Summary

405 Nm レーザ マイクロ照射による DNA 損傷にタンパク質募集調査

Published: March 20, 2018
doi:

Summary

DNA 損傷修復機構研究で定義されたサブ核領域の病変を誘導するシステムが必要です。405 nm レーザー装備レーザー走査共焦点の顕微鏡を使用してローカライズされた二本鎖切断を作成し、これらの病変の修復因子のダイナ ミックスを定量化するための自動化された手順を提供する手法を提案します。

Abstract

DNA 損傷応答 (DDR) は、検出、信号、および DNA 損傷を修復するタンパク質の茄多を使用します。この応答の輪郭を描くがゲノム維持機構の解明を理解する重要です。募集と病変における蛋白質の交換は非常にダイナミックなので、彼らの研究には迅速かつ空間的区切りに DNA 損傷を生成する機能が必要です。ここでは、我々 はローカル 405 nm レーザー ライン装備一般的なレーザ走査共焦点顕微鏡を用いたひと細胞における DNA 損傷を誘導するための手順を説明します。ゲノム維持要因レーザ ストライプは、蛍光抗体法 (IF) またはリアルタイムで評価できますの蓄積は、蛍光レポーターが付いたタンパク質を利用しました。リン酸化ヒストン H2A を使用しています。(Γ-H2A.X) x マーカーとしての複製蛋白質 A (RPA), メソッドは、隣接するクロマチンの普及からローカル募集の要因を識別するための十分な解像度を提供しています。さらにサイト被害を効率的にタンパク質染色体 DNA での動態を監視する ImageJ ベースのスクリプトを提供します。これらの改良は、DDR のダイナミクスの研究を簡単になります。

Introduction

細胞は、DNA 損傷のゲノムの完全性を脅す内因性と外因性の源に常に公開されます。DDR は、シグナル伝達経路を検出、信号、およびゲノムの安定性を維持するために DNA の損傷を修復のアンサンブルです。DNA 二本鎖切断 (Dsb)、DDR が 2 つの相補的なプラットフォームを中心に発生: γ H2A.X ラベル クロマチンと ssDNA 結合複合体 RPA1,2でコーティングされた通常切除一本鎖 DNA 領域。

UV レーザー マイクロ – チミジン アナログ 5-ブロモ-2′ デオキシウリジン (BrdU) または bisbenzimide エトキシド trihydrochloride (BBET、ヘキスト 33342) DNA 染料前感作細胞照射単鎖切断 (を含む DNA 損傷の混合物を作成しますSSBs) と Dsb をクロマチンと一本鎖 Dna の両方のプラットフォーム3,4ローカライズされた DDR を引き出します。前の仕事を示した場合25と組み合わせて高エネルギー紫外線 A レーザー (335 365 nm) を使用して、DSB でこれらの 2 つの異なるプラットフォームにゲノム維持要因の採用を差別することができます。装備されてこのようなレーザー顕微鏡は、高エネルギー レーザー、405 nm レーザを用いたレーザ走査共焦点顕微鏡よりも学術と製薬の設定でずっとより少なく流行し専用の UV A 送信目的必要と高価ですライン。蛋白質の募集とマイクロ照射サイトで交換の研究はゲノム維持要因の動的挙動を記述するために必要な骨の折れる手動画像解析による排除も。

ここでは、BrdU または BBET の核酸染色と細胞の前感作性マイクロ照射による DNA 損傷でゲノム維持因子の動態のモニタリングを可能に一般的な共焦点顕微鏡の 405 nm レーザー後に続くことを示します。改良された解像度にフィールドとデコンボリューションの大きい深さ z 積み重ねとともにプラットフォーム マーカーとして γ H2A.X または RPA 複雑な亜単位を使用できますローカルに広がるそれらから Dsb に補充される要因を区別する実験者初期病変を囲む大規模なクロマチン ドメイン。核内の異なるコンパートメントによるとこのサブ分類マイクロ照射サイトに募集される未同定蛋白質の潜在的な役割を絞り込むことができます。また、便利なプロトコルを提供し、オープン ソース ・ ソフトウェア (ImageJ 分布) フィジー6,78を使用してゲノム維持要因のダイナミクスをすばやく解析するパイプラインを最適化します。現在マイクロ照射方法にこれらの改良は、事実上すべての研究室の設定可能な DDR の研究をレンダリングします。

Protocol

1. 細胞の前感作性 マイクロ照射実験前に 24 h 種 FB 8 も培養の 405 nm レーザ光と優れたイメージングの最大透過率を確保するため 170 μ m 厚 coverslip のようなガラス/樹脂底付きスライド 1 x DMEM 含む 10% の井戸あたり U2OS セルが 40,000 セルレーザー走査共焦点顕微鏡を反転します。8 も microslide を使用している場合、すべての後の治療とプロトコルの洗浄手順ウェルあたり 500 μ L のメディア…

Representative Results

次のマイクロ照射細胞はゲノム維持蛋白質1,12の性質によっては時間の特定の期間の回復が許可されます。Dsb は RPA と他のゲノム維持要因9によってコーティングされて急速に ssDNA の限られた領域を作成する、細胞周期の S および G2 段階の最も広く、核酸分解酵素によって処理されます。この ssDNA 領域は募…

Discussion

上記の方法を使用すると、照射済み BBET または BrdU で感作細胞 – 405 nm レーザー マイクロは付着性細胞の核内で DNA 性病 Dsb のローカライズされた世代をことができます。これらの Dsb で DDR の速度は、真核細胞9,18,19の他のメソッドで生成されたものに似ています。マイクロ照射サイトで DSB 切除は ssDNA 世代 RPA32 を対象とし…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、自然科学および工学研究審議会のカナダ [朝発見グラント 5026]、次世代がん研究会 [朝 21531] から科学者奨学金のサポートされていました。ジャン ・ フランソワ ・ Lucier にありがとう統計分析にフィジー Python スクリプトやアドバイスの優秀な品質管理を提供します。もし固定ソリューション レシピありがとう博士ステファニー A. Yazinski。レーザー パワー測定のヘルプありがとうポール リュドヴィク化のパターン。

Materials

Olympus FLUOVIEW FV3000 resonant laser scanning confocal microscope Olympus
FluoView FV3000 software (version 2.1) Olympus
405 nm laser Coherent Radiation source
Microscope incubator AIO-UNO-OLYUS-1 Okolab OKO-UNO-1
60X /1.4 Objective Olympus Oil immersion objective
8-well culture slides on coverglass (X-well) Sarstedt 94.6190.802
U2OS osteosarcoma human cell line ATCC HTB-96 Stable cell lines 
4’,6-Diamidino-2-Phenylindole (DAPI) ThermoFisher D1306 Caution toxic
5-bromo-2′-deoxyuridine (BrdU)  Sigma-Aldrich 59-14-3
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich 30525-89-4 Caution toxic
Bisbenzimide H 33342 (Hoechst 33342) ThermoFisher 62249
Bovine serum albumin (BSA) ThermoFisher BP1600-100
Trypsin EDTA 0.1%  ThermoFisher 15400-054
Triton X-100  BioShop TRX777.100
Tween-20  ThermoFisher BP337-500
Sucrose  BioShop SUC507
JetPRIME transfection reagent  Polyplus 114-07
ProLong Diamond Antifade mountant with DAPI  ThermoFisher P36962
DMEM 1X, + phenol red Wisent  319-005-CL
DMEM 1X, – phenol red Wisent 319-051-CL
Fetal bovine serum (FBS) Wisent  080-150
Mouse anti-RPA32 antibody Abcam ab2175 1:500 for IF
Rabbit anti-γ-H2A.X antibody Cell Signaling  9718S 1:500 for IF
Rabbit Anti-53BP1 antibody Cell Signaling  4937S 1:500 for IF
Rabbit Anti-PRP19 antibody Abcam ab27692 1:500 for IF
Goat anti-rabbit IgG Alexa Fluor 647 Cell Signaling  4414S 1:250 for IF
Goat anti-mouse  IgG Alexa Fluor 488  Cell Signaling  4408S 1:250 for IF
Fiji image analysis open-source software  https://fiji.sc
1918-K Power meter  with a 918D-SL-0D3 sensor Newport

References

  1. Ciccia, A., Elledge, S. J. The DNA damage response: making it safe to play with knives. Molecular cell. 40 (2), 179-204 (2010).
  2. Bekker-Jensen, S., et al. Spatial organization of the mammalian genome surveillance machinery in response to DNA strand breaks. The Journal of Cell Biology. 173 (2), 195-206 (2006).
  3. Limoli, A. C. L., Ward, J. F., May, N. A New Method for Introducing Double-Strand Breaks into Cellular DNA. Radiation Research. 134 (2), 160-169 (1993).
  4. Polo, S. E., Jackson, S. P. Dynamics of DNA damage response proteins at DNA breaks: a focus on protein modifications. Genes & development. 25 (5), 409-433 (2011).
  5. Lukas, C., Falck, J., Bartkova, J., Bartek, J., Lukas, J. Distinct spatiotemporal dynamics of mammalian checkpoint regulators induced by DNA damage. Nature cell biology. 5 (3), 255-260 (2003).
  6. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9 (7), 671-675 (2012).
  7. Collins, T. J. ImageJ for microscopy. BioTechniques. 43 (1 Suppl), 25-30 (2007).
  8. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  9. Symington, L. S., Gautier, J. Double-strand break end resection and repair pathway choice. Annual review of genetics. 45, 247-271 (2011).
  10. Microirradiation Analysis Fiji Plugin. Available from: https://bitbucket.org/daniel_garneau/microirradiation_analysis/ (2017)
  11. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  12. Izhar, L., et al. A Systematic Analysis of Factors Localized to Damaged Chromatin Reveals PARP-Dependent Recruitment of Transcription Factors. Cell Reports. 11 (9), 1-15 (2015).
  13. Panier, S., Boulton, S. J. Double-strand break repair: 53BP1 comes into focus. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 15 (1), 7-18 (2013).
  14. Maréchal, A., et al. PRP19 Transforms into a Sensor of RPA-ssDNA after DNA Damage and Drives ATR Activation via a Ubiquitin-Mediated Circuitry. Molecular Cell. 53 (2), 235-246 (2014).
  15. Dubois, J. -. C., et al. A phosphorylation-and-ubiquitylation circuitry driving ATR activation and homologous recombination. Nucleic Acids Research. 45 (15), 8859-8872 (2017).
  16. Wan, L., Huang, J. The PSO4 Complex Associates with RPA and Modulates the Activation of ATR. The Journal of Biological Chemistry. 289 (10), 6619-6626 (2014).
  17. Abbas, M., Shanmugam, I., Bsaili, M., Hromas, R., Shaheen, M. The role of the human Psoralen 4 (hPso4) complex in replication stress and homologous recombination. The Journal of Biological Chemistry. 289 (20), 14009-14019 (2014).
  18. Chung, W. H., Zhu, Z., Papusha, A., Malkova, A., Ira, G. Defective resection at DNA double-strand breaks leads to de novo telomere formation and enhances gene targeting. PLoS Genetics. 6 (5), (2010).
  19. Hicks, W. W. M., Yamaguchi, M., Haber, J. E. Real-time analysis of double-strand DNA break repair by homologous recombination. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (8), 3108-3115 (2011).
  20. Lackner, D. H., et al. A generic strategy for CRISPR-Cas9-mediated gene tagging. Nature Communications. 6, 10237 (2015).
  21. Ratz, M., Testa, I., Hell, S. W., Jakobs, S. CRISPR/Cas9-mediated endogenous protein tagging for RESOLFT super-resolution microscopy of living human cells. Scientific Reports. 5 (9592), (2015).
  22. Linkert, M., et al. Metadata matters: Access to image data in the real world. Journal of Cell Biology. 189 (5), 777-782 (2010).
  23. Dinant, C., et al. Activation of multiple DNA repair pathways by sub-nuclear damage induction methods. Journal of Cell Science. 120 (15), 2731-2740 (2007).
  24. Kong, X., et al. Comparative analysis of different laser systems to study cellular responses to DNA damage in mammalian cells. Nucleic Acids Research. 37 (9), e68 (2009).
  25. Holton, N. W., Andrews, J. F., Gassman, N. R. Application of Laser Micro-irradiation for Examination of Single and Double Strand Break Repair in Mammalian Cells. Journal of Visualized Experiments. (127), (2017).
  26. Thazhathveetil, A. K., Liu, S. T., Indig, F. E., Seidman, M. M. Psoralen conjugates for visualization of genomic interstrand cross-links localized by laser photoactivation. Bioconjugate Chemistry. 18 (2), 431-437 (2007).
  27. Mortusewicz, O., Amé, J. C., Schreiber, V., Leonhardt, H. Feedback-regulated poly(ADP-ribosyl)ation by PARP-1 is required for rapid response to DNA damage in living cells. Nucleic Acids Research. 35 (22), 7665-7675 (2007).
  28. Kleiner, R. E., Verma, P., Molloy, K. R., Chait, B. T., Kapoor, T. M. Chemical proteomics reveals a γH2AX-53BP1 interaction in the DNA damage response. Nature Chemical Biology. 11 (10), 807-814 (2015).
  29. Soultanakis, R. P., et al. Fluorescence detection of 8-oxoguanine in nuclear and mitochondrial DNA of cultured cells using a recombinant Fab and confocal scanning laser microscopy. Free Radical Biology and Medicine. 28 (6), 987-998 (2000).

Play Video

Cite This Article
Gaudreau-Lapierre, A., Garneau, D., Djerir, B., Coulombe, F., Morin, T., Marechal, A. Investigation of Protein Recruitment to DNA Lesions Using 405 Nm Laser Micro-irradiation. J. Vis. Exp. (133), e57410, doi:10.3791/57410 (2018).

View Video