Dit protocol is gericht op specifieke cellen in weefsels voor beeldvorming op de nanoschaal resolutie met behulp van een Scannende Elektronen Microscoop (SEM). Groot aantal seriële secties uit biologisch materiaal hars-embedded zijn eerste beeld in een lichte Microscoop te identificeren van het doel, waarna in een hiërarchische wijze in de SEM.
Gericht op specifieke cellen op ultrastructureel resolutie binnen een populatie van gemengde cel of een weefsel kan worden bereikt door de hiërarchische geschikt zijn met behulp van een combinatie van de licht- en elektronenmicroscopie. Monsters in de hars ingesloten zijn gesegmenteerd in arrays bestaande linten van honderden uiterst dunne secties en gestort op stukken van silicium wafer of conductively gecoate coverslips. Arrays zijn beeld met een lage resolutie met behulp van een digitale consument zoals smartphone camera of lichte Microscoop (LM) voor een overzicht van de snelle groot gebied, of een breed veld fluorescentie Microscoop (fluorescentie lichte microscopie (FLM)) na het labelen met fluorophores. Na na kleuring met zware metalen, zijn matrices beeld in een Scannende Elektronen Microscoop (SEM). Selectie van de doelen is mogelijk vanuit 3D-reconstructies gegenereerd door FLM of vanuit 3D-reconstructies gemaakt van de SEM-afbeeldingsstapels op tussenliggende resolutie als geen fluorescente markeringen beschikbaar zijn. Ultrastructurele p.a., geselecteerde doelen worden uiteindelijk opgenomen in de SEM op hoge resolutie (een paar nanometer afbeeldingspixels). Een lint-handling tool die kan worden ingebouwd om eventuele ultramicrotome wordt aangetoond. Het helpt met matrix productie en verwijdering van het substraat vanaf de vectorafbeeldingsbestanden mes boot. Een softwareplatform waarmee geautomatiseerde beeldvorming van matrices in de SEM wordt besproken. Vergeleken met andere methoden voor het genereren van grote hoeveelheden EM gegevens, zoals seriële blok-gezicht SEM (SBF-SEM) of gerichte ion beam SEM (FIB-SEM), deze aanpak heeft twee grote voordelen: (1) het hars-embedded monster wordt behouden, zij het in een gesneden-up versie. Het kan op verschillende manieren gekleurd en beeld met verschillende resoluties. (2) zoals de secties post kunnen worden gekleurd, is het niet nodig om monsters sterk blok-gekleurd met zware metalen te introduceren contrast voor SEM imaging of maken het weefsel blokken geleidende. Dit maakt de methode die van toepassing zijn op een grote verscheidenheid van materialen en biologische vragen. Met name vastgestelde materialen b.v.uit biopsie banken en pathologie labs, kunnen direct worden ingesloten en gereconstrueerd in 3D.
Voor de wederopbouw van grote hoeveelheden weefsel bij ultrastructurele resolutie zijn een aantal verschillende beeldvormende benaderingen gebaseerd op SEM gebruikte1: uitgebreide reviews zijn beschikbaar bv., voor de SBF-SEM2, FIB-SEM3en Array Tomografie (AT)4. Terwijl voor de laatste methode is het monstermateriaal bewaard als een matrix van seriële secties op een substraat, zijn SBF-SEM en FIB-SEM destructieve methoden, bezig met het monster blok en consumeert tijdens imaging. Als gevolg van het in rekening brengen van de hars in de SEM, hangen zij ook sterk gemetalliseerde monster blokken5.
Aan de andere kant, kan identificatie van bepaalde cellen of structuren van belang binnen een weefsel monster profiteren met name van oereenstemming licht- en elektronenmicroscopie (CLEM)6,7,8. Met behulp van FLM voor targeting sluit de toepassing van grote hoeveelheden van heavy metal aangezien dit zou de fluorescentie signaal9doven. Voor deze enige enigszins gemetalliseerde monsters is AT de methode van keuze omdat arrays mogelijk gemakkelijk na gebeitst en heavy metal na LM imaging. Bovendien, bijna elk type van de steekproef kan worden gebruikt voor AT, zelfs routine monsters van de patholoog van schat borst10.
Een ander groot voordeel van AT is het potentieel voor hiërarchische11 of multi-resolutie beeldvormende12: het is niet nodig om het imago van alles in hoge resolutie, zoals doelstellingen kunnen worden geselecteerd in een verschillende modaliteit (bijvoorbeeldFLM) of in lage SEM resolutiebeelden. Imaging alleen de interessante regio’s van de bevolking van een weefsels of cellen op hoge resolutie digitale data-opslag ruimtebesparing en produceert kleinere datasets van de afbeelding, die gemakkelijker te hanteren. Hier, de AT-werkstroom wordt aangetoond door middel van een nogal zwak gemetalliseerde monster: hogedruk bevroren plantenwortels (Arabidopsis thaliana) ingebed in de hydrofiele hars.
Hoe de arrays worden voorbereid, gekleurd, en beeld in zowel FLM en SEM, en hoe de afbeeldingsstapels worden geregistreerd worden toegelicht. Ook, hoe de 3D reconstructie van het FLM-volume kan worden gebruikt voor het selecteren van bepaalde cellen voor beeldvorming in de SEM op nanoschaal resolutie wordt geïllustreerd.
Een workflow voor het richten van specifieke cellen binnen een weefsel door multimodale hiërarchische AT bleek: een monster hars-embedded is gesneden omhoog in arrays van seriële secties, die in een geleidende substraat met behulp van een speciaal ontworpen substraat-houder worden gebracht. Na labelen met een fluorophore en beeldvorming in de DLM, wordt het gereconstrueerde volume gebruikt voor het selecteren van de doelcellen. Na kleuring van extra rondes met zware metalen om contrast, zijn deze doelstellingen beeld over meerdere honderd secties op nanoschaal resolutie in een SEM met behulp van een geautomatiseerde softwareplatform.
Voor de productie van dichtbevolkte verpakt arrays met verschillende lange linten, is een vergelijkbaar is met de hier beschreven substraat-houder nodig. Een bekwame en geduldige persoon mogelijk verschillende linten hechten aan een ondergrond van silicium, semi-ondergedompeld in de mes-boot, en de matrix op te halen door de waterstand geleidelijk te verlagen totdat de linten op de drager vervagen zitten. Echter, in de onze ervaring, er is een neiging om te verbrijzelen vorming wanneer het substraat is aanraakt de boot mes (cf. nota in 1.3.2 in protocol). Deze procedure is bovendien veel moeilijker met ITO-gecoate ondergronden: (1) door de transparantie van de ITO-glas, is het moeilijk om te zien de rand van het water waar de uiteinden van de linten hebben moeten worden gevoegd; en (2) omdat het ITO-gecoate oppervlak veel ruwer dan de zeer gepolijst silicium wafer is, de linten hebben de neiging te breken tijdens lift-out en kleinere fragmenten uit een paar secties kunnen zweven, dus het vernietigen van de volgorde van de secties.
De hele workflow is ook mogelijk zonder correlatie met FLM gegevens. In dit geval wellicht verzamelen van de gegevens in de SEM in meerdere sessies worden uitgevoerd. Een eerste 3D reconstructie of op zijn minst evaluatie van gegevens met lage of middelgrote resolutie kunnen nodig zijn ter specificatie van de doelen. Daarnaast kunnen conventionele histologische vlekken voor helderveld LM (niet vereisen FLM) worden toegepast. Natuurlijk zijn andere opties6,7,8 antilichaam etiketten op de arrays, zoals al blijkt in het eerste papier op in18, genetisch gecodeerd fluorescerende eiwitten (XFPs) of vooraf te embedding labeling met behoud van fluorescentie tijdens de bereiding.
Een algemene beperking van de besproken methode is het gebruik van secties van een bepaalde dikte en de resulterende discrete bemonstering van het 3D-volume: resolutie in Z kan alleen worden zo goed als de dikte van de secties aangezien de SEM alleen gegevens van de oppervlakte van de sectie (d verzamelt epending op de energie van de primaire energie/landing geselecteerd). Dit betekent dat het resulterende 3D-volume anisotrope voxels, bijv heeft., 5 x 5 x 100 nm3 als 100 nm secties en een afbeelding pixelgrootte van 5 nm worden gebruikt. Voor zeer kleine entiteiten in een grootte onder 1 µm, dit kan niet voldoende moeten zijn voor een echte ultrastructurele beschrijving. Een meer technische beperking is de nauwkeurigheid van de etappe in de SEM gebruikt voor geautomatiseerde imaging. Wegens dit is het noodzakelijk om te kiezen een ROI groter is dan de specificaties van de stadium nauwkeurigheid te garanderen dat de volledige doelgebied is beeld.
Vergeleken met de SBF-SEM en FIB-SEM als blok-gezicht beeldvormende methoden, heeft oereenstemming AT het definitieve nadeel van anisotrope voxels, zoals hierboven beschreven. Met FIB-SEM, kan isotrope voxels van 5 x 5 x 5 nm3 worden verkregen wanneer een juiste drift correctie op zijn plaats is.
Hiaten in het gereconstrueerde volume als gevolg van verlies van secties tijdens voorbereiding van arrays mogelijk ook een bron van zorg die niet wordt aangetroffen met SBF-SEM of FIB-SEM. Met goede lint stabilisatie door lijm, dit is meestal alleen een probleem voor het laatste gedeelte van een lint: het is mogelijk beschadigd wanneer het vrijgeven van het uit het scherp van de snede met behulp van de wimpers. Echter in onze ervaring, heeft het verlies van één sectie in elke 20 – 50 secties geen invloed op beeldregistratie.
Aan de andere kant, verleent de mogelijkheid om post vlek matrices goed signaal en het contrast voor SEM imaging, zelfs op zwak gemetalliseerde monsters zoals de hogedruk bevroren wortel tips hieronder. Daarom is het niet nodig om optimale ultrastructurele behoud door talrijke chemische fixatie en metallisatie stappen compromissen te sluiten. Routine monsters van de pathologie lab met tussenliggende graden van metallisatie leveren ook uitstekende gegevens10. Dergelijke een post inbedden contrastverbetering is niet mogelijk voor SBF-SEM en FIB-SEM in het algemeen. Bovendien, aangezien deze methoden destructieve zijn, dat wil zeggen, consumeren van het monster tijdens imaging, hiërarchische beeldvorming bij verschillende resoluties en sites of herhaalde imaging op latere tijdstippen in tijd is onmogelijk. In principe, onbeperkt volumes, bestaande uit grote FOVs (b.v., tot enkele millimeters voor hele muis hersenen in connectomics) gemaakt door stiksels mozaïeken en massaal secties kunnen worden verworven door AT, terwijl in FIB-SEM, FOVs dan 100 µm x 100 µm zijn moeilijk te bereiken met de gebruikelijke instrumenten.
Verdere automatisering van de beschreven AT-werkstroom zou een duidelijk voordeel, aangezien de bovengenoemde methodes SBF-SEM en FIB-SEM zowel afdelen en beeldvorming in hetzelfde instrument in een volledig geautomatiseerde wijze uitvoeren. Een soort van automatisering van afdelen bestaat: de ATUMtome12 kunt genereren en verzamelen duizenden secties, maar het gebruik van Kapton tape als een substraat dergelijke maakt arrays moeilijk naar afbeelding in een FLM. Op de ITO-gecoate coverslips hier gebruikt, moet zelfs Super resolutie beeldvorming mogelijk. Een verdere, zeer wenselijk doel voor automatisering zou de opname van het FLM gegevensstacks. Aan de andere kant, automatisering kan duur en met uitzondering van de houder van de ondergrond, de werkstroom gepresenteerde afhankelijk (in termen van hardware) alleen instrumentatie meestal beschikbaar in een routine EM laboratorium of core faciliteit, waardoor het lage niveau van toegang.
The authors have nothing to disclose.
Dit werk werd gesteund door grant FKZ 13GW0044 van het Duitse federale ministerie van onderwijs en onderzoek, project MorphiQuant-3D. Wij danken Carolin Bartels voor technische ondersteuning.
Instrumentation | |||
Ultramicrotome | RMC | PT-PC | Alternative: Leica UC7 |
Substrate holder | RMC | ASH-100 | Alternative: home built |
Plasma cleaner | Diener | Zepto 40kHz | Alternatives: Ted Pella Pelco or other benchtop plasma cleaner Example Parameters for Diener Zepto with 40kHz generator (0-100W); 0.5 mbar, 5 sccm (Air), 10% performance |
Widefield fluorescence light microscope | Zeiss | Axio Observer.Z1 | Alternatives: Leica, Nikon, Olympus |
Fluorescence filter set | Zeiss | 43 HE (Cy3/DsRed) | |
Objective lens | Zeiss | Zeiss Neofluar 40x | 0.75 NA |
Decent workstation able to handle GB-sized image data | |||
FESEM | Zeiss | Ultra 55 | Alternatives: FEI, Jeol, Hitachi, TESCAN |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Sectioning | |||
Razor blades | Plano | T585-V | |
Diamond knife for trimming 45° | Diatome | DTB45 | |
Diamond knife for trimming 90° | Diatome | DTB90 | |
Jumbo diamond knife for sectioning | Diatome | DUJ3530 | |
Silicon wafer (pieces) | Si-Mat | Custom Made | Doping: P/Bor, orientation: <100>, thickness: 525 ± 25 µm, resistivity: 1-30 Ω-cm http://si-mat.com/silicon-wafers.html |
ITO-coated coverslips | Balzers | Type Z | 22 × 22 × 0.17 mm https://www.opticsbalzers.com/de/produkte/deckglas-fenster/corrslide.html |
Aluminium carrier | Custom Made | 76 × 26 mm | |
Wafer forceps | Ideal-tek | 34A.SA | |
Stubs forceps | Dumont | 0103-2E1/2-PO-1 | Dumoxel-H 2E 1/2 |
Diamond scriber | Plano | T5448 | |
Eyelash/very soft cat's hair | Selfmade | Alternative: Plano | |
Brush | Selfmade | ||
Pattex contact adhesive | Pattex | PCL3C | Kraftkleber Classic (the yellowish one) |
Fixogum | Marabu | 290110001 | for fixing substrate to carrier |
Adhesive tape | 3M | 851 | for fixing substrate to carrier |
Isopropanol | Bernd Kraft | 07029.4000 | |
Xylene | Carl Roth | 4436 | thinner for glue mixture |
Rotihistol | Carl Roth | 6640 | alternative, limonene based thinner |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
Image processing | Open source | Fiji (http://fiji.sc/#download) | |
Image acquisition | Zeiss | Atlas 5 AT (module for Zeiss SEM) |
Alternative for automated image acquisition: WaferMapper: https://software.rc.fas.harvard.edu/lichtman/LGN/WaferMapper.html |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Staining | |||
Propidiumiodide | Sigma-Aldrich | P4170 | Stock solution: 1.5 mM in 0.1 % sodium azide |
Uranylacetate | Science Services | E22400 | |
Lead(II) Nitrate | Merck | 107398 | |
Tri Sodium Citrate Dihydrate | Merck | 106448 | |
NaOH pellets | Merck | 106469 | |
1M NaOH solution | Bernd Kraft | 01030.3000 | |
Glass petri dish | Duran | 23 755 56 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Mounting | |||
Stubs | Plano | G301F | |
Carbon pads | Plano | G3347 | |
Copper tape | Plano | G3397 | double-sided adhesive, conductive |
Silver paint | Plano | G3692 | Acheson Elektrodag 1415M |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Solutions/mixtures | |||
Adhesive mixture for coating blocks | Pattex contact adhesive /xylene as thinner, ratio 1:3. (Alternative for xylene: Rotihistol) |
||
Reynolds lead citrate | 50 mL: Dissolve 1.33 g of lead(II) nitrate in 10 mL of dH2O. Dissolve 1.76 g of tri-sodium citrate dihydrate in 10 ml dH2O. Mix both and add 1 M sodium hydroxide until the solution is clear. Fill up with dH2O to 50 mL. |
||
Propidium iodide staining solution | Prepare 1:1500 dilution from stock in dH2O. Vortex for adequate mixing. |
||
Aqueous uranyl acetate | Dissolve 3 % uranyl acetate in dH2O (mix thoroughly). |