Aqui, apresentamos dois protocolos para a medição de mitocondrial Ca2 + afluxo em mitocôndrias isoladas e células cultivadas. Por mitocôndrias isoladas, detalhamos uma placa baseada no leitor Ca2 + importação ensaio usando o Ca2 + sensível tingir cálcio verde-5N. Para culturas de células, nós descrevemos um método de microscopia confocal, usar a tintura de Ca2 + Rhod-2h.
CA2 + manipulação por mitocôndrias é uma função crítica que regulam processos fisiológicos e fisiopatológicos em um amplo espectro de células. A capacidade de medir com precisão o influxo e efluxo de Ca2 + de mitocôndrias é importante para determinar a função mitocondrial Ca2 + tratamento nestes processos. Neste relatório, nós apresentamos dois métodos para a medição de mitocondrial Ca2 + manipulação em mitocôndrias isoladas e células cultivadas. Nós primeiro detalhe uma plataforma baseada em leitor de placa para medir mitocondrial Ca2 + absorção usando o Ca2 + corante sensível cálcio verde-5N. O formato baseado em leitor de placa contorna a necessidade de equipamento especializado, e o corante verde-5N de cálcio é ideal para medição de Ca2 + de mitocôndrias isoladas de tecido. Para a nossa aplicação, nós descrevemos a medição de mitocondrial Ca2 + absorção em mitocôndrias isoladas de tecido do coração de rato; no entanto, este procedimento pode ser aplicado para medir mitocondrial Ca2 + absorção em mitocôndrias isoladas de outros tecidos como fígado, músculo esquelético e o cérebro. Em segundo lugar, descrevemos um ensaio baseado em microscopia confocal para medição de mitocondrial Ca2 + em pilhas permeabilized usando o Ca2 + sensível corante Rhod-2h e imagem usando microscopia de varredura a laser 2-dimensional. Este protocolo de permeabilização elimina contaminação citosólica corante, permitindo a gravação específica de alterações no mitocondrial Ca2 +. Além disso, microscopia de varredura a laser permite altas taxas de quadros capturar mudanças rápidas em mitocondrial Ca2 + em resposta a várias drogas ou reagentes aplicados na solução externa. Este protocolo pode ser aplicado para medir mitocondrial Ca2 + absorção em muitos tipos de células, incluindo as células primárias como miócitos e neurônios e linhas celulares imortalizado.
As mitocôndrias são sites críticos de Ca2 + armazenamento intracelular e sinalização. Décadas de pesquisa demonstraram que as mitocôndrias têm a capacidade de importar e sequestro de Ca2 + 1,2. Mitocôndrias, no entanto, não são meramente passivas sites de armazenamento de Ca2 + . CA2 + no compartimento mitocondrial executa funções de sinalização fundamentais, incluindo o Regulamento da produção metabólica e ativação das vias de morte celular mediada por mitocondrial, que tem sido revisado anteriormente3. Para a regulação metabólica, Ca2 + aumenta a atividade de três matriz-localizada desidrogenases do ciclo do ácido cítrico, bem como complexos da cadeia respiratória, para aumentar a produção de energia mitocondrial4,5 . Com a sobrecarga de Ca2 + mitocondrial e desregulação mitocondrial Ca2 + manipulação, Ca2 + disparadores transição de permeabilidade mitocondrial pore abertura (MPTP), levando a permeabilização da membrana mitocondrial interna, perda potencial de membrana, disfunção mitocondrial, inchaço, ruptura e, finalmente, da pilha morte6,7,8,9. Assim, Ca2 + sinalização mitocondrial impacta diretamente a vida celular e vias de morte através do controle metabólico e eixo MPTP-morte.
Nos últimos anos, lá tem sido rápida expansão interesse no estudo da mitocondrial Ca2 + dinâmica devido, em grande parte para a identificação dos componentes moleculares do Ca2 + uniporter mitocondrial complexa, um interior mitocondrial transportador de membrana que é um modo primário de Ca2 + importar para a matriz mitocondrial 10,11,12. Identificação destas subunidades estruturais e reguladoras do uniporter tem trazido a possibilidade de direcionamento geneticamente mitocondrial Ca2 + influxo para modular a função mitocondrial e disfunção e facilitou o estudo do contribuição do uniporter complexo e mitocondrial Ca2 + influxo a doença13,14,15. Com efeito, Ca2 + sinalização mitocondrial tem sido implicada nas patologias de um diversificado leque de doenças que variam de doença cardíaca a neurodegeneração e câncer16,17,18, 19,20.
Dada a importância fundamental da mitocondrial Ca2 + sinalização no metabolismo e morte celular e combinado com o amplo alcance dos sistemas biológicos que Ca2 + sinalização mitocondrial impacta, métodos para avaliar mitocondrial Ca2 + influxo são de grande interesse. Não surpreendentemente, desenvolveram-se uma variedade de técnicas e ferramentas para medir mitocondrial Ca2 + . Estes incluem métodos que utilizam ferramentas como fluorescente Ca2 +-corantes sensíveis21,22 e geneticamente codificado Ca2 + sensores direcionados para a mitocôndria, como cameleon e aequorin23, 24. O objetivo deste artigo é destacar os diferentes métodos e sistemas de modelo no qual mitocondrial Ca2 + absorção pode ser medida. Apresentamos dois métodos experimentais para avaliar a capacidade mitocondrial Ca2 + influxo. Usando a mitocôndria cardíaca como um exemplo, detalhamos uma plataforma baseada em leitor de placa de medição mitocondrial Ca2 + absorção usando o Ca2 + sensível tintura verde-5N de cálcio que é ideal para mitocôndrias isoladas de tecido14 . Também utilizando culturas de células de NIH 3T3, descrevemos um ensaio baseado em imagem de microscopia confocal para medida de mitocondrial Ca2 + em pilhas permeabilized usando o Ca2 + sensível corante Rhod-2h25.
Aqui, descrevemos duas abordagens diferentes para medir mitocondrial Ca2 + influxo. Extramitochondrial verde-5N método monitores a placa baseada em leitor de cálcio Ca2 + níveis e é um Ca2 + absorção ensaio que é bem adequado para medições em mitocôndrias isoladas. Enquanto mostramos resultados representativos de mitocôndrias isoladas de cardíacas murino, este ensaio pode ser facilmente adaptado para as mitocôndrias isoladas de tecidos com alta abundância mitocondrial, inclu…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pela concessão de financiamentos da associação americana de coração (JQK).
Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope | Olympus | FV1000 | |
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors | Biotek | ||
Tissue Homogenizer | Kimble | 886000-0022 | |
22 x 22 mm coverslips | Corning | 2850-22 | |
96 well plate | Corning | 3628 | |
6 well plate | Corning | 3506 | |
Calcium Green-5N | Invitrogen | C3737 | |
MitoTracker green FM | Invitrogen | M7514 | |
Rhod-2, AM | Invitrogen | R1244 | |
DMSO | Invitrogen | D12345 | |
Pluronic F-127 | Invitrogen | P3000MP | |
D-Mannitol | Sigma | M9546 | |
Sucrose | EMD Millipore | 8510 | |
HEPES | Sigma | H3375 | |
EGTA | Sigma | E8145 | |
Potassium chloride | Fisher | BP366-500 | |
Potassium phosphate monobasic | Sigma | P0662 | |
Magnesium chloride | Sigma | M2670 | |
Sodium pyruvate | Sigma | P2256 | |
L-malic acid | Sigma | M1125 | |
Calcium chloride | Sigma | C4901 | |
Potassium acetate | Fisher | BP364-500 | |
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt | Sigma | A9187 | |
Phosphocreatine disodium salt | Sigma | P7936 | |
Saponin | Sigma | S7900 | |
Ru360 | Calbiochem | 557440 |