כאן, אנו מציגים פסיבים פרוטוקול לסעיפים לבלב אנושי התמונה בתלת מימד (3D) באמצעות אופטימיזציה ניקוי שיטות. כתב יד זה מדגים אלו נהלי סליקה אופטי פסיבי ואחריו מספר immunofluorescence מכתים לזהות את המרכיבים העיקריים של אוטונומי, חושי רשתות עצביות innervating אנושי איונים.
החוקרים בשיטות מסורתיות היסטולוגית, מונעים ביכולתם תמונה כל הרקמות או האיברים ב- 3D בקנה מידה גדול. סעיפים היסטולוגית מוגבלות בדרך כלל ל- < 20 מיקרומטר כמו פורמלין קבוע בסעיף פרפין בשקופיות זכוכית או 500 מיקרומטר בשיטות מסורתיות. בנוסף, אור בסורקים של מקרומולקולות בתוך רקמות, במיוחד שומנים, מונע הדמיה לעומק > 150 מיקרומטר עם מיקרוסקופ קונפוקלי ביותר. כדי להפחית את פיזור האור וכדי לאפשר לדימות רקמות עמוק באמצעות קונפוקלית פשוטה, שיטות ניקוי אופטי שונות פותחו כי רלוונטי עבור דגימות רקמה מכרסמים ואנושי נפתרות על-ידי טבילה. מספר שיטות הקשורות ולהשתמש crosslinking חלבון עם אקרילאמיד ורקמות ניקוי עם נתרן גופרתי dodecyl (מרחביות). טכניקות ניקוי אופטי אחרות להשתמש בממיסים שונים למרות כל שינוי היו יתרונות וחסרונות שונים. כאן, שיטת אופטימיזציה סליקה אופטי פסיבי מתואר ללימודים של העצבוב לבלב אנושי, במיוחד עבור חקירת העצבוב של האדם איונים.
עד לאחרונה, תלת-ממדי (3D) שחזור של גדול לרקמות או לאיברים כל בוצעה באמצעות חלוקתה טורי מפרך, מכתים, תמונת שחזור של מקטעים מרובים. שיטות אלה היו מספר חסרונות כולל הסתמכות על מספר גדול של קטעים טורי, רקמות המסכן חדירה עם נוגדנים, פלקטואציות ופיזור אור מניעת הדמיה עמוק בתוך רקמות. כדי לאפשר חדירה נוגדן ואור גדול יותר, חוקרים פיתחו שיטות כימיות לשמר חלבונים אנטיגניים בעת הסרת הרוב המכריע של אור-פיזור שומנים. במספר קשורות. השיטות hybridized Clear Lipid-Exchanged אקרילאמיד רקמות הדמיה נוקשה הידרוג (בהירות), טכניקה בהירות פסיבי (ברית) ו זלוף בסיוע סוכן שחרור באתרו ב (PARS) (נבדקה 1,2 ,3,4,5,6). שיטת בהירות מבוסס על ייצוב חלבונים באמצעות של פורמלדהיד, אקרילאמיד הידרוג bis ואחריו הסרת השומנים באמצעות אלקטרופורזה מרחביות פתרון2. גישה זו היה מאוחר יותר שונה פסיבים ניקוי ומתקדם הדמיה7. נוספים מיטוב הוביל חיסול של bis אחוזים שונים של paraformaldehyde בפתרון הידרוג (1-4%) כדי לקבל ייצוב אנטיגן אופטימלית עם קרחת להשיק את טכניקה הנקראת ברית 8. נסיונות מוקדם כדי לפתח טכניקות ניקוי אופטי אלה מעורבים תרכובות אורגניות או אחרים הקשים בעבודה, מתרצה אנדוגני פלורסנט חלבונים במודלים של העכבר מהונדס. שיטות נוספות אלה כללו סולמות, קוקטיילים המוח/גוף בלא הפרעה וניתוח Computational (מעוקב), מתג ושיטות Dimensional Imaging of Solvent-Cleared האיברים (דיסקו), כולם עם מגוון יתרונות וחסרונות9, 10,11,12. השיטה בהירות המקורית פותחה ברקמת המוח עתירי שומנים בדם העכבר, שיטות ניקוי אופטי היה מוגבל בדיקות ברקמות אנושיות7,8,11,13,14 .
שיטות ניקוי אופטי הינם אידיאליים עבור מעקב העצבים על פני מרחקים ארוכים כמו מערכת העצבים המרכזית העכבר ללא פגע. הלבלב הוא טוב innervated על ידי מערכת העצבים האוטונומית והן חושית. תא האנדוקרינית הלבלב, איי לנגרהנס, מהווים חלק קטן מאוד של האיבר כולו (1-2%) ואת איונים לדעת הטרוגניות (50-250 מיקרומטר), הפרופורציות תא האנדוקרינית, והגדלים צפיפות במיוחד בחולי סוכרת (שבתוך 15 ,16). פיתוח פרוטוקול, מספר שיטות ניקוי אופטי נבדקו עבור לבלב אנושי, הליך ברית נמצאה כדי לספק את האיזון הטוב ביותר של הזמן לנקות (~ 2 שבועות) מעולה לשימור מורפולוגי של העצבים ושל איונים. בהליך אופטימיזציה הסופי המתואר כאן התיחום של הרשת נוירו-סקסיסטית בקנה מידה גדול (מרחקים מילימטר), הדמיה תלת-ממדית ברזולוציה גבוהה של לנגרהנס מרובים ללא פגע. הטכניקה היא מתאימה לבלב אנושי מיד לאחר את הקיבעון או לאחר אחסון, כמו גם דגימות קבוע בפורמלין במאגר נייטרלי, נעוץ פרפין. הדגימות מתאימים עבור הדמיה על ידי קונאפוקלית או מיקרוסקופ lightsheet.
הזמינות של שיטות ניקוי אופטי חדשות התירה חסר תקדים בקנה מידה גדול לבדיקות של סנטראל ומערכות העצבים ההיקפית במודלים של בעלי חיים. הדפוסים העצבוב הכוללת בלבלב האנושי הם נחקרו במידה רבה בשל צפיפות רקמת וקשיים ברכישת biospecimens באיכות גבוהה. פרוטוקול זה מציע של רקמות ממוטבת ניקוי הפרוטוקולים של רקמת לבלב אנושי מדגימות ארכיוני קבוע או פרפין-מוטבע.
ניקוי הזמן תלוי גודל המדגם, מקבע סוג, משך, משך האחסון, עשוי לדרוש 1-8 שבועות, אז השיקולים הבאים הם קריטיים. זה הכי טוב לנקות רקמות זמן קצר לאחר מכן הקיבעון PFA 4% במידת האפשר כי אחסון לטווח ארוך מגדילה זמן ניקוי. כדי לצמצם את זמן ניקוי, הסכום של מחברים ב מונומר הידרוג היה ירד מ 4% משמש שלב קיבוע 1% בלבלב האנושי. בשביל לרקמות אחרות, במיוחד העכבר רקמות, הכמות של כדורגלן הכרחי כדי לספק קשיחות הידרוג מספיק כדי לשמר אנטיגנים להיקבע מדעית. סליקה נאותה חיונית גם מאז נוגדן חדירה מצטמצם ברקמות שנוקה לקוי, משטח מכתים באמצעות נוגדנים משניים הוא גדל. שינוי הפתרון ניקוי כל יום (או אחרים, אפילו מדי יום) הטובה ביותר היא לשמור על pH קבוע דטרגנט טריים. לעומת זאת, יתר ניקוי באופן שלילי משפיע על מורפולוגיה הסלולר ומגביר רקמות friability. מאז דגימות הלבלב לנקות לצר הגלום פתולוגיות כגון אזורים של פיברוזיס של דלקת לבלב כרונית או פתולוגיות אחרות, חשוב לעקוב אחר תהליך זה לעיתים קרובות. שימוש סעיפים עבה vibratome יכול לשמש גם כדי להפוך עוביים אחיד עדיין אינם נדרשים. פיקוח על תהליך ניקוי, אז דגימות יוסרו דטרגנט ברגע אור עובר בקלות הדגימה, מבטיח כי המדגם מנוקה מספיק.
נוגדן חדירה צביעת משטח הם נושאים חשובים שיש לקחת בחשבון עם דגימות ברית. כדי להבטיח חדירה נוגדן טוב, חיוני תקופת דגירה דגימות עם נוגדנים העיקרי לפחות 2 ימים. נוגדנים שונים במחירים שונים דיפוזיה, צריך להיות מותאם באופן אינדיבידואלי, אבל עבור רוב נוגדנים, 4 ימים היה משך מספיקה לחדירה מלאה במדגם3 1 מ מ. אם צביעת משטח היא בעיה, במיוחד עבור Lightsheet הדמיה, המדגם אולי לחצי או המשטח גזור משם לאחר מכתים. יהיה צפוי נוגדנים תבנית קטנה כאשר היא זמינה כדי לסייע עם חדירה לרקמות8. נוגדנים preconjugated אינם מופיעים לעבודה כמו גם השיבוט unconjugated אותו, רקע גבוה יותר מן הכריכה לא ספציפית וחדירה לרקמות עניים יכולים להיות שנצפו אם הם עובדים בכלל. להצלחה משופרת עם נוגדנים preconjugated, להגדיל את הנסיוב, TritonX-100 ריכוזים ב ההכתמה מאגר ולהשתמש incubations ארוך יותר (> 4 ימים). לאחר צביעת, דגירה של המדגם של המכון במשך מספר ימים היא קריטית. רקמות שנוקה נהדר ב- PBS, שפות ולשונות הדגירה גורם להם להתכווץ חזרה לגודל המקורי. במיוחד עם lightsheet הדמיה, המדגם צריך להיות באופן מלא equilibrated לפני הדמיה.
כאשר הדמיה דוגמאות על מיקרוסקופ קונפוקלי, התיקון חייב להיות קבוע בכל פעם שמיקום חדש נבחר. רכישת במעמקי השונות וריאציה מכתים בעוצמה לאורך כל הרקמה מצריך התאמות עבור כל אזור הרקמה לדימות בצורה אופטימלית. באופן דומה, הנוגדנים משני המשמש להתייחס בקפידה. Unmixing רפאים הוא מאתגר בדגימות ברית, כך fluorophores כראוי יש לבחור חפיפה עירור או פליטה נמוכה להבטיח קליטה בהירים בעת סינון פליטות על מיקרוסקופ קונפוקלי. עבור כל יישום, איזון חייב להיות פגע בין רזולוציה, מהירות הדמיה הפחתת רעש כך ניתן לרכוש את התמונה באיכות הטובה ביותר מבלי הלבנת-צילום. הרזולוציה גדול מ- 1024 x 1024 אינו ניתן לגילוי על ידי העין האנושית, אך ייתכן הכרחי עבור יישומים מסוימים אם כימות של כתם יש צורך.
ישנם דברים רבים לשקול בעת בחירת שיטת ניקוי אופטי בעת בחירת סליקה אופטי כל השיטות מסורתיים יותר. אנטיגנים שפע נמוך לא ניתן לזיהוי באמצעות השיטה ההסכם לכן קיימות מגבלות זיהוי אנטיגן. אנטיגנים מסוימים כגון אנטיגנים אימונולוגי (CD3, CD4, CD8, וכו ‘) נהרסים על ידי שיטת ברית, לא ניתנים לגילוי למרות באיכות גבוהה נוגדנים זמינים לגלות אותם. מגבלה נוספת של שיטה זו הוא ההשתנות הטבועה בין הלבלב התורם אשר קשה להבחין עד לאחר ניקוי כתמים. כל רקמה נוטה כדי לנקות את כתם דומה בין הליכים, אבל תורם שונים רקמות יש פעמים סליקה נרחב משתנה ואיכות מורפולוגיה רקמות לאחר ניקוי. היכולת להשתמש רקמות ארכיוני עשוי להמתיק מגבלה זו אם אחד יכול לקבל גישה נאותה מספר רב של דוגמאות הלבלב החולה למרות זה לא נחקר ביסודיות. פרוטוקול ההסכם דיווח בזאת נמצאה להיות זולה מיושמים בקלות עם ציוד מעבדה סטנדרטיים. דוגמאות שנוקה היו מתאימים עבור הדמיה באמצעות מיקרוסקופיה קונפוקלית מסורתיים, כמו גם 2-פוטון וטכנולוגיות Lightsheet וסיפק ברזולוציה גבוהה תמונות 3D של העצבים ושל בחלקים נרחבים בלבלב האנושי. יישומים עתידיים של הליך זה כוללים מחקרים על התפתחות עוברית הלבלב עבור תאים אקסוקרינית והן האנדוקרינית, איון לימודי סוג 1 וסוכרת סוג 2.
The authors have nothing to disclose.
המחברים תודה ד ר אן פו, ג’וזף Canzano לקבלת סיוע טכני, ד ר ג’ניפר Treweek עצה שלא יסולא בפז, ד ר קריסטין אוברטון, ד ר קרל Deisseroth עבור הכשרה MCT דרך בית המלאכה בהירות אוניברסיטת סטנפורד. האגודה לסוכרת נעורים nPOD הארגונים רכש איברים מסופקים דגימות רקמה. עבודה זו מומן על ידי האגודה לסוכרת נעורים (47-2014-1), הלמסלי צדקה אמון (של HCT 2015-PG-T1D052), NIDDK TR001773 1OT2 כדי MCT.
10x phosphate buffered saline (PBS) | Fisher | BP399-1 | Buffers |
Sodium phosphate dibasic anhydrous | Fisher | S375-500 | PB buffer (RIMS) |
Sodium phosphate monobasic monohydrate | Sigma | 71507-250 | PB buffer (RIMS) |
16% paraformaldehyde (PFA) | Electron Microscopy Sciences | 15714-5 | Immersion fixation, hydrogel, storage solution |
40% acrylamide | Bio-Rad | 161-0140 | Hydrogel |
2% bis-acrylamide | Bio-Rad | 161-0142 | Hydrogel |
VA-044 initiator | Wako Pure Chemical Industries, Ltd. | VA044 | Hydrogel |
Sodium dodecyl sulfate (SDS) | Fisher | BP166-5 | Clearing buffer |
Sodium azide | Sigma | S8032 | Sample storage buffer |
18 gauge needles | Fisher | 14-840-91 | Degassing hydrogel solution |
N2 tank | AirGas | various | Degassing hydrogel solution |
Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 100 ml | Buffers |
Goat, normal serum | Vector | S-1000 | Use as 2% in blocking buffer |
Histodenz | Sigma | D2158-100G | RIMS |
8-well chamber slides | Ibidi | 80827 | Imaging |
Laser scanning confocal microscope | Zeiss | 710 | Imaging |
LightSheet microscope | Zeiss | Z1 | Imaging |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Primary Antibody | |||
CD45 | Bioss | bs-4820R-A488 | Host: Rabbit Dilution: 1:100 Comments: Did not work |
CD45 | DAKO | M0754 | Host: Mouse Dilution: 1:200 Comments: Did not work |
GFAP | DAKO | Z0334 | Host: Rabbit Dilution: 1:50 Comments: Worked |
Glucagon | BD Biosciences | 565891 | Host: Mouse Dilution: 1:50 Comments: Worked |
Glucagon | Cell Signaling | 2760S | Host: Rabbit Dilution: 1:200 Comments: Did not work |
Glucagon | Abcam | ab10988 | Host: Mouse Dilution: 1:200 Comments: Worked |
Insulin | DAKO | A0564 | Host: Guinea Pig Dilution: 1:200 Comments: Worked |
NCAM (CD56) | DAKO | M730429-2 | Host: Mouse Dilution: 1:50 Comments: Did not work |
NCAM (CD56)-FITC conjugate | DAKO | M730429-2 | Host: Mouse Dilution: 1:50 Comments: Did not work |
Peripherin | EnCor | RPCA-Peri | Host: Rabbit Dilution: 1:100 Comments: Worked |
PGP9.5 | DAKO | Z5116 | Host: Rabbit Dilution: 1:50 Comments: Did not work |
Secretogranin 3 | Sigma | HPA006880 | Host: Rabbit Dilution: 1:200 Comments: Worked |
Smooth muscle actin | Sigma | A5228; C6198 (Cy5) | Host: Mouse Dilution: 1:200; 1:200 Comments: Worked; Conjugated worked better than unconjugated |
Substance P | BioRad | 8450-0505 | Host: Rat Dilution: 1:200 Comments: Worked |
Tyrosine Hydroxylase | Millipore | AB152 | Host: Rabbit Dilution: 1:200 Comments: Worked |
Tyrosine Hydroxylase | Abcam | Ab76442 | Host: Chicken Dilution: 1:100 Comments: Worked, but weak staining |
Vasoactive Intestinal Peptide (VIP) | Immunostar | 20077 | Host: Rabbit Dilution: 1:100 Comments: Worked |
Vesicular Acetylcholine Transporter (VAChT) | Synaptic Systems | 139103 | Host: Rabbit Dilution: 1:50 Comments: Worked |
Secondary Antibody | |||
Guinea pig IgG | ThermoFisher Scientific | Various | Host: Goat Dilution: 1:200 Comments: AlexaFluor conjugates |
Mouse IgG | ThermoFisher Scientific | Various | Host: Goat Dilution: 1:200 Comments: AlexaFluor conjugates |
Rabbit IgG | ThermoFisher Scientific | Various | Host: Goat Dilution: 1:200 Comments: AlexaFluor conjugates |
Rat IgG | ThermoFisher Scientific | Various | Host: Goat, Donkey Dilution: 1:200 Comments: AlexaFluor conjugates |
Chicken IgG | ThermoFisher Scientific | Various | Host: Goat Dilution: 1:200 Comments: AlexaFluor conjugates |