Summary

Двухэтапный подход к исследовать ранние - и поздно этапы формирования органа в модели птичьего: тимуса и паращитовидных желез органогенеза парадигмы

Published: June 17, 2018
doi:

Summary

Эта статья содержит обновленный подход к классической перепела курица Химера системы для изучения формирования органа, комбинируя Роман in vitro и in ovo экспериментальных процедур.

Abstract

Птичий эмбриона, как экспериментальная модель, был крайне важное значение для семенных открытий в биологии развития. Среди несколько подходов, формирование перепела курица химер и пользования chorioallantoic мембрана (CAM) для поддержания развития внематочной тканей даты в прошлом веке. В настоящее время сочетание этих классических приемов с помощью последних в vitro методологий предлагает новые перспективы для дальнейшего изучения формирования органа.

Здесь мы описываем двухэтапный подход к изучению ранних – и поздно этапах органогенеза. Вкратце эмбриональных область, содержащая территории предполагаемого органа изолирован от перепела эмбрионов и выращивать в пробирке в системе organotypic (до 48 ч). Культурной ткани впоследствии привитым CAM куриного эмбриона. После 10 дней в ovo развития полностью сформированные органы получаются из привитых тканей. Этот метод также позволяет модуляции сигнальные пути регулярные отправления фармакологических агентов и генетические манипуляции ткани во всем in vitro и in ovo развития шаги. Кроме того развитие тканей могут быть собраны в любое время окна для анализа их профиль экспрессии генов (с использованием количественного PCR (ПЦР), microarrays и т.д.) и морфологии (оценены с обычными гистологии и иммунохимии).

Описанная процедура экспериментальной может использоваться как инструмент следовать формирования органа за пределами птичьего зародыша, из ранних стадиях органогенеза полностью сформирована и функциональных органов.

Introduction

Птичий эмбрионы были широко используется в семенных биологии развития исследований. Основные преимущества птичьего модели включают в себя возможность открыть яйцо, относительно легкий доступ к эмбрион и способности выполнять микроманипуляции. Некоторые примеры включают классические перепела курица Химера системы для изучения клеток судьба1применение конкретных факторов роста эмбриона2и рост внематочная клеточных структур в CAM1,3, 4.

Чтобы получить новый взгляд на различных этапах формирования органа, мы недавно разработали метод, который сочетает в себе прививочных методы манипуляции в vitro эмбриональных тканей5. Двухэтапный подход позволяет дискриминации и разведки из обоих ранних – и поздно этапах органогенеза, который часто ограничены из-за ткани весьма динамичного и сложного взаимодействия2. Кроме того, отсутствие подходящей ткани специфических маркеров часто ограничивает использование генетически модифицированных животных моделей6. Этот новый метод двухэтапный подход во многом преодолевает такие ограничения.

Для изучения ранних стадиях формирования органа, на первом шаге, перепелиные эмбриональных территории, включающей рудимент перспективных орган изолирована и вырос в пробирке organotypic системы в течение 48 часов. В этот период фармакологические модуляции конкретных сигнальных путей может выполняться путем добавления наркотиков культуры среднего5,7. Кроме того, культивировали тканей может быть собраны на любой стадии роста в пробирке и зондируемой для экспрессии генов (с помощью методов, таких как ПЦР, microarrays и т.д.).

На втором шаге, 48 h культурной ткани затем привитым CAM эмбриона курицы (c) на эмбриональных день (E) 8 (Уэ8) (гамбургер и Гамильтон (HH)-этапы 33-35)8. Кулачок ведет себя как поставщик сосудистой питательных веществ и позволяет газового обмена1,3,4 привитые тканей, позволяя ее развития в ovo для более длительных периодов времени. Этот экспериментальный шаг особенно хорошо подходит для изучения поздних стадиях органогенеза, как полностью сформированные органы могут быть получены после 10 дней в ovo развития5,9,10,11 . Морфологический анализ производится легко обычных гистология для подтверждения надлежащего органа формирование и происхождения доноров клеток могут быть идентифицированы по иммуногистохимия, используя вегетационных антитела (т.е., МАБ перепелиные PeriNuclear (QCPN)). Инкубационный период CAM графтов может быть вырос в присутствии фармакологических агентов и собранные на любой стадии развития для оценки прогрессирование органогенеза.

Двухэтапный подход, описанные здесь, в глубине, уже работают в Фигейреду и др. 5 для изучения общего развития зачаток птичьего околощитовидной железы/тимуса. Соответственно присущие особенности эмбриональных территорий и этапы развития участвующих в органогенеза тимуса и паращитовидных желез будет представлен ниже.

Тимуса и паращитовидных желез эпителия, хотя функционально различных, вытекают из энтодермы глоточные Чехлы (PP)12. В птичий, эпителия этих органов происходят из третьего и четвертого PP эндодермы (3/4PP)12, в то время как у млекопитающих тимуса эпителия происходит от 3PP и эпителия паращитовидных желез вытекает из 3PP и 3/4PP в мышь и человека, соответственно,1314.

Один из самых ранних этапов формирования этих органов является появление дискретных тимуса и паращитовидных желез домены в общий зачаток. В куриный эти домены может быть идентифицирован в situ гибридизация, с конкретными молекулярных маркеров, E4.515. По мере развития этих органа зачатки индивидуализировать и отдельно от глотки, в то время как тонкий мезенхимальных капсула, образованный нейронные крест производные клеток, их окружает (на E5; HH-stage 27). Позже на эпителии тимуса колонизирована гемопоэтических прогениторных клеток (в E6.5; HH-stage 30)12.

Как в классических исследований перепела курица1,12двухэтапный подход является особенно полезным для изучения формирования гемопоэтических/лимфоидных органов, а именно5тимуса. Как explant перепел, с орган рудимент, привитые в куриного эмбриона до колонизации клеток кроветворных прародителю, химерных тимус формируется с курица кровь прогениторных клеток проникновения перепелиные тимуса эпителиальные коллегой. Таким образом, этот метод является полезным инструментом для изучения вклада гемопоэтических клеток в развитии птичьего онко/лимфоидной системы.

Protocol

Все эти эксперименты следовать ухода за животными и этические принципы Medicina де истории Centro de Lisboa. 1. инкубации оплодотворенной перепела и куриные яйца Инкубируйте японского перепела (перепела перепела japonica) и куриные (Gallus gallus) оплодотворенные яйца 3 и 8 дней,…

Representative Results

Выше описанные детали протокола метод, который позволяет расследования из обоих ранних – и поздно этапах органогенеза, часто ограничивается сложных взаимодействий на клеточном и молекулярном. Этот метод был ранее занятых в Фигейреду <…

Discussion

Важнейшим аспектом для успеха этого метода является качество цыпленка и перепелиные яйца. Учитывая длительный инкубационный периоды, особенно в ovo assay, хорошее качество куриного яйца улучшает жизнеспособности ставок (до 90%) в конце процедуры. Для достижения этой цели, тест яйца от р…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы благодарны António Cidadão, Изабель Alcobia и Leonor Паррейра для критических чтении рукописи, Падма Akkapeddi для видео повествование, и делать Vitor Proa от службы гистология Instituto de Histologia e Biologia Развития, прослушал де Medicina де Lisboa, Universidade de Lisboa, для технической поддержки. Мы признательны особенно Паулу Caeiro и Уго Силва из Unidade de audiovisuais (аудиовизуальных единица), прослушал де Medicina де Lisboa, Universidade de Lisboa за их выдающуюся приверженность производства этого видео. Мы признаем Leica Microsystems за любезно предоставление стереоскоп, оборудованных с видео системы и Interaves – Sociedade Агро-Pecuária, С.А. вклад с перепелиным оплодотворенных яиц. Эта работа была поддержана прослушал де Medicina де Lisboa, Universidade de Lisboa (FMUL).

Materials

Chicken fertilized eggs (Gallus gallus) Pintobar, Portugal Poultry farm 
Quail fertilized eggs (Coturnix coturnix) Interaves, Portugal Bird farm 
15 mL PP centrifuge tubes Corning 430052
50 mL PP centrifuge tubes Corning 430290
60 x 20 mm pyrex dishes Duran group 21 755 41
100 x 20 mm pyrex dishes Duran group 21 755 48
Polycarbonate Membrane Insert  Corning 3412 24 mm transwell with 0.4 mm Pore Polycarbonate Membrane Insert 
Membrane filter Millipore DTTP01300 0.6 mm Isopore membrane filter
6-well culture plates Nunc, Thermo Fisher Scientific 140675
Petri dish, 35 x 10 mm Sigma-Aldrich P5112 
Pyrex bowls from supermarket 
Transfer pipettes Samco Scientific, Thermo Fisher Scientific 2041S 2 mL plastic pipet
Glass pasteur pipette normax 5426015
Whatman qualitative filter paper Sigma-Aldrich WHA1001090 Filter paper
Clear plastic tape from supermarket 
Cytokeratin (pan; acidic and basic, type I and II cytokeratins), clone Lu-5 BMA Biomedicals T-1302
Cyclopamine hydrate Sigma-Aldrich C4116 Pharmacological inhibitor of Hh signalling
Fetal Bovine Serum Invitrogen, Thermo Fisher Scientific Standart FBS
Paraformaldehyde Sigma-Aldrich P6148
Penicillin-Streptomycin Invitrogen, Thermo Fisher Scientific 15140-122
Phosphate-Buffered Saline (PBS) GIBCO, Thermo Fisher Scientific 10010023
QCPN antibody Developmental Studies Hybridoma Bank QCPN
RPMI 1640 Medium, GlutaMAX Supplement  GIBCO, Thermo Fisher Scientific 61870010
Bluesil RTV141A/B Silicone Elastomer 1.1Kg Kit ELKEM/Silmid RH141001KG To prepare the back base for petri dish
Stemolecule LY411575 Stemgent 04-0054 Pharmacological inhibitor of Notch signalling
TRIzol Reagent Invitrogen, Thermo Fisher Scientific 15596026 Reagent for total RNA isolation
Dumont #5 Forceps Fine Science Tools 11251-30  Thin forceps
Extra fine Bonn scissors, curved Fine Science Tools 14085-08 Curved scissors
Insect pins  Fine Science Tools 26001-30
Micro spatula  Fine Science Tools 10087-12 Transplantation spoon
Minutien Pins Fine Science Tools 26002-20 Microscalpel
Moria Nickel Plated Pin Holder Fine Science Tools 26016-12 Holder
Moria Perforated Spoon Fine Science Tools 10370-17 Skimmer
Wecker Eye Scissor Fine Science Tools 15010-11
Camera Leica Microsystems  MC170 HD
Stereoscope Leica Microsystems  Leica M80
Microscope Leica Microsystems  DM2500

References

  1. Le Douarin, N. M. The Nogent Institute-50 years of embryology. Int J Dev Biol. 49 (2-3), 85-103 (2005).
  2. Chuong, C. M., Wu, P., Plikus, M., Jiang, T. X., Bruce Widelitz, R. Engineering stem cells into organs: topobiological transformations demonstrated by beak, feather, and other ectodermal organ morphogenesis. Curr Top Dev Biol. 72, 237-274 (2006).
  3. Davey, M. G., Tickle, C. The chicken as a model for embryonic development. Cytogenet Genome Res. 117 (1-4), 231-239 (2007).
  4. Nowak-Sliwinska, P., Segura, T., Iruela-Arispe, M. L. The chicken chorioallantoic membrane model in biology, medicine and bioengineering. Angiogenesis. 17 (4), 779-804 (2014).
  5. Figueiredo, M., Silva, J. C., et al. Notch and Hedgehog in the thymus/parathyroid common primordium: Crosstalk in organ formation. Dev Biol. 418 (2), 268-282 (2016).
  6. National Research Council. Chapter 6 – Recent Advances in Developmental Biology. Scientific Frontiers in Developmental Toxicology and Risk Assessment. , (2000).
  7. Moura, R. S., Coutinho-Borges, J. P., Pacheco, A. P., Damota, P. O., Correia-Pinto, J. FGF signalling pathway in the developing chick lung: expression and inhibition studies. PLoS One. 6 (3), e17660 (2011).
  8. Hamburger, V., Hamilton, H. A series of normal stages in the development of the chick embryo. J. Morphol. 88, 49-92 (1951).
  9. Takahashi, Y., Bontoux, M., Le Douarin, N. M. Epithelio-mesenchymal interactions are critical for Quox 7 expression and membrane bone differentiation in the neural crest derived mandibular mesenchyme. EMBO J. 10 (9), 2387-2393 (1991).
  10. Maeda, Y., Noda, M. Coordinated development of embryonic long bone on chorioallantoic membrane in ovo prevents perichondrium-derived suppressive signals against cartilage growth. Bone. 32 (1), 27-34 (2003).
  11. Ishida, K., Mitsui, T. Generation of bioengineered feather buds on a reconstructed chick skin from dissociated epithelial and mesenchymal cells. Dev Growth Differ. 58 (3), 303-314 (2016).
  12. Le Douarin, N. M., Jotereau, F. Tracing of cells of the avian thymus trough embryonic life in interspecific chimeras. J. Exp. Med. 142, 17-40 (1975).
  13. Farley, A. M., et al. Dynamics of thymus organogenesis and colonization in early human development. Development. 140, 2015-2026 (2013).
  14. Gordon, J., Bennett, A. R., Blackburn, C. C., Manley, N. R. Gcm2 and Foxn1 mark early parathyroid- and thymus-specific domains in the developing third pharyngeal pouch. Mech Dev. 103, 141-143 (2001).
  15. Neves, H., Dupin, E., Parreira, L., Le Douarin, N. M. Modulation of Bmp4 signalling in the epithelial-mesenchymal interactions that take place in early thymus and parathyroid development in avian embryos. Dev Biol. 361 (2), 208-219 (2012).
  16. Jerome, L. A., Papaioannou, V. E. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nat Genet. 27 (3), 286-291 (2001).
  17. Nie, X., Brown, C. B., Wang, Q., Jiao, K. Inactivation of Bmp4 from the Tbx1 expression domain causes abnormal pharyngeal arch artery and cardiac outflow tract remodeling. Cells Tissues Organs. 193 (6), 393-403 (2011).
  18. Zou, D., Silvius, D., Davenport, J., Grifone, R., Maire, P., Xu, P. X. Patterning of the third pharyngeal pouch into thymus/parathyroid by Six and Eya1. Dev Biol. 293 (2), 499-512 (2006).
  19. Uematsu, E., et al. Use of in ovo. chorioallantoic membrane engraftment to culture testes from neonatal mice. Comp Med. 64 (4), 264-269 (2014).

Play Video

Cite This Article
Figueiredo, M., Neves, H. Two-step Approach to Explore Early- and Late-stages of Organ Formation in the Avian Model: The Thymus and Parathyroid Glands Organogenesis Paradigm. J. Vis. Exp. (136), e57114, doi:10.3791/57114 (2018).

View Video