеотидных баз, а также на4,сахара рибозы5. Это химические разнообразие вызывает перспектива того, что различные биохимические пути может полагаться на ремонт различных видов DPC. Именно с этой озабоченностью в виду, что ГНПП ПЦР анализа была разработана.
Чтобы разобраться в молекулярной биологии сотовых Ремонт DPC были разработаны несколько методик. Ниже приводится обзор основных подходов, которые были разработаны, с кратким изложением основных сильных и слабых сторон каждого владеть. Следует подчеркнуть, что хотя это резюме фокусируется на исследования DPC ремонта в системах культуры mammalian клетки, значительный вклад в текущей модели DPC ремонта были предприняты с использованием микроорганизмов и клеток свободных систем, которые не рассматриваются в этом рукопись.
Может быть простой стратегии, которые могут быть приняты, чтобы разобраться в генетике DPC ремонта заключается в оценке соответствующих чувствительность к смерти клетки, наблюдается в клетках одичал типа и мутантов подвергается агентов, которые индуцируют DPC6,7. Эта стратегия является сравнительно быстрый, недорогой и не требует специальных знаний за пределами способность выполнять основные клеточные культуры технологии. Противовеса эти преимущества являются многочисленные ограничения такого подхода, включая следующие. Во-первых проба не непосредственно измерить репарации ДНК. Рабочая предпосылка, лежащая в основе этой стратегии является, что инактивации мутации генов, кодирующих соответствующих протеинов ремонта ДНК приводит к накоплению ДНК повреждения что триггеры запрограммированная смерть клетки. Однако мутации генов, кодирующих белки не ДНК ремонт может в принципе, повышение (или уменьшить) сотовых чувствительность к ксенобиотик индуцированной клеточной смерти. Во-вторых, агенты, которые создают DPC неизменно вызывают другие виды повреждений ДНК (единственным исключением является 5-Аза-2′-deoxycytadine, но этот агент также истощает сотовой метилтрансфераза уровни8). Следовательно это мыслимо, что расширение сотовой Гиперчувствительность к агенту в вопросе может отражать дефекты ремонта interstrand сшивки или других повреждений. В-третьих как было сказано выше, DPC представляют собой значительно гетерогенных класс состоит из различных видов химической сшивки, с участием партнеров различных белков. Вполне возможно, что хотя ремонт один или более вложенных типов этих поражений могут быть изменены в частности генетический фон, эта разница не может быть достаточно, чтобы значительно изменить сотовой Гиперчувствительность к смерти, вызванных этим агентом. В резюме в то время как эта стратегия представляет собой привлекательным отправную точку, ограничения, изложенные выше подчеркнуть важное значение осуществления других, более прямых методов для изучения кинетики DPC ремонта.
Для достижения этой цели был разработан ряд соответствующих подходов. Например следователи разработали методы, чтобы различать ДНК «свободный» и «protein-bound» ДНК9,10,11. С помощью этих подходов, можно сравнить стационарном уровнях DPC или следующие воздействия DPC-производство агента в различных генетических стола. Эти две стратегии, наиболее широко используемых связаны, отделяя DPC-содержащих ДНК от свободной ДНК с помощью стратегии привязки мембраны нитроцеллюлозы или KCl/SDS осадков12,13. В бывшем подход клетки лизированы и прошло через фильтр нитроцеллюлозы. Потому что нитроцеллюлоза связывает белок, фильтр сохраняет связанные белком ДНК, позволяя бесплатные ДНК, чтобы пройти через. В последнем стратегии белка прыгните ДНК отделена от свободной ДНК основывается на факте, что SDS связывает белок, но не ДНК и может быть спровоцирован добавлением хлористого калия. Следовательно белка связаны ДНК становится неразрешимой несвязанных ДНК остается в растворе. DPC-содержащих ДНК затем быть предел, с использованием radiolabeled тимидина (если клетки были первоначально метаболически обозначено) или путем селективного ДНК Люминесцентную краску как Hoechst 33258. Эти методы являются воспроизводимость и требуется небольшое количество шагов. Однако они не предоставляют информацию, касающуюся характера химических crosslink, через который белок прилагается к ДНК. Кроме того важно отметить, что эти анализы могут переоценивать DPC ремонт ложно скоринга неполного ремонта, то есть, протеолитических обработки небольших сшивки ДНК пептид, который не может быть как легко ловушку или осажденная, как bona fide ДНК ремонт.
Комета анализов может использоваться для визуализации DPC формирования в клетки14. В этих экспериментах присутствие DPC уменьшение миграции ДНК, которая затем может быть устранена путем предварительной обработки с K. протеиназы Таким образом длина хвоста может использоваться для оценки формирования DPC. Однако как упоминалось выше, DPC-формирование наркотиков создавать другие типы повреждения ДНК, которая может изменить длину хвоста. Этот протокол также является сугубо технический и требует опыта и профессиональной подготовки в конфокальная томография.
Масс-спектрометрия может использоваться для изучения кинетики ремонт DPC, после лечения с сшивки агентов15,16,17. Эти эксперименты лечить клетки с DPC-формируя агентам и изолировать DPC через биотина захвата или фенолом: хлороформ добычи (1:1). Масс-спектрометрия может затем использоваться для идентификации белков из сшитого или quantitate количество DPC, формировались в течение времени. Основным преимуществом такого подхода является характер получаемых данных. Это позволяет точно каталог видов белков, которые стали высокоструктурированные после воздействия ксенобиотик, однако, этот протокол дорого, много времени и ограничивается тип crosslink, которые могут быть обнаружены.
Мейзелс et al. разработали чувствительных «радар» (быстрый подход к ДНК аддукт восстановления) пробирного чтобы quantitate immunodetection ДНК белковых аддукты а также на основе ELISA радар пробирного18,19. Эти анализы являются особенно полезными для захвата ДНК белковых полуфабрикатов, которые временно формируют в клетках и создания образцов для масс-спектроскопии для выявления новых белков аддукты. Этот immunodetection assay полагается на наличие антител для захвата crosslink дна протеина и, таким образом, не могут быть способны обнаруживать деградации ДНК пептид аддукты формы во время ремонта. Недавно конкретные DPC ремонт пути, связанные с репликации ДНК и ДНК зависимая metalloprotease, спартанец был обнаружен в котором DPC являются proteolyzed для мелких пептидов во время ремонта20,21. Унаследованные мутации в этом гене связаны с Ruijs-Aalfs синдрома в организме человека, заболевание, характеризующееся геномной нестабильности, преждевременное старение и рак печени22. Мышей с генетически спартанских гена дефекты отображения аналогичные фенотипов23.
Хоста элементный возобновление транскрипционный анализ деятельности был использован для изучения ремонт определенных поражений на transfected плазмида ДНК субстратов24,25. В этих экспериментах, плазмиды, содержащий DPC (или другие виды повреждений ДНК), блокировать транскрипции репортер, например Люцифераза, являются transfected в клетки. Измерения люминесценции, принятых 24-72 ч позже затем коррелирует с DPC ремонт. Однако эти анализы косвенных ремонт способны обнаруживать события ремонт ранее чем через 24 ч после transfection и не могут различать между объездной РНК-полимеразы частично отремонтированы субстратов и капитальный ремонт.
Каждый из описанных выше методов имеет свои преимущества и способствовала текущей модели DPC ремонта. Однако ГНПП ПЦР позволяет обойти некоторые ограничения, связанные с этими подходами и следовательно может предоставить более конкретные проницательность в DPC ремонт механизмов. Например ГНПП ПЦР assay может непосредственно измерить ремонт участкам DPC на ДНК нетронутым клеток млекопитающих. Этот метод является универсальным и был использован для получения результатов ремонта после трансфекции хомяк и линий клеток человека. Трансфекция плазмида может производиться с использованием липофекция или электропорации в культивируемых клеток млекопитающих линий. Она также гарантирует, что только ремонт определенных DPC измеряется, а не другие типы повреждения ДНК, вызванные большинство DPC-формируя агентам. ГНПП ПЦР легко выполнять, недорогой и быстрый. Результаты, полученные с помощью этого анализа выявлено ремонт события 2 ч после трансфекции в кратчайшие сроки. С помощью этого метода, переменные, которые могут повлиять на результаты DPC ремонт могут быть изучены в манере, которая является чувствительным и эффективным. Например роль транскрипции в DPC ремонт еще предстоит тщательно оцениваться. Благодаря гибкости ГНПП ПЦР-анализа сшивки сайт DPC можно манипулировать, чтобы решить этот вопрос. Кроме того введение происхождения репликации в плазмиду DPC-подшипник может использоваться для решения влияние репликации на ремонт DPC. Кроме того может быть создано несколько сшивки плазмида изучить различия в ремонт одного DPC против нескольких сшивки. Это вопросы, которые будет трудно ответить, используя хромосомной ДНК, но легко может быть решена с помощью ГНПП ПЦР анализа. В целом, ГНПП ПЦР анализа требует очищенного, плазмида ДНК в количествах микрограмм, содержащий поражения известном месте. Аддукты Кроме DPC может использоваться в этом assay, однако, поражения должны быть способны блокирования расширение полимеразы Taq.
Метод ПЦР ГНПП предлагает многочисленные преимущества по сравнению с другими подходами путем изучения ремонт однородного населения, содержащий один, определенный DPC поражения. Примечательно, что помимо управления идентификатор типа химических crosslink, используется для соединения с белками на ДНК и белка, это можно легко манипулировать контекст последовательность, в которую вводится DPC поражения. Мы изучили влияние на ремонт DPC представляя поражения либо шаблон или кодирования стренги плазмида вниз по течению активного активаторных Локус. Аналогичным образом мы находимся в процессе изучения влияния на ремонт DPC репликации, используя M13 плазмиду, содержащий SV40 происхождения репликации transfected в HEK293T клетки. Assay описаного непосредственно ремонт DPC меры, в отличие от других стратегий, таких как принимающей ячейки реактивации что косвенно смета ремонта деятельность24,25. Кроме того система является надежной, чувствительной и количественные. В отличие от других систем, которые измеряют удаления DPC, этот assay обнаруживает только капитальный ремонт события, то есть, она требует не только исключить DPC поражения, но что целостность дуплекс ДНК быть полностью восстановлен17. Это потому что abasic сайты и Ники или перерывы в основу Фосфодиэфирная блокировать assay так же эффективно, как оригинальные DPC поражения29.
Хотя настоящий доклад сосредоточен на определенного типа КВП, который был создан боргидрид треппинга ферментных реакций промежуточного, в настоящее время мы разрабатываем подходов для изучения ремонт DPC, с участием других белков и поражения в котором связь белка ДНК происходит через базу нуклеозидов, а не позиции рибозы. С помощью восстановительного аминирования, мы создали белков и пептидов сшивки, прикрепленные к гуанин или цитозин базы ДНК грунтовка30. Эти олигонуклеотиды были очищены до однородности и используется для создания supercoiled плазмид, содержащих ДНК белков и ДНК пептид сшивки. В то время как эффективность этих реакций несколько снизился по сравнению с oxoguanine glycosylase crosslink подход подробно выше, они тем не менее были успешными и разрешение на изучение ремонт этих субстратов в одичал тип и нуклеотидов иссечение ремонт недостаточным mammalian клетки линии. Мы также использовали ГНПП ПЦР-анализа для изучения ремонт повреждений oxoguanine и синтетических рибозы холестерин конъюгата, который ранее был показан восстанавливаемого через сотовой нуклеотидов иссечение ремонт техники31. Как графически изображена на рисунке 2 , ремонт любых поражения что выдвижение праймера блоков, полимеразы Taq может в принципе, измеряться с помощью ГНПП ПЦР анализа.
Текущие модели DPC ремонта предположить, что больше DPC (> 10 кДа) подвергаются протеолитических обработки небольших пептидных поражением до удаления32,,3334. Являются наиболее вероятными кандидатами ответственных за этот протеолиза протеасомы или конкретных протеазы в клетках человека, под названием Spartan20,21,,3536,37, 38. дальнейшие расследования роли этих протеаз может проводиться с использованием ГНПП ПЦР анализа. Ингибиторы протеасом может использоваться для предварительной обработки клеток до трансфекции с DPC-содержащих субстратов. В качестве альтернативы спартанский нокдаун клеточных линий может transfected с поврежденной плазмиды для уточнения его роли в протеолиза больших DPC.
Независимо от метода, используемого для создания crosslink или характера поражения ДНК это следует подчеркнуть, что методология ГНПП ПЦР критически зависит способность генерировать значительное количество однородных DPC-плазмида субстрата. Шагов, необходимых для этого анализа включают очистки ковалентно, закрытые циркуляр плазмида после выдвижение праймера для устранения любого порезал или линейных плазмид молекул. Эти загрязняющие вещества должны быть ликвидированы для обеспечения того, чтобы любой последующий ремонт DPC наблюдается не за счет процессов режиссер Ник или двухручьевой брейк направленных ремонт. Неполучение достаточного количества supercoiled ДНК, после грунтовки расширения реакции могут быть преодолены путем изменения соотношения олигонуклеотида одноцепочечной ДНК. Еще один важный шаг для метода ГНПП ПЦР-сшивки эффективность белка для плазмида. В этом исследовании, эффективный, ферментативные реакции был использован чтобы crosslink белка glycosylase oxoguanine 8-оксо гуанин поражением. Югу оптимального сшивки может быть улучшено, изменяя количество белка, добавил к реакции.
Хотя результаты, описанные в настоящем докладе полагались на липофекция представить DPC ремонт субстратов в получателей клетки, нет никаких оснований, априори, другие transfections методы не могут быть использованы. Мы провели предварительных исследований и отметил, что электропорации39 может также использоваться. Однако стоит отметить, что наш опыт, эффективность трансфекции электропорации снижается по сравнению с липофекция, и мы сочли необходимым использовать ДНК перевозчика (до 5 мкг) в дополнение к 1,5 мкг DPC субстрат для получения данных ремонт. В целом описанным выше способом ГНПП ПЦР обеспечивает инновационный способ исключительно изучить DPC ремонт на плазмидной ДНК и создавать новое понимание ответ повреждения ДНК.
The authors have nothing to disclose.
Эта работа финансировалась национальных институтов здравоохранения (ES023350). Лиза Chesner поддерживается обучения Грант 5T32HL007741. Мы благодарим, Наталья Третьякова (Университет Миннесоты) и Ашис басу (Университет штата Коннектикут) и их члены лаборатории для поддержки и технических консультаций в начале и промежуточных этапов этой работы.
8-oxoguanine modified oligo | Midland Certified Reagent Company | NA | Sequence: 5’AGGGTTTTCCA (8-oxo-dG)TCACGACGTT 3’ |
T4 PNK | NEB | M0201S | |
Single-stranded M13 | NEB | N4040S | |
Taq polymerase | NEB | M0267L | |
ATP, 100mM | Thermo Scientific | R0441 | |
dNTP Mix, 10mM each | Thermo Scientific | R0192 | |
BSA | NEB | B9001S | |
T4 polymerase | NEB | M0203L | |
T4 ligase | NEB | M0202L | |
β-agarase | NEB | M0392S | |
Oxoguanine glycosylase 1 | NEB | M0241S | |
SYBR Green PCR Master Mix | Applied Biosystems | 4309155 | green PCR master mix |
Primer R | UMN Genomic Center | NA | 5’CGGCTCGTATGTTGTGTG 3’ |
Primer L | UMN Genomic Center | NA | 5’ GCTGCAAGGCGATTAAGT 3’ |
Lipofectamine Reagent | Invitrogen | 18324-012 | transfection reagent |
BspD1 | NEB | R0557S | |
NEB buffer 2 | NEB | B7002S | |
StepOnePlus Real Time PCR System | Applied Biosystems | 4376600 | |
UltraPure Buffer-Saturated Phenol | Invitrogen | 15513-047 | |
Chloroform, reagent ACS, spectro grade | ACROS | 40463-5000 |