Un canal microfluidique avec parois latérales déformables offre contrôle de flux, gestion des particules, personnalisation de dimension de canal et autres reconfigurations en cours d’utilisation. Nous décrivons une méthode pour fabriquer un canal microfluidique avec flancs en un tableau d’épingles qui permet leur forme de changer.
Microfluidique composants doivent avoir des formes variées pour réaliser la microfluidique clés différentes fonctions comme mélange, séparation, piégeage des particules ou réactions. Un canal microfluidique qui déforme même après leur fabrication tout en conservant la forme de canal permet à haute reconfigurabilité spatio-temporelle. Cette reconfiguration est nécessaire dans ces fonctions microfluidiques clés qui sont difficiles à obtenir dans les systèmes existants de microfluidique « reconfigurable » ou « intégré ». Nous décrivons une méthode pour la fabrication d’un canal microfluidique avec une paroi déformable consistant en un tableau latéralement aligné des extrémités des goupilles rectangulaires. Actionner les goupilles dans leurs directions longitudinales change positions finales les-pins et donc, la forme des flancs de la chaîne discrétisée. Broche lacunes peuvent provoquer des fuites indésirables ou adhérence aux broches adjacents causées par les forces de ménisque. Pour combler les lacunes de la broche, nous avons introduit le remplisseur de gap axée sur la suspension d’hydrocarbures-fluoropolymère accompagné par une barrière en élastomère. Ce dispositif microfluidique reconfigurable peut générer des flux de forte temporelle dans le chenal déplacement ou peut interrompre l’écoulement dans n’importe quelle région de la manche. Cette fonctionnalité facilitera, à la demande, le traitement des cellules, des liquides visqueux, bulles de gaz et des fluides, même si leur existence ou leur comportement est inconnu au moment de la fabrication.
Dispositifs microfluidiques – micro-entreprises périphériques qui contrôlent les petites quantités de liquide et de leurs flux – offrent la miniaturisation des procédures biomédicales dans un format « puce » avec portabilité accrue et, souvent, l’abordabilité. Comme indiqué dans un récent examen1, divers composants microfluidiques constitués d’espaces caractéristiques positives ont été développés afin de réaliser les fonctions fluidiques de base et principaux comme mélange, séparation, piégeage des particules ou réactions.
Tandis que le comportement de nombreux dispositifs microfluidiques est déterminé dès la conception, certains types de dispositifs microfluidiques permettent la fabrication après modifications de leur structure ou leur comportement. Ici, nous nous référons à cette fonction comme « reconfiguration ». La reconfiguration des systèmes microfluidiques généralement réduit le temps et le coût nécessaires à la conception d’un dispositif, ou permet la personnalisation de la microfluidique mise en page ou les fonctions au fil du temps.
Décrit précédemment reconfigurable microfluidic devices tombent dans les trois catégories suivantes. Dans le premier, déformation des canaux en élastomère permet les débits et directions pour être changé pendant l’utilisation. Pour obtenir la reconfigurabilité, canaux en élastomère est déformées par diverses forces externes et contrôlables comme sources de pression pneumatique2, Braille actionneurs3ou4de cachetage de compression. Dans le second, dispositifs reconfigurables dépendent de conceptions modulaires, tels que les circuits fluidiques de multicouches, canaux modulaires avec magnétique d’interconnexions et axée sur les tubes microfluidics5. Dans la troisième, l’appareil lui-même n’est pas reconfigurable, mais transport de microgouttelettes électrode tableaux (souvent dénommés digital microfluidics)6,7 et pendaison microfluidique axée sur la baisse de dispositifs8 activer sur demande commutation de l’écoulement ou la route du fluide.
Néanmoins, bon nombre de ces reconfigurations sont limitées à l’échelle macroscopique et topologiques. Par exemple, beaucoup de dispositifs microfluidiques intégrée flux ou changez la direction de l’écoulement par s’effondrer de microcanaux dans régions prédéfinies. Toutefois, la position et le nombre de régions à être réduits ne sont pas reconfigurables. Bien que la microfluidique numérique a une variété de capacités de manipulation de fluide, flux possibles devraient être en grande partie limités par le volume de chaque goutte. En outre, lorsque les cellules sont cultivées dans des gouttelettes de milieux de culture cellulaire, un effort supplémentaire est nécessaire pour empêcher l’évaporation et la dissipation de gaz de gouttelettes et d’éviter l’osmolalité choc et changement brusque de pH.
Afin de réaliser la reconfigurabilité de niveau fonctionnalité de canal, nous avons proposé un dispositif microfluidique avec des parois latérales amovibles qui comprenait des tableaux, des éléments de la machine à reconfigurer dynamiquement lors de l’utilisation9. Pour former une paroi déformable, petites broches rectangulaires ont été alignés pour que chaque extrémité des goupilles définit un segment de la paroi latérale. Glisser les broches a permis la déformation de la paroi latérale qui a permis le transport ou la structuration des cellules, des bulles et des particules à l’intérieur du canal. Pour réduire au minimum le volume mort et maximiser la reconfigurabilité, la distance entre les axes adjacents a dû être réduite au minimum. Toutefois, forte capillarité agissant sur les petites lacunes entre les broches de raccordement à l’intérieur et à l’extérieur de la microchannel provoque la fuite de tout liquide entrant dans l’écart de l’axe, provoquant l’évaporation de médias, contamination bactérienne ou cytotoxique et finit par cellule mort. Par conséquent, nous avons développé des canaux microfluidiques reconfigurable étanches discrétisée flanc type supporter des actions cycliques broche et à long terme de la culture de cellule10.
Dans cet article, nous fournissons un protocole pour construire le dispositif de culture de cellule de microfluidique avec un flanc discrétisée qui peut être reconfiguré à la suite de l’augmentation progressive dans la zone de culture de cellules. Étanchéité à l’air des flancs des canaux discrets est testée à l’aide d’imagerie de fluorescence. La compatibilité de culture cellulaire et la capacité de structuration de la cellule sont évaluées à l’aide de culture cellulaire sur puce.
Ce système microfluidique est adapté chaque fois que la conception de canal approprié ne peut être prédéterminée et doit être changée à la demande. Par exemple, ce système pourrait servir à ajuster le taux de largeur et de débit canal basé sur la croissance cellulaire ou la migration, vers nématodes actives flow ou piège ou autres petits objets qui se comportent de façon inattendue dans le canal, ou d’accepter différents échantillons bruts ou bioproduits qui n’étaient pas encore conçu au moment du design.
La broche-discrétisé microchannel est un canal microfluidique complet, et nous pensons qu’il a évidemment élevée reconfigurabilité en forme de canal par rapport à tous les canaux microfluidiques existants. Le protocole que nous fourni ici permettra aux dispositifs microfluidiques capables de culture cellulaire avec élargissant progressivement surface de culture cellulaire pour maintenir les cultures sous confluence pour une longue durée. Le dispositif fournira également dans le chenal structuration de cellules sans structuration des protéines sur le substrat au préalable ou de toute autre considération au moment du design ou de fabrication. En outre, ce dispositif microfluidique reconfigurable génère facilement débit fort déplacement dans le chenal, ce qui contribuerait à l’auto-assistance de tels matériaux de difficile-à-flow que très peu de microfluidique existant peuvent gérer des périphériques. Cela signifie que l’interaction entre les cellules et autres micro-organismes, gaz et autres fluides-non peut être évaluée à l’aide de cet appareil sans modifications importantes dans la conception de l’appareil.
Nous avons envisagé l’application pression de Laplace et de la pression hydrostatique à une entrée du canal en tant que méthodes de contrôle de flux externes. Nous ne recommandons pas pousser le liquide dans une impasse car il génère des flux vers le canal d’évacuation d’air à travers les écarts entre les pins et le plafond et le plancher du canal. Nombreuses opérations de fluide ne nécessitent pas de telles opérations de broche. Par exemple, mélange est possible en écrasant le liquide par une broche (c’est-à-dire, seulement une épinglette du déplacement en arrière à plusieurs reprises).
Les parties les plus critiques de l’appareil sont les broches. Précision de longueur, parallélisme, perpendicularité et qualité de surface sont nécessaires pour les broches, car ils doivent former un MICROCANAL, doivent se déplacer en douceur et doivent guider le mouvement de pins adjacentes. Par conséquent, nous recommandons que les goupilles doivent être commandés auprès d’une société qui se spécialise dans l’usinage de précision en soumettant un dessin similaire à la Figure 2A. Il existe peut-être des entreprises qui ont besoin de dimensionnement géométrique supplémentaires et indications explicites de rugosité. Toutefois, les broches sont réutilisables, s’ils sont manipulés avec soin et parfois passivés avec l’acide nitrique.
La barrière en élastomère est une autre caractéristique essentielle, et sa formation est l’étape la plus critique dans les processus de fabrication de l’appareil. Il faudra une base usinée avec précision pour obtenir des résultats fiables et reproductibles. Placer les goupilles sur la barrière non durcie, c’est aussi une étape cruciale. Les tiges doivent être tenus bien alignées et incorporé dans l’orifice de remplissage de vide et la barrière sans bulles d’air. Ces étapes éviter les fuites à travers les tiges, qui est un problème commun avec ce dispositif microfluidique.
Autres problèmes courants dans l’utilisation de cet appareil sont les épingles a) par friction sobres et la mort des cellules b) et le faible taux de croissance. Les causes possibles pour ces derniers dans un) comprennent la gravure (conique ou ondulée) inégale de la qualité de milieu, pauvre de broche de la gravé misfit surface et dimensionnel entre la hauteur de tête de broche et la hauteur de la couche de résine photosensible sur un moule de silicone dalles. Ajustement de la formulation de mordançage, température et agitation peut aider à améliorer la circulation de la broche. En outre, essai montage sans utiliser de cire ou colle fournira des conseils pour résoudre le problème. B facteurs possibles) sont insuffisante passivation des broches, des erreurs dans la sélection des adhésifs pour barrières en élastomère et polymérisation incomplète des colles. Certaines cellules peuvent nécessiter le revêtement à l’intérieur de la microchannel avec la fibronectine ou autres protéines ou des polymères qui favorisent l’adhésion cellulaire. En outre, optimisation dans la pratique de la culture de cellule comme trypsinisation et centrifugation diminuera les cellules mortes dans le microcanaux.
Une des limitations du protocole fabrication présenté est que seulement un des flancs est discrétisé. La reconfigurabilité du canal améliorera encore si les deux flancs sont construits par des tableaux de broche. Bien que cela nécessite le double d’épingles et des étapes de fabrication plus longs, il s’agit d’une option techniquement viable.
The authors have nothing to disclose.
Cette recherche a été financée par KAKENHI (20800048, 23700543).
Oven | Yonezawa | MI-100 | |
10% Nitric Acid | Wako Chemicals | 149-06845 | |
Stainless steel pins | Micro Giken | N/A | 0.3 mm crosssection, Grade 316L stainless steel, wire-cut EDM |
Mold release agent | Fluoro Technology | FG-5093SH | |
Polydimethylsiloxane (PDMS) | Shin-Etsu Chemicals | KE-106 | |
Negative epoxy photoresist | Nippon Kayaku | SU-8 3050 | |
Coverglasses (Rectangular) | Matsunami Glass | 26 x 60mm No.4 | |
Acetone | Kanto Chemicals | 01060-79 | |
Glass slides (Large) | Matsunami Glass | 76 x 52mm No.1 | |
Silicone adhesive | Shin-Etsu Chemicals | KE-41 | |
White petrolatum | Nikko Rica | Sun White P-1 | |
Polytetrafluoroethylene (PTFE) powder | Power House Accele | Microfluon II | |
Clear acrylic plate (3 mm-thick) | Various | N/A | |
Pneumatic dispenser | Musashi Engineering | ML-5000XII | |
Hydrochloric acid | Kanto Chemicals | 180768-00 | |
Computer numerical control (CNC) mill | Pro Spec Tools | PSF240-CNC | |
End mill (4 mm diameter) | Mitsubishi Materials | MS2MSD0400 | |
End mill (1 mm diameter) | Mitsubishi Materials | MS2MSD0100 | |
Adhesive (chemical-resistant and low viscosity ) | Cotronics | Duralco 4460 | |
Borisilicate glass vials | Various | To prepare HNO3+HCl solution (Aqua regia). Always select borosilicate glass. | |
Sodium bicarbonate | Kanto Chemicals | 37116-00 | |
Ultrasonic cleaner | AS ONE | AS12GTU | |
Ultrasonic drill | Shinoda Tools | SOM-121 | Used as a ultrasonic homogenizer. |
Spin coater | Active | ACT-220DII | |
Hotplate | AS ONE | ND-1 | |
Photoplotted film (12,700 dpi) | Unno Giken | N/A | Negative image of the recess at the bottom of a PDMS slab are plotted. |
2-methoxy-1-methylethyl acetate | Wako Chemicals | 130-10505 | |
UV spot light source | Hamamatsu | L8327 | Ultraviolet source |
Nitrogen | Various | N/A | |
Vacuum desiccator and pump | AS ONE | MVD-100, GM-20S | |
Scalpels | Various | No.11 | |
Biopsy punches (1.0mm and 2.0mm) | Kai Medical | BP-10F(1.0m), BP-20F(2.0mm) | |
Glass engraving pen | Various | N/A | |
Cleaning solution | Tama Chemicals | TMSC | Dilute 1:100 with deionized water |
Sputter coater | San-yu Electron | SC-708 | For plasma bonding. |
Dispenser syringe (5 ml) | Musashi Engineering | PSY-5E | |
Plunger | Musashi Engineering | FLP-5E | |
Blunt needle (21G) | Musashi Engineering | PN-21G-B | |
Adapter tube | Musashi Engineering | AT-5E | |
Fermenter | Japan Kneader | PF100 | |
Green fluorescent dye (Alexa Fluor 488 carboxylic acid) | Thermo Fisher | A33077 | |
Large plastic dish | Greiner bio-one | 688161 | |
Absorbent paper | Asahi Kasei | BEMCOT M-1 | |
Inverted microscope | Leica | DMi8 | |
Microscope camera | Qimaging | Retiga 2000R | |
Dulbecco modified Eagle medium (DMEM) | GE Health Care | SH30021.01 | |
Antibiotic-antimycotic solution | Thermo Fisher | 15240-062 | |
Trypsin/EDTA solution | Thermo Fisher | 25200-056 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | GE Health Care | SH30256.01 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Biowest | S1820 | |
Cell counter | FPI | OC-C-S02 | |
Cell culture vessel | VIOLAMO | VTC-D100 | |
15 ml conical tube | Corning | 352095 | |
Shop microscope | PEAK | 2034-20 | |
Hand sprayer | FURUPLA | No.3530 | |
Coverglasses (Rectangular) | Matsunami Glass | 10 x 20mm No.4 | |
CAD/CAM software | Autodesk | Inventor HSM | |
Nitrogen gas pressure regulator | AS ONE | GF1-2506-RN-V | Set to 0.1 MPa |