Эта статья демонстрирует новые методы, разработанные для перорального двуцепочечной РНК (dsRNA) через сосудистых тканей растений для РНК-интерференции (RNAi) в sap флоэма кормления насекомых.
Флоэма и завод sap кормления насекомых вторгнуться целостность культур и фруктов, чтобы получить питательные вещества, в процессе повреждение продовольственных культур. Членистохоботные насекомые счета для целого ряда экономически существенные вредителей растений, которые причиняют ущерб урожаю кормления на флоэма sap. Коричневый marmorated вонь ошибок (BMSB), Halyomorpha щитомордник (клопы: Pentatomidae) и азиатской цитрусовых psyllid (ACP), Diaphorina citri Кувейама (полужесткокрылые: Liviidae), членистохоботные насекомых-вредителей в Северной Америке, где они являются инвазивные сельскохозяйственных вредителей дорогостоящих специальности, строки и основных сельскохозяйственных культур и цитрусовых, а также вредитель неприятности, когда они вычисляются в помещении. Резистентность к инсектицидам многих видов привела к разработке альтернативных методов стратегий управления вредителей. Двуцепочечной РНК (dsRNA)-опосредованной РНК-интерференции (RNAi) является геном глушителей механизм для функциональных геномных исследований, который имеет потенциал применения как инструмент для управления насекомых-вредителей. Экзогенно синтезированных РНК или малые интерферирующие РНК (siRNA) может вызвать сайленсинга генов высокоэффективных через деградации эндогенного РНК, которая гомологичных для представления. Эффективное и экологические использования РНК-интерференции как молекулярные биопестицидов для биоконтроля членистохоботные насекомых требует в vivo доставка двуцепочечных РНК путем кормления. Здесь мы продемонстрировать методы для доставки dsRNA насекомых: Загрузка двуцепочечной ДНК в зеленых бобов путем погружения и поглощать двуцепочечной ДНК ген специфического с устные доставки через проглатывание. Мы также определили не трансгенных растений доставки подходы с использованием внекорневая спреи, корень обливать, ствол инъекции, а также глиняных гранул, все из которых могут иметь важное значение для стабильного выпуска двуцепочечной ДНК. Оперативная доставка, устно попадает двуцепочечной был подтвержден как эффективной дозы побудить значительное снижение экспрессии целевых генов, например несовершеннолетних гормонов кислоты O-метилтрансфераза (JHAMT) и вителлогенина (Vg). Эти инновационные методы представляют собой стратегии для доставки двуцепочечной ДНК для защиты урожая и преодоления экологических проблем для борьбы с вредителями.
Членистохоботные насекомые составляют некоторые из наиболее экономически значимых вредителей agriculturebecause их способности для достижения повышенных населения роста и распространения заболеваний растений. BMSB, Stål H. щитомордник , является инвазивным Пешт, который был случайно введен в Западном полушарии в Аллентаун, Пенсильвания из Азии (Китай, Тайвань, Корея и Япония) с первой прицельной, сообщили в 1996 году1. С момента своего появления BMSB была обнаружена в 43 государствах, с высоким населения в Срединно-Атлантического (DE, MD, Пенсильвания, Нью-Джерси, VA и WV), а также в Канаде и Европе и представляет собой потенциальную угрозу для сельского хозяйства2. Как полифаговый Пешт BMSB может спровоцировать повреждение примерно 300 узлов выявленных растений, включая высокотоварных культур, таких как яблоки, виноград, декоративных растений, семян сельскохозяйственных культур, сои и кукурузы. Повреждение вызвано главным образом из-за режима кормления, известный как lacerate и изобилия, где животное пронзает принимающей культур с его игольчатые стилет, чтобы получить доступ к питательные вещества от сосудистых тканей2,3. BMSB является также крытый вредителей, как они могут найти проживание в жилых помещениях, таких как школы и дома в течение осени через зимний2. Химические вещества и аэроаллергенами, выпущенная BMSB сообщалось незаконным аллергическая реакция в фруктовых культур работников. BMSB может также способствовать аллергических заболеваний, ведущих к контактный дерматит, конъюнктивит и ринита в чувствительных людей4,5. Еще один членистохоботные насекомых, акт, D. citri Кувейама (полужесткокрылые: Liviidae), является серьезным вредителем цитрусовых и передает флоэма ограниченной бактерий (Candidatus Liberibacter Азиатская), вызывая Huanglongbing (HLB), более известный как цитрусовые, озеленение болезни6,7. HLB впервые сообщили из Южного Китая и распространился на 40 различных Азии, Африки, Океании, Южной и Северной Америки стран7. Цитрусовые озеленение является проблемой во всем мире с угрожающими экономических и финансовых потерь из-за потери цитрусовые; Следовательно управление акт считается крайне важное значение для предотвращения и контроля HLB.
Меры для эффективного контроля за этих насекомых-вредителей, как правило, требует применения химических пестицидов, которые являются относительно короткими жили. Стратегии контроля химических инсектицидов часто не хватает стратегий безопасного управления природопользованием или уменьшилась подверженность из-за сопротивления пестицидов в Пешт населения8,9. Следовательно биологического контроля вредителей с молекулярной биопестицидов потенциальной альтернативой, но его использование глобально остаются скромными, и различных видов гемоцитов (например, Trisolcus japonicus) также может быть эффективным как естественных биологических элементы управления. RNAi является потенциал новых технологий для управления инвазивных насекомых-вредителей с молекулярной биопестицидов10. RNAi это хорошо описана гена регулирующий механизм, который облегчает эффективное посттранскрипционного гена глушителей эндогенных а также вторжение двуцепочечных РНК в последовательность конкретным образом, что в конечном итоге приводит к регуляции экспрессии генов в мРНК 12уровень11,. Кратко когда экзогенных dsRNA внедрено в ячейку, которую она перерабатывается в малые интерферирующие РНК членом надсемейства бидентантный Нуклеаза РНКазы III, называемый Dicer, который эволюционно сохраняется в черви, мух, растений, грибов и млекопитающих13, 14 , 15. Эти 21-25 нуклеотидов siRNA дуплексы, затем раскрутил и интегрированы в РНК-комплекс (RISC) как руководство РНК. Этот комплекс RISC-РНК позволяет Уотсона-крика низкопробный спаривать для дополнительных целевых мРНК; Это в конечном итоге приводит к расщепления белков Argonaute, multi домен белка, содержащего РНКазы H-как домен, который ухудшает соответствующей мРНК и уменьшает перевод белка, что ведет к посттранскрипционного гена, глушителей16 , 17 , 18.
РНК-интерференции для борьбы с вредителями требует введением dsRNA в vivo заставить замолчать гена интереса, тем самым активизируя путь siRNA. Различные методы, используемые для доставки dsRNA насекомых и насекомых клетки побудить системных RNAi включают в себя питание10,19, замачивания20,21, микроинъекции22, перевозчиков например липосом 23и другие методы24. RNAi была впервые продемонстрирована в Caenorhabditis elegans замолчать экспрессии генов unc-22 огнем и Мелло25, следуют нокдаун в выражении Кучерявая генов в Drosophila melanogaster26. Первоначальный функциональные исследования использовали микроинъекции доставить двуцепочечной ДНК в насекомых, таких как Apis mellifera22,27, Гороховая pisum28, германский Blattella29, H. щитомордник30и спаривающиеся насекомых (обзор, Terenius и др. 31). микроинъекции выгодно для доставки и точное доза на сайт интерес в насекомых. Хотя такой септик проколы могут выявить выражение иммунной связанных генов из-за травмы32, следовательно, исключает ее практичность в развитии сельскохозяйственной биопестицидов.
Другой метод доставки двуцепочечной ДНК в естественных условиях является путем замачивания, который включает в себя заглатывания или поглощение dsRNA подвеска животных или клетки обычно в внеклеточной среде, содержащей двуцепочечной ДНК. Замачивания использовалась эффективно побудить RNAi дрозофилы S2 клетки культуры ткани подавляют Downstream Raf1 (DSOR1) Митоген активированный протеин киназы киназы (MAPKK)20, а также в C. elegans заставить замолчать POS-1 гена33. Однако малым интерферирующим РНК, доставляются с помощью замачивания является менее эффективным, чтобы побудить интерференции, по сравнению с микроинъекции20. RNAi опосредованного подавления в жевательной насекомых был впервые показан в Западный кукурузный rootworm (WCR) (под эгидой содействие), вливая двуцепочечной ДНК в искусственных агар диета10. Предыдущих докладах обобщили методов доставки вливается в природных диеты для членистоногих34двуцепочечной ДНК. Эти методы доставки далее были полны решимости быть соответствующе эффективно искусственных средств его доставки; Например, в случае мухи цеце (Glossina morsitans morsitans), где равных нокдаун гена, связанные с иммунной наблюдалось, когда двуцепочечной ДНК был доставлен через крови еды или microinjected35. Аналогичным образом доставка двуцепочечной ДНК через капли в светло коричневый яблоко моли (Epiphyas postvittana)36, бугорчатая моли (Plutella xylostella) личинки37, а также мед пчелы38,39 индуцированных эффективное RNAi. Наиболее эффективное RNAi эксперименты в членистохоботные использовали инъекции dsRNA40 , потому что устные доставка двуцепочечной ДНК в членистохоботные насекомых является трудной, поскольку оно должно быть доставлено через сосудистых тканей растения-хозяина. Эффективное RNAi наблюдалось также в АШП и стекловидный крылатый снайпер Цикадки (GWSS), Homalodisca vitripennis: двуцепочечной ДНК был доставлен через цитрусовых и виноградные лозы, которые поглощены двуцепочечной ДНК в сосудистых тканей через корень обливать, листвы аэрозоли, ствол инъекции или поглощением черенки41,42,,4344,45,46. Это также привело к первый патент для dsRNA против ACP (2016, нас 20170211082 A1). Доставка малых интерферирующих РНК и малым интерферирующим РНК с помощью перевозчиков например наночастиц и липосомы придает стабильность, и увеличение эффективности поставляемого dsRNA быстро появляются23,47,48,49 ,50. Новый класс автомобилей доставки на основе наночастиц для нуклеиновых кислот в пробирке и в естественных условиях , было кратко специально для терапевтического применения могут распространять огромный потенциал как подходящие доставки векторные51. Наночастицы как средство доставки для двуцепочечной ДНК могут иметь недостатки, включая растворимость, гидрофобность или ограниченный биоаккумуляции52, но подходящего полимерного пособничестве доставки может компенсировать эти недостатки. Разработка и использование самостоятельно доставлять нуклеотидов появляются также называется «антисмысловых олигонуклеотидов», которые являются одной мель РНК/ДНК дуплексы46.
Vitellogenesis в членистоногих является одним из ключевых процессов управления воспроизведением и регулируется несовершеннолетних гормонов (JH) или экдистероидов, которые являются ключевыми индукторов Vg синтеза жира; в конечном итоге Vg поглощается развивающихся ооцитов через вол рецептор-опосредованный эндоцитоз53. VG-группы полипептиды синтезированы extraovarially, который имеет важное значение для развития основных яичный желток белка, vitellin54,55, и поэтому важно воспроизведение и старения56. VG был успешно замолчать в нематод57 , а также в медоносной пчелы (Apis mellifera) где истощение Vg опосредованного интерференции наблюдался в22взрослых и яйца. Интерференции, протестированных опосредованного посттранскрипционного гена глушителей из Vg был потому что считалось, что его истощении приведет к наблюдаемый фенотипические эффект таких, как снижение плодородия и плодовитости, потенциально помощи в BMSB управления. JHAMT ген, который кодирует S-аденозил L-метионина (SAM)-зависимых JH кислоты O-метилтрансфераза, катализирует заключительный этап пути биосинтеза JH58. В этом пути Фарнезилпирофосфат пирофосфат (FPP) последовательно преобразуется из фарнезол, farnesoic кислота, следуют преобразование метил farnesoate JH, JHAMT. Этот путь сохраняется в насекомых и членистоногих специально для метаморфоза, процесс, который регулируется развивающих гормоны59,,6061. В б. МориJHAMT экспрессии генов и биосинтетическую активность JH в кавернозных Тегулы предположить, что transcriptional подавление гена JHAMT имеет решающее значение для прекращения JH биосинтез58. Таким образом гены JHAMT и вол были отобраны для целевых истощения, с помощью РНК-интерференции. RNAi также был испытан в цитрусовых деревьев для управления АКП и GWSS. Цитрусовые деревья были обработаны с двуцепочечной ДНК через корень обливать, стволовые кран (ствол инъекции), а также Внекорневые спреи с двуцепочечных РНК против насекомых конкретных аргинин киназы (АК) стенограммы42,44. Актуальным применение двуцепочечной ДНК была обнаружена всему сенью цитрусовых деревьев, указывающее эффективной доставки через сосудистых тканей растений и привели к росту смертности в АШП и GWSS,41–42, 45.
В текущем исследовании мы определили метод доставки естественная диета для лечения таких двуцепочечной ДНК. Впоследствии этот недавно разработанный метод использовался для подавления JHAMT и вол мРНК, используя гена конкретных двуцепочечных РНК в нимфы BMSB как показано ранее62. Эти новые протоколы доставки, продемонстрировали здесь отменяют обычных систем доставки РНК, использующих актуальные аэрозоли или микроинъекций. Овощи и фрукты, стволовые кран, обливая почвы и глиняные адсорбенты в может использоваться для доставки двуцепочечной ДНК, которая имеет решающее значение для дальнейшего развития биопестицидов вредителей и патогенных управления.
RNAi оказался важным инструментом для изучения биологической функции гена и регулирования, с большим потенциалом, чтобы быть использованы для управления насекомых-вредителей19,,6869,70, 71. дизайн и подб…
The authors have nothing to disclose.
Авторы с благодарностью признать, Доналд Вебер и Меган Херлии (USDA, ARS Beltsville, MD) для обеспечение BMSB и HB для экспериментов и колоний; и Мария т. Гонсалес, Сальвадор P. Лопес, (USDA, ARS, Форт Пирс, FL) и Джеки л Меца (Университет штата Флорида, Форт Пирс, FL) для поддержания колонии, пробоподготовки и анализа.
BMSB (H. halys) insects | USDA | ||
ACP (D. citri) insects | USDA | ||
organic green beans | N/A | ||
Citrus plants | USDA | ||
sodium hypochlorite solution | J.T. Baker | ||
green food coloring | McCormick & Co., Inc | ||
Thermo Forma chambers | Thermo Fisher Scientific | ||
Magenta vessel (Culture) | Sigma | ||
Primers | IDT DNA | ||
SensiMix SYBR | Bioline | ||
qPCR ABI 7500 | Applied Biosystems | ||
Spray bottle | N/A | ||
Parafilm | American Can Company | ||
TaKaRa Ex Taq | Clontech | ||
QIAquick | Qiagen |