Wir beschreiben eine dramatisch verbesserte Methode für Maus Klonen mit entionisiertem Rinderserumalbumin Trichostatin A und Vitamin C. Wir zeigen eine vereinfachte, reproduzierbare Protokoll, die effiziente Entwicklung von geklonten Embryonen unterstützt. Diese Methode könnte daher ein standardisiertes Verfahren zum Klonen von Maus geworden.
Somatische Zellkerntransfer (SCNT) bietet eine einzigartige Gelegenheit, eine geklonte Tier aus einer Zelle Spender direkt zu produzieren, und es erfordert den Einsatz von geschickten Techniken. Darüber hinaus haben die Effizienz des Klonens seit der erfolgreichen Produktion von geklonten Tieren, vor allem Mäuse gering geblieben. Es wurden viele Versuche zur Verbesserung der Klonierungseffizienz und Trichostatin A (TSA), ein Histon Deacetylase Inhibitor, weithin verwendet wurde, um die Effizienz des Klonens. Hier berichten wir über eine deutlich verbesserte Klonmethode bei Mäusen. Diese somatischen Kerntransfers Methode bezieht Verbrauch Hemagglutinating Virus Japan Envelope (HVJ-E), die einfache Handhabung ermöglicht. Darüber hinaus ist die Behandlung mit zwei kleinen Molekülen, TSA und Vitamin C (VC), mit entionisiertem Rinderserumalbumin (dBSA), hochwirksam für die Embryonalentwicklung. Dieser Ansatz erfordert weder zusätzliche Injektion noch genetische Manipulation und stellt somit eine einfache Methode für den praktischen Einsatz geeignetste. Diese Methode könnte ein technisch Machbaren Ansatz für Forscher, die gentechnisch veränderte Tiere aus kultivierten Zellen produzieren werden. Darüber hinaus kann es eine nützliche Methode für die Rettung der bedrohten Tiere über Klonen sein.
Die SCNT-Technologie ermöglicht die Produktion von geklonten Tieren mit nur eine Somatische Zelle oder ein Kern auf eine entkernte Eizelle übertragen werden. Eines der Ziele der SCNT-Technik ist die Ableitung der Kerntransfer embryonale Stammzellen (NT-WSR) Zeilen aus geklonten Embryonen. Im Jahr 1998 Wakayama Et Al., berichtet produziert erfolgreich geklonte Maus Cumulina für die erste Zeit1benannt. Seitdem das Klonen von Mäusen umfassend untersucht worden, und viele wichtige Erkenntnisse zur nuklearen Reprogrammierung von somatischen Kernen gewonnen wurden. Auf der anderen Seite ist diese Technik begleitet von zahlreichen Mikromanipulation Schritte, die ziemlich schwierig, Meister, erfordert intensive Training von mehr als 3 Monate2.
Produktion von geklonten Mäusen mit SCNT entwickelte sich aus der ursprünglichen Honolulu Methode1, Elektroschweißen Methode3, zu der Zelle fusionsmethode von Hemagglutinating Virus von Japan (HVJ)4. Aber tendenziell die direkte Einspritzung von einem Zellkern durch die Cytomembrane Eizelle überleben nachteilig beeinflussen. Das Elektroschweißen ist arm an Effizienz, da jeder Zellmembran unterschiedlichen Härte, so dass es schwierig zu bestimmen, eine optimale Kondition hat. Die Handhabung der HVJ ist mühsam, weil es spezifische Ausrüstung für die Sicherheit von Forschern und Labortieren erfordert. Um den Spender Zelle und Eizelle Zytoplasma verschmelzen, neuerdings HVJ-E verwendet5. HVJ-E hat nur die Möglichkeit, Membranen ohne proliferative oder infektiösen Viren zu verschmelzen. Genomische RNAs HVJ sind vollständig inaktiviert im HVJ-E. Die Verwendung von HVJ-E unterstützt damit die einfache Handhabung der Zellfusion während SCNT.
Mehrere Berichte haben gezeigt, dass die Behandlung von SCNT Embryonen mit TSA, ein Histon Deacetylase Inhibitor, deutlich die Effizienz der Produktion der live Welpen von weniger als 1 % bis 6,5 %6,7 verbessert. TSA Behandlung beschleunigt Umprogrammierung durch Ändern von Histon-Marken in SCNT Embryonen8. Vor kurzem, Injektion von bestimmten mRNAs, Histon Lysin Demethylase Unterfamilie 4 (KDM4), die Histone H3 Lysin 9 (H3K9) entfernen Trimethylation in SCNT Embryonen, vor allem im umprogrammieren-resistente Regionen wurde gezeigt, dass Entwicklung erhöhen geklonte Maus-Embryonen-9. Unterdessen hat VC, dient auch als ein Histon-Modifikator, Trimethylation H3K910verringert. Zudem steigert VC Embryonalentwicklung in porcinen SCNT10. Es wurde berichtet, dass die Injektion von dBSA SCNT Embryonen zur Verbesserung der Embryonalentwicklung11führt.
Zuvor fanden wir, dass die Kombination von kleinen Molekülen, nämlich TSA und VC, zusammen mit dBSA, Entwicklung von SCNT Embryonen12dramatisch verbessert. Hier zeigen wir die bisher gemeldete SCNT Methode für Mäuse, die höchst effizient und einfach Klonen Verfahren12darstellt. Wir beschreiben auch die Handhabung der HVJ-E. Dies könnte dazu beitragen, dass viele Forscher auf dem Gebiet der Entwicklungs- und reproduktive Biologie zur Erhaltung genetischer Ressourcen oder gentechnisch veränderte Tiere durch diese SCNT-Methode zu produzieren.
Zusammenfassend, diese Ergebnisse deuten darauf hin, dass die vorgestellte Methode SCNT könnte technische Schwierigkeiten reduzieren, die Effizienz des SCNT ohne gentechnische Veränderungen und mRNA-Supplementierung (Tabelle 1, Tabelle 2) und gewährleisten stabile Produktion von geklonten Embryonen. Diese Methode ermöglicht es uns, mehr SCNT Embryonen als herkömmliche Methoden aufgrund der besseren Überlebensrate und vereinfachte Protokoll zu rekonstruieren. In diesem Protokoll ist ein entscheidender Schritt Zellfusion. Um erfolgreich geklonte Mäuse produzieren, ist es unerlässlich, um sicherzustellen, dass die richtige Menge an HVJ-E im Protokoll beschrieben, während die Zelle Fusionsprozess beibehalten wird und Eizellen in den Inkubator innerhalb von 10 min während der Schritte 6.2.3 – 6.2.5 zurückgegeben werden müssen. Da 20 bis 30 Spenderzellen zusammen mit HVJ-E zu einem Zeitpunkt in die Manipulation Pipette abgesaugt werden können, ist die Anzahl der Eizellen, die durch eine Operation erhalten größer ist als die der vorhandenen Methode. Am Ende produzieren wir etwa 20 bis 30 neu konstruierte Eizellen innerhalb von 10 Minuten. Auch beim Arbeiten mit einem großen Stapel von Eizellen (100 oder mehr), die Zelle-Fusion-Verfahren sollte eine Stunde dauern oder weniger durch Wiederholung der Schritte 6.2.3 – 6.2.5. Die Methode und die hier vorgestellten Techniken dienen als effiziente Protokolle mit vereinfachten technischen Anforderungen.
Derzeit sind die molekularen Mechanismen der Entwicklung von Embryonen SCNT noch unklar. Diese verbesserte SCNT Methode trägt auch zu solchen Neuprogrammierung Mechanismen zu studieren, da diese Methode viele geklonte Embryonen in nur einem einzigen Experiment produzieren kann. Diese Methode verwendet für Zellfusion Körperzellen mit intakten Zellmembranen. Es kann also möglich, diesen Ansatz auf andere Zellen anzuwenden, z. B. Schwanzspitze16 Zellen, Sertoli-17 Zellenund embryonaler Stammzellen (ES)18 Zellen. Bei konventionellen Verfahren mit SCNT für relativ große Zellen, z. B. Heck Tipp Zellen injizieren wird direkt in das Zytoplasma der Eizelle, auch technisch anspruchsvolle live Embryonen zu erhalten. Darüber hinaus sind relativ harte Zellen, wie z. B. Sertoli-Zellen schwer zu brechen, indem für die Injektion pipettieren. Wenn diese verschiedenen Zelltypen berücksichtigt werden, ist die Zelle fusionsmethode HVJ-E Nutzung einfach und effektiv. Obwohl die Werterhaltung und Sicherheit seines HVJ-E überzeugend demonstriert19,20 wurden, könnte es wichtig, die Machbarkeit der Verwendung HVJ-E für die Herstellung von geklonten Tieren für landwirtschaftliche oder biomedizinische Zwecke neu zu überdenken sein.
Darüber hinaus produziert vor kurzem eine Gruppe erfolgreich geklonte Mäuse aus Urin Zellen21abgeleitet. Um vom Aussterben bedrohte Säugetierarten zu retten, wird fortan SCNT Verwendung der Zellen in eine nicht-invasive Weise, wie der Urin Zelle gesammelt ideal sein. In jüngerer Zeit, eine andere Gruppe hat direkt generiert geklonte Mäuse mit Antigen-spezifische CD4-Zellen+ T22. Es wäre interessant zu untersuchen, ob diese Methode auch für Mäuse aus solchen Zellen effizient zu klonen. Darüber hinaus wurde als bessere Alternative zur Inhibierung Aktin-Polymerisation bei Enukleation und parthenogenetische Aktivierung SCNT Eizellen23Latrunculin A berichtet. Zukunftsstudie kann zeigen, ob die Latrunculin A-Behandlung statt Cytochalasin B, Generierung von geklonten Nachkommen weiter verbessert wird. Darüber hinaus hat die TSA-Behandlung erfolgreich in Mäuse und Schweine24Kaninchen25 eingesetzt indem Behandlungszeit, Zeit und Konzentration. Darüber hinaus sind VC nicht nur erhöht die Embryonalentwicklung in porcinen SCNT10, sondern verbessert auch iPS-Zellen-Produktion in den Menschen und Mäusen26. So ist es plausibel zu spekulieren, dass TSA und VC Behandlung auch auf andere Säugetierarten angewendet werden kann, und wir möglicherweise die Behandlungszeit von TSA und VC für jede Art zu optimieren müssen.
Abschließend würde diese Methode geklonte Mäuse mit einem praktischen Maß an Effizienz mit einfachen Verfahren generieren ermöglichen. Daher könnte die Ergebnisse dieser Studie uns die SCNT-Technologie für die Erhaltung der genetischen Ressourcen von seltenen Tieren und für das Verständnis der molekularen Mechanismen der nuklearen Neuprogrammierung und frühen embryonalen Entwicklung nutzen.
The authors have nothing to disclose.
Diese Arbeit wurde von JSPS KAKENHI-Grant-Nummern JP15H06753, JP16H01321, JP16H01222, JP17H05045, k.m. Sumitomo Foundation Grant für grundlegende Wissenschaft Forschungsprojekte (150810, k.m.) unterstützt. Kindai University Research Grant (15-I-2, k.m. und M.A.). M.o. anerkennen das Core-Support von Cancer Research UK (C6946/A24843) und des Wellcome Trust (203144/Z/16/Z) zur Verfügung gestellt. Wir danken Frau N. Backes-Kamimura und Herr J. Horvat für Korrekturlesen.
NaCl | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | 28-2270-5 | For medium |
KCl | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 169-03542 | For medium |
KH2PO4 | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 165-04242 | For medium |
MgSO4 · 7H2O | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 137-00402 | For medium |
CaCl2 · 2H2O | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 039-00431 | For medium |
D(+)-Glucose | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 041-00595 | For medium |
Sodium Pyruvate | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 199-03062 | For medium |
L-Glutamine | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | G3126 | For medium |
Polyvinylpyrrolidone | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 168-17042 | For medium |
NaHCO3 | Nacalai tesque, Inc. | 31213-15 | For medium |
Sodium DL-Lactate | Nacalai tesque, Inc. | 31605-72 | For medium |
Penicillin | Meiji Seika Pharma Co., Ltd. | 4987222637671 (GTIN-13) | For medium |
Streptomycin | Meiji Seika Pharma Co., Ltd. | 4987222665643 (GTIN-13) | For medium |
Sterile water, endotoxin free | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 196-15645 | For medium |
EDTA · 2Na | Dojindo Lab. | 345-01865 | For medium |
Phenol red | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | P0290 | For medium |
HEPES sodium salt | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | H3784 | For medium |
Polyvinyl alcohol | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | P8136 | For medium |
Bovine serum albumin | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | A3311 | For medium |
BT AG 501-X8 (D) Resin | Bio-Rad Lab., Inc. | 143-7425 | For preparation of dBSA |
Hyaluronidase | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | H3506 | For collection of oocytes and cumulus cells |
Cytochalasin B | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 034-17554 | For enucleation and oocytes activation |
Piezo micro manipulator | Prime tech, Co., Ltd. | PMM-150FU | For micromanipulation |
HVJ Envelope Cell Fusion Kit GenomONE-CF | Ishihara sangyo kaisha, Ltd. | CF001 | Containing 0.5 mL of HVJ-E suspension solution and 10 mL of cell fusion buffer for cell fusion |
SrCl2 · 6H2O | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 193-09442 | For oocytes activation |
EGTA | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | E8145 | For oocytes activation |
Dimethyl sulfoxide | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | 045-24511 | For solvent |
Trichostatin A | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | T1952 | For incubating with SCNT embryos |
L-Ascorbic acid | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | A5960 | For incubating with SCNT embryos |
Mineral oil | Sigma-Aldrich, Co., Lcc. | M8410 | For covering medium |