今回ライブ イメージング総合筋腱の形態形成における発達過程の特に生活を実行する簡単に使用できる、汎用性の高いメソッドショウジョウバエ蛹。
腱と骨格筋は、体の部分を移動する人間を含む動物を有効にします。筋肉の形態形成は、人間を動物から保存性が高い。したがって、筋生物学にも適用することができます筋肉腱の開発の概念を勉強する強力なショウジョウバエモデル システムを使用できます。ここで述べる生活、大人の筋腱系の形態形成を簡単にイメージできる方法ショウジョウバエ蛹を開発します。したがって、メソッドは、タンパク質、細胞、組織の生理学的な環境での調査ができます。役に立つヒントと手順プロトコルに加えて筋腱のシステムを勉強に適している蛍光タグのマーカー蛋白質の包括的な概観を提供します。例の映画長期形成イベントの可視化に至る-時間と筋肉のけいれんのような短期的な動的プロセスの可視化へ-日の時間スケールで発生しているを示すプロトコルの用途を強調するには秒の時間スケールで発生しています。一緒に取られて、このプロトコルを設計し、そのまま体内の筋腱の形態を調査するためライブ イメージング実験を行うには、読者を有効にします。
筋腱の装置には、体の部分を移動する人間を含む動物ことができます。筋腱のシステムの分子ブロックは非常に節約されます。したがって、ヒトの筋生物学、筋肉の形態形成、筋腱の添付ファイル、原自己組織化などに関連する筋腱の開発の概念は、ショウジョウバエを使用して、簡単にアクセスできるように学ぶことができます。モデル系。ショウジョウバエの蛹のシステムには、いくつかの実験的利点があります。まず、蛹の段階では-大人の筋肉が形成される-生物は無柄、つまり、簡単に数時間あるいは数日の期間の顕微鏡画像します。第二に、多くの筋肉フォームは蛹の表面の下に十分なを閉じて、そのまま、部分的に半透明の生物の内部イメージを作成することができます。第三に、筋肉は、腱細胞を介して形成外骨格に接続されている、組織の緊張を造り上げ、自然の環境で調べることができます。これは筋肉細胞培養システムで可能ではありません。そして最後に、遺伝的ツールの茄多はショウジョウバエで利用可能。これらの中で、特定の細胞型または生体内イメージングのための細胞レベル下の構造のラベルを付けることができる多くの蛍光タグ マーカーです。
表 1には、筋腱の形態を研究するために使用される最も重要なマーカーがまとめたものです。それは GAL4 UAS システム1を使用して過剰に発現マーカーが含まれています、内生的タグ付きタンパク質マーカー2,3,4。GAL4 UAS システムの利点は、マーカーが全体マウント蛹で簡単にイメージを作成することができます強力な信号で、高レベルで一般に表されることです。さらに、組織特異性は、GAL4 ドライバーを慎重に選択することによって実現できます。内因性制御の下で表現の融合蛋白質の利点は、彼らはまた異なる種類の細胞の特定の細胞内構造マーカーとして使用ができますそれぞれ蛋白質のダイナミクスが,生体内で、することができますたとえば、します。筋肉の付着部位の GFP βPS インテグリン一緒に、これらのマーカーは、実験的なデザインと今と将来に解決できる研究課題の選択に高い柔軟性を提供します。
ラベルの付いた構造 | マーカー | 式とローカライズ | クラス | 在庫数 | コメント | Ref。 | ||||||
筋肉 | Mef2-GAL4 | すべて芽細胞とすべての段階ですべての筋肉 | GAL4 ライン | BL 27390 | 5 | |||||||
1151-GAL4 | 大人の筋前駆細胞と ≈24 h APF まで初期であります。 | GAL4 エンハンサー トラップ系統の行 | – | 6 | ||||||||
Act79B-GAL4 | 筋分化をジャンプします。 | GAL4 ライン | – | 7 | ||||||||
Act88F-GAL4 | 間接飛翔筋 14 h APF を開始 | GAL4 ライン | – | 7 | ||||||||
Act88FCameleon 3.1 | 間接飛翔筋 14 h APF を開始 | Act88F エンハンサー/プロモーター駆動 Cameleon 3.1 | – | Ca2 +インジケーター | 8 | |||||||
Act88F GFP | 間接飛翔筋 14 h APF を開始 | GFP 融合 (フライライン TransgeneOme) | fTRG78 と fTRG10028 | 4 | ||||||||
彼は nls GFP | 大人の筋前駆体、原子力、間接飛翔筋の ≈24 h APF まで | エンハンサー/プロモーター nls GFP レポーターと | – | 1.5 kb エンハンサー フラグメント | 9 | |||||||
Mhc-タウ-GFP | 微小管の DLM テンプレートや筋肉を区別します。 | エンハンサー/プロモーター タウ GFP レポーターと | BL 53739 | 10 | ||||||||
ΒTub60D GFP | (例えば、14 h ≈48 h APF 以降後減少を強く AFP から間接飛翔筋) である微小管 | GFP 融合 (フライライン TransgeneOme) | fTRG958 | 4 | ||||||||
Mhc GFP (weeP26) | (例えば、間接飛翔筋 ≈30 h APF から始まって) すべての体の筋肉のサルコメア (太いフィラメント) | GFP トラップ | – | ヘテロ接合体を使用して、ラベルのアイソ フォームのサブセット | 11 | |||||||
Sls GFP | (例えば、間接飛翔筋 ≈30 h APF から始まって) すべての体の筋肉のサルコメア (Z ディスク) | GFP トラップ (ハエトリソウ線) | – | G53、ヘテロ接合体の使用 | 2 | |||||||
Zasp66 GFP | すべての体の筋肉の Z ディスク | GFP トラップ (ハエトリソウ線) | BL 6824 | ZCL0663 | 2,12 | |||||||
Zasp52 GFP | すべての体の筋肉の Z ディスク | GFP トラップ (ハエトリソウ線) | BL 6838 | G00189 | 2,12 | |||||||
Hts GFP | アクチン結合;乏しく、筋芽細胞上皮で表現 | GFP 融合 (フライライン TransgeneOme) | fTRG585 | 4 | ||||||||
Dlg1 GFP | 接合上皮細胞、筋芽細胞とすべての段階で筋膜 | GFP 融合 (フライライン TransgeneOme) | fTRG502 | 4 | ||||||||
筋肉の添付ファイルのサイト | ΒPS-インテグリン-GFP | 筋付着部位 (例えば、開始 ≈18 h AFP 間接飛翔筋) | GFP ノックで | – | 13 | |||||||
タリン GFP と -mCherry | 筋付着部位 (例えば、開始 ≈18 h AFP 間接飛翔筋) | GFP トラップ (模倣線) | – | 3 | ||||||||
タリン GFP | 筋付着部位 (例えば、開始 ≈18 h AFP 間接飛翔筋) | GFP 融合 (フライライン TransgeneOme) | fTRG587 | 4 | ||||||||
同類 GFP | 筋付着部位 (例えば、開始 ≈18 h AFP 間接飛翔筋) | GFP トラップ (ハエトリソウ線) | 京都 110951 (ZCL3111) | ZCL3111、ZCL3192 | 2 | |||||||
Vinc GFP と RFP | 筋付着部位 (例えば、開始 ≈18 h AFP 間接飛翔筋) | GFP 融合 (遺伝子) | – | 13 | ||||||||
腱 | sr-GAL4 | 胸郭の腱細胞、蛹の段階で | GAL4 エンハンサー トラップ系統の行 | BL 26663 | ホモ接合体致死 | 14 | ||||||
筋肉と腱 | Duf-GAL4 | 筋肉、上皮、早期発症 | GAL4 ライン | BL 66682 | kirre-rP298、創始者細胞のマーカー | 15 | ||||||
UA-レポーター | UA– GFP Gma | アクチン結合 | UAS ライン | BL 31776 | GFP の融合モエシンのアクチン結合ドメイン | 16 | ||||||
UA– mCherry-Gma | アクチン結合 | UAS ライン | – | Gma の融合 mCherry | 17 | |||||||
UA-Lifeact GFP | アクチン結合 | UAS ライン | BL 35544 | 18 | ||||||||
UA– Lifeact ルビー | アクチン結合 | UAS ライン | BL 35545 | 18 | ||||||||
UA-CD8-GFP | 膜結合 | UAS ライン | 様々 な株式、例えば: BL 32184 | 19 | ||||||||
UA-CD8-mCherry | 膜結合 | UAS ライン | BL 27391 と 27392 | 20 | ||||||||
UA-ヤシ-mCherry | パルミトイル化反応によって膜結合 | UAS ライン | BL 34514 | UAbrainbow | 21 |
表 1: 蛍光タグ勉強して筋腱形態体内に適した蛋白質のマーカー。
我々 は詳細に説明ここでは、簡単かつ成功した生活の蛹の筋腱の形態形成のイメージングを実行する方法 (図 1)。また、蛹を固定することができます、解剖、immunostained 抗体を用いたタンパク質マーカーがないライブにもラベルを付けることができますが利用可能な22。この場合、動きがないと興味の構造を coverslip の近くに配置できるので、画像の品質は一般的に高い。しかし、郭清と固定が損傷し、分子につながることができます。 または組織ダイナミクス、たとえば、筋肉のけいれんは、生きている有機体で学ぶことができます。
提案するプロトコルは、生活の筋腱の形態形成をイメージする方法をについて説明しますさまざまな蛍光付けられた蛋白質を用いたショウジョウバエ蛹。この生体内イメージング戦略を使用して、全体の生物の自然の環境に発達過程を研究できます。
成功した実験を分析する正しい発達時間ポイントを見つけるために不可欠です。たとえば、dorsolongitudinal 間接飛翔筋は、腹部の筋肉が後で開発、30 と 40 h APF26間のみ両端に接続 ≈16 h APF23で、腱のターゲットに添付ファイルを開始します。その結果、以前に発行された文献を分析する開発のタイミング ポイントを見つけるに使用するまたは、組織または興味の構造は、前に詳細に検討されていないが、全体的な開発では、最初に特徴付けられます。
特注プラスチック スライド上で正常に蛹を取り付け、溝が適切な寸法を持っていることが重要です: 深さ 0.4 mm 1.0 1.5 mm 幅と 0.3 – 溝が必要です。この深さでは、必要に応じてスペーサー coverslips にトップの coverslip までの正確な距離を調整することができます。ただし、少なくとも 1 つのスペーサー coverslip は毛管力によってサンプルから 50% のグリセロールを排出しないように使用必要があります。溝に蛹の正確な位置および興味の構造が、coverslip にできるだけ近くなるように最適化する必要があります経験が必要です。
蛹の多数は 1 つの顕微鏡のセッションでイメージを作成するはずですが、もし彼らすべてあらかじめマウントでき適切な発達のタイミングを確保するためイメージングまでインキュベータに格納されます。蛹必要があります全体のプロシージャを存続してもせめて eclose イメージング後、スライドを保持される場合みてください。生存率は、撮影条件、蛹に損害を与えるかどうかをチェックする、読み出しとして使用できます。
画像の設定は、実験の要件に従って慎重に選択する必要があります。短期的な映画は、高い信号対雑音比と高フレーム レートを比較的高いレーザパワーは、蛹をあまり損なうことがなく使用できますが、バランスを調整する必要があります。しかし、長期的な映画のためのレーザー出力は中程度のレベルで保たれる、特定の時間のポイントは、たとえば、20 分毎にではなく、蛹が継続的にイメージしない必要があります。ビューのフィールドのうち興味の構造が動かないように時間ポイント間 z スタックの位置を再調整する必要がある場合があります。私たちの知る限りでは、蛹のケースの開口部自体は影響しません発生時期。ただし、適切な発達のタイミングを確保するため、長期的な映画の温度制御の段階を使用ください。これらの考慮事項を念頭に置きつつ、非常に有益な映画を得ることができます。
提案するプロトコルは、筋腱の形態形成だけでなく、他の発展途上の組織、たとえば、29の翼の上皮を視覚化する使用できます。このプロトコルへ 3 つしか変更が必要: (1) 胸部や腹部ではなく翼の上蛹のケースを開く、(2) トップ coverslip および (3) の方の羽が蛹の位置異なる蛍光マーカー蛋白質の使用。CRISPR/Cas9-技術の進歩により、タグ内因より多くの蛍光蛋白質になります、簡単ショウジョウバエ30,31の内因性遺伝子座を対象になったので,32. 将来的に、これは多数の蛋白質、細胞、詳細の生理学的環境において全体の組織のダイナミクスの解明により。
The authors have nothing to disclose.
映画 S3 の獲得ありがとうマヌエラ Weitkunat。ラインハルト ・ フェスラーへの寛大な支援に感謝しております。この作業によって、エンボ若い調査官プログラム (f. s.)、欧州連合の第 7 フレームワーク プログラム (FP/2007-2013) の下で欧州研究評議会を支えられた/ERC 助成金 310939 (f. s.)、マックス ・ プランク協会 (エス、f. s.)、センター デ ラ日仏 (CNRS) (f. s.)、エクセレンス イニシアチブはエクス ・ マルセイユ大学 AMIDEX (f. s.)、LabEX 通知 (f. s.) とベーリンガー インゲルハイム フォン (エス)。
Stereomicroscope | Leica | MZ6 | product has been replaced by Leica M60 |
fly food in bottles (or vials) | – | – | standard culture medium |
paint brush | da Vinci | 1526Y | size 1 |
microscope slides | Thermo Scientific | VWR: 631-1303 | 76 x 26 mm |
double-sided tape (optional) | Scotch | 6651263 | 12 mm x 6.3 m |
petri dishes | Greiner Bio-One | 632102 | 94 x 16 mm |
paper tissues | Th.Geyer | 7695251 | |
forceps #5 (Dumont, inox, standard) | Fine Science Tools | 11251-20 | 0.1 mm x 0.06 mm tip |
forceps #5 (Dumont, inox, biology grade) | Fine Science Tools | 11252-20 | 0.05 mm x 0.02 mm tip |
Cohan-Vannas spring scissors | Fine Science Tools | 15000-02 | straight tip |
plastic slides with a groove (reusable) | custom-built | – | 75 x 26 x 4 mm plexi glass slide with 1.0-1.5 mm wide and 0.3-0.4 mm deep groove |
coverslips | Marienfeld | 107032 | 18 x 18 mm, No. 1.5H |
glycerol | Sigma-Aldrich | 49781 | dilute to 50 % in water |
adhesive tape | Tesa | 57370-02 | 1.5 mm x 10 m |