Summary

Надежные ДНК изоляции и высокопроизводительного секвенирования строительство библиотеки для образцов гербария

Published: March 08, 2018
doi:

Summary

Эта статья демонстрирует подробный протокол для изоляции ДНК и высокопроизводительного секвенирования библиотека строительство из материалов гербариев, включая спасение исключительно низкого качества ДНК.

Abstract

Гербариев являются незаменимым источником растительного материала, который может использоваться в различных биологических исследований. Использование образцов гербария связано с рядом проблем, включая пример сохранения качества, деградации ДНК и разрушительной выборки редких образцов. Для того, чтобы более эффективно использовать гербарий материал в большой последовательности проектов, необходим надежный и масштабируемый метод подготовки ДНК изоляции и библиотека. Этот документ демонстрирует надежный, начало в конец протокол для ДНК изоляции и высок объём библиотека строительства от образцов гербария, не требуют изменений для отдельных образцов. Этот протокол является специально для низкого качества сушеных растений материала и принимает преимущество существующих методов путем оптимизации измельчения тканей, изменения выбора размера библиотеки и представляя шаг необязательный reamplification для низкой урожайностью библиотек. Reamplification библиотек ДНК низкой урожайностью может спасти образцов, полученных от образцов незаменимым и потенциально ценный гербарий, отрицая необходимость дополнительных деструктивных выборки и без внесения заметных последовательности смещения для общего Филогенетические приложений. Протокол был протестирован на сотни видов травы, но ожидается быть адаптированы для использования в других линий завода после проверки. Этот протокол может быть ограничено путем крайне деградировавших ДНК, где фрагментов нет нужного размера в диапазоне размеров, и вторичных метаболитов в некоторых растительных материалов, которые препятствуют чистый изоляции ДНК. В целом этот протокол вводит быстрый и всеобъемлющий метод, который позволяет для изоляции ДНК и библиотека подготовка 24 проб в меньше чем 13 h, с только 8 h активного практического времени с минимальными изменениями.

Introduction

Гербарий коллекции являются потенциально ценным источником как видов, так и геномного разнообразия для исследований, включая филогенетики1,2,3, популяционной генетики4,5, сохранению Биология6, инвазивные виды биологии7и черта эволюции8. Возможность получения богатого разнообразия видов, популяций, географических точках, и моменты времени подчеркивает «сундук»9 это гербария. Исторически деградированных характер гербарий, полученных ДНК препятствовало ПЦР-проектов на базе, часто relegating исследователей с использованием только маркеры в высокой копии, например регионов геномом хлоропластов или внутренней трансляции распорку (СТС) о рибосомных РНК. Качества образцов и ДНК широко зависят методы сохранения9,10, с двуцепочечные разрывы и фрагментации от жары, используемых в процессе сушки, будучи наиболее распространенных форм ущерба, создание так называемые 90% ДНК карцер, заполнена на основе ПЦР исследования11. Помимо фрагментации второй наиболее распространенной проблемой в гербарий геномики является загрязнение, такие как, производный от эндофитные грибов13 или грибов приобрел посмертных после сбора, но до монтажа в гербарий12, хотя Эта проблема может быть выполнено bioinformatically, учитывая право грибковых базы данных (см. ниже). Третий и менее распространенные, проблема изменения последовательности через цитозина дезаминирование (C/G→T/A)14, хотя он считается низкой (~ 0.03%) в гербарий образцов11. С появлением высокопроизводительного секвенирования (HTS) вопрос о фрагментации может быть преодолена с короткой читает и последовательности глубины12,15, позволяя геномных данных приобретение от многочисленных образцов с низким качеством ДНК и иногда даже разрешительные весь геном последовательности15.

Гербарий образцы становится все более часто используются и более крупный компонент филогенетических проектов16. Текущий вызов с использованием образцов гербария для HTS неизменно является получение достаточных двойной мель ДНК, является необходимым условием для последовательность протоколов, от многочисленных видов своевременно, без необходимости оптимизации методов для отдельных образцы. В этом документе протокол для экстракции ДНК и библиотека подготовки образцов гербария показано что использует преимущества существующих методов и изменяет их для быстрого и воспроизводимые результаты. Этот метод позволяет для полной обработки от образца к библиотеке 24 пробы в 13 h, с 8 h практическое время, или 16 h, с 9 ч практический время, когда требуется дополнительный reamplification шаг. Одновременная обработка более образцов является достижимым, хотя ограничивающим фактором является мощности центрифуг и технических навыков. Протокол призван требовать только в типичных лабораторное оборудование (Термоциклер, центрифуги и магнитные стенды) вместо специализированного оборудования, такие как распылитель или sonicator, для сдвига ДНК.

Размер фрагментов ДНК качество и количество сдерживающими факторами для использования образцов гербария в высокопроизводительного секвенирования экспериментов. Другие методы для изоляции гербарий ДНК и создания высокопроизводительного секвенирования библиотек продемонстрировали полезность использования как мало, как 10 нг16ДНК; Однако они требуют экспериментально определить оптимальное количество PCR циклов, необходимых для подготовки библиотеки. Это становится нецелесообразным, когда решения с весьма небольшим количеством жизнеспособных двойной мель ДНК (dsDNA), как некоторые образцы гербарий производят только достаточное количество ДНК для приготовления одной библиотеки. Метод, представленные здесь использует единый количество циклов независимо от качества образцов, поэтому не ДНК теряется в шагов оптимизации библиотеки. Вместо этого шаг reamplification вызывается, когда библиотеки не соответствуют минимальной суммы, необходимой для виртуализации. Многие образцы гербарий редки и имеют мало материала, что делает его трудно оправдать разрушительной выборки во многих случаях. Чтобы противостоять этому, представленный протокол позволяет dsDNA ввода размеров менее 1,25 нг в процесс подготовки Библиотека, расширение сферы применения жизнеспособных образцов для высокопроизводительного секвенирования и свести к минимуму потребность в разрушительной выборки образцов.

Следующий протокол оптимизирован для трав и протестированы на сотни различных видов из образцов гербария, хотя мы ожидаем, что протокол может применяться для многих других групп растений. Она включает в себя шаг необязательный восстановления, который может использоваться для сохранения низкого качества или редких образцов. Основываясь на более чем двух сотен гербарий образцов испытания, этот протокол работает на образцах с низкой ткани ввода и качества, позволяя для сохранения редких образцов через минимальным разрушительным выборки. Здесь показано, что этот протокол может обеспечить высокое качество библиотек, которые можно упорядочивать для проектов на базе phylogenomics.

Protocol

1. до начала Сделать свежий цетиловый триметиламмония бромид (CTAB) буфера17 , добавив 20 g CTAB, 10 g поливинилпирролидона (ПВП) 40, 100,0 мл 1 М трис рН 8,0, 40 мл 0,5 М Этилендиаминтетрауксусная кислота (ЭДТА) рН 8,0, 280.0 мл 5 М NaCl и 400.0 мл реактива воды вместе и довести общий объем до 1 Л, с исп…

Representative Results

Изоляции ДНК и окончательный библиотека доходностьВ этом исследовании была продемонстрирована эффективность протокола для изоляции гербарий ДНК и восстановления высокого качества последовательности библиотек, пятидесяти различных образцов с помощью с…

Discussion

Протокол, представленные здесь является всеобъемлющий и надежный метод для изоляции ДНК и последовательности подготовки библиотеки из образцов сухих растений. Согласованность метода и минимальная потребность изменить его на основе образца качества делают его масштабируемость для б…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим Тейлор Обечон-старший, Teisher Иордании и Кристина Zudock для помощи в выборки образцов гербария и ботанический сад Миссури для доступа к гербарий образцов для разрушительных выборки. Эта работа была поддержка грант от национального научного фонда (DEB-1457748).

Materials

Veriti Thermal Cycler Applied Biosystems 4452300 96 well 
Gel Imaging System Azure Biosystems c300
Microfuge 20 Series Beckman Coulter B30137
Digital Dry Bath Benchmark Scientific BSH1001
Electrophoresis System EasyCast B2
PURELAB flex 2 (Ultra pure water) ELGA  89204-092
DNA LoBind Tube  Eppendorf 30108078 2 ml
Mini centrifuge Fisher Scientific 12-006-901
Vortex-Genie 2 Fisher Scientific 12-812
Mortar Fisher Scientific S02591 porcelain
Pestle fisher Scientific S02595 porcelain
Centrifuge tubes fisher Scientific 21-403-161
Microwave Kenmore 405.7309231
Qubit Assay Tubes Invitrogen Q32856
0.2 ml Strip tube and Cap for PCR VWR 20170-004
Qubit 2.0 Fluorometer Invitrogen Q32866
Balance Mettler Toledo PM2000
Liquid Nitrogen Short-term Storage Nalgene F9401
Magnetic-Ring Stand  ThermoFisher Scientific  AM10050 96 well 
Water Bath VWR 89032-210
Hot Plate Stirrers VWR 97042-754
Liquid Nitrogen Airgas UN1977
1 X TE Buffer Ambion AM9849 pH 8.0
CTAB AMRESCO 0833-500G
2-MERCAPTOETHANOL AMRESCO 0482-200ML
Ribonuclease A AMRESCO E866-5ML 10 mg/ml solution
Agencourt AMPure XP Beckman Coulter A63882
Sodium Chloride bio WORLD 705744
Isopropyl Alcohol bio WORLD 40970004-1
Nuclease Free water bio WORLD 42300012-2
Isoamyl Alcohol Fisher Scientific A393-500
Sodium Acetate Trihydrate Fisher Scientific s608-500
LE Agarose GeneMate E-3120-500
100bp PLUS DNA Ladder Gold Biotechnology D003-500
EDTA, Disodium Salt IBI Scientific IB70182
Qubit dsDNA HS Assay Kit Life Technologies Q32854
TRIS MP Biomedicals 103133 ultra pure
Gel Loading Dye Purple (6 X) New England BioLabs B7024S
NEBNext dsDNA Fragmentase New England BioLabs M0348L
NEBNext Ultra II DNA Library Prep Kit for Illumina  New England BioLabs E7645L
NEBNext Multiplex Oligos for Illumina New England BioLabs E7600S Dual Index Primers Set 1
NEBNext Q5 Hot Start HiFi PCR Master Mix New England BioLabs M0543L
Mag-Bind RXNPure Plus Omega bio-tek M1386-02
GelRed 10000 X Pheonix Research 41003-1
Phenol solution SIGMA Life Science P4557-400ml
PVP40 SIGMA-Aldrich PVP40-50G
Chloroform VWR EM8.22265.2500
Ethanol Koptec V1016 200 Proof
Silica sand VWR 14808-60-7
Reamplification primers Integrated DNA Technologies see text
Sequencher v.5.0.1 GeneCodes

References

  1. Savolainen, V., Cuénoud, P., Spichiger, R., Martinez, M. D. P., Crèvecoeur, M., Manen, J. F. The use of herbarium specimens in DNA phylogenetics: Evaluation and improvement. Plant Syst Evo. 197 (1-4), 87-98 (1995).
  2. Zedane, L., Hong-Wa, C., Murienne, J., Jeziorski, C., Baldwin, B. G., Besnard, G. Museomics illuminate the history of an extinct, paleoendemic plant lineage (Hesperelaea, Oleaceae) known from an 1875 collection from Guadalupe Island, Mexico. Bio J Linn Soc. 117 (1), 44-57 (2016).
  3. Teisher, J. K., McKain, M. R., Schaal, B. A., Kellogg, E. A. Polyphyly of Arundinoideae (Poaceae) and Evolution of the Twisted Geniculate Lemma Awn. Ann Bot. , (2017).
  4. Cozzolino, S., Cafasso, D., Pellegrino, G., Musacchio, A., Widmer, A. Genetic variation in time and space: the use of herbarium specimens to reconstruct patterns of genetic variation in the endangered orchid Anacamptis palustris. Conserv Gen. 8 (3), 629-639 (2007).
  5. Wandeler, P., Hoeck, P. E. A., Keller, L. F. Back to the future: museum specimens in population genetics. Tre Eco & Evo. 22 (12), 634-642 (2007).
  6. Rivers, M. C., Taylor, L., Brummitt, N. A., Meagher, T. R., Roberts, D. L., Lughadha, E. N. How many herbarium specimens are needed to detect threatened species?. Bio Conserv. 144 (10), 2541-2547 (2011).
  7. Saltonstall, K. Cryptic invasion by a non-native genotype of the common reed, Phragmites australis, into North America. PNAS USA. 99 (4), 2445-2449 (2002).
  8. Besnard, G., et al. From museums to genomics: old herbarium specimens shed light on a C3 to C4 transition. J Exp Bot. 65 (22), 6711-6721 (2014).
  9. Särkinen, T., Staats, M., Richardson, J. E., Cowan, R. S., Bakker, F. T. How to open the treasure chest? Optimising DNA extraction from herbarium specimens. PLoS ONE. 7 (8), e43808 (2012).
  10. Harris, S. A. DNA analysis of tropical plant species: An assessment of different drying methods. Plant Syst Evo. 188 (1-2), 57-64 (1994).
  11. Staats, M., et al. DNA damage in plant herbarium tissue. PLoS ONE. 6 (12), e28448 (2011).
  12. Bakker, F. T., et al. Herbarium genomics: plastome sequence assembly from a range of herbarium specimens using an Iterative Organelle Genome Assembly pipeline. Bio J of the Linn Soc. 117 (1), 33-43 (2016).
  13. Camacho, F. J., Gernandt, D. S., Liston, A., Stone, J. K., Klein, A. S. Endophytic fungal DNA, the source of contamination in spruce needle DNA. Mol Eco. 6 (10), 983-987 (1997).
  14. Hofreiter, M., Jaenicke, V., Serre, D., Von Haeseler, A., Pääbo, S. DNA sequences from multiple amplifications reveal artifacts induced by cytosine deamination in ancient DNA. Nucl Acids Res. 29 (23), 4793-4799 (2001).
  15. Staats, M., et al. Genomic treasure troves: Complete genome sequencing of herbarium and insect museum specimens. PLoS ONE. 8 (7), e69189 (2013).
  16. Bakker, F. T. Herbarium genomics: skimming and plastomics from archival specimens. Webbia. 72 (1), 35-45 (2017).
  17. Doyle, J. J., Doyle, J. L. A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochem Bul. 19, 11-15 (1987).
  18. Allen, G. C., Flores-Vergara, M. A., Krasynanski, S., Kumar, S., Thompson, W. F. A modified protocol for rapid DNA isolation from plant tissue using cetryltrimethylammonium bromide. Nat Prot. 1, 2320-2325 (2006).
  19. Twyford, A. D., Ness, R. D. Strategies for complete plastid genome seqeuncing. Mol Eco Resour. , (2016).
  20. Aird, D., et al. Analyzing and minimizing PCR amplification bias in Illumina sequencing libraries. Genome Bio. 12 (2), R18 (2011).
  21. Bolger, A. M., Lohse, M., Usadel, B. Trimmomatic: A flexible trimmer for Illumina sequence data. Bioinf. 30, 2114-2120 (2014).
  22. Grigoriev, I. V., et al. MycoCosm portal: gearing up for 1000 fungal genomes. Nucl Acids Res. 42 (1), D699-D704 (2014).
  23. Langmead, B., Salzberg, S. L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nat Meth. 9 (4), 357-359 (2012).
  24. Herbarium Genomics. Available from: https://github.com/mrmckain/ (2017)
  25. . Fast-Plast: Rapid de novo assembly and finishing for whole chloroplast genomes Available from: https://github.com/mrmckain/ (2017)
  26. McKain, M. R., McNeal, J. R., Kellar, P. R., Eguiarte, L. E., Pires, J. C., Leebens-Mack, J. Timing of rapid diversification and convergent origins of active pollination within Agavoideae (Asparagaceae). Am J Bot. 103 (10), 1717-1729 (2016).
  27. McKain, M. R., Hartsock, R. H., Wohl, M. M., Kellogg, E. A. Verdant: automated annotation, alignment, and phylogenetic analysis of whole chloroplast genomes. Bioinf. , (2016).
  28. Staton, S. E., Burke, J. M. Transposome: A toolkit for annotation of transposable element families from unassembled sequence reads. Bioinf. 31 (11), 1827-1829 (2015).
  29. Bao, W., Kojima, K. K., Kohany, O. Repbase Update, a database of repetitive elements in eukaryotic genomes. Mobile DNA. 6 (1), 11 (2015).
  30. . Transposons Available from: https://github.com/mrmckain/ (2017)
  31. Weiß, C. L., et al. Temporal patterns of damage and decay kinetics of DNA retrieved from plant herbarium specimens. Royal Soc Open Sci. 3 (6), 160239 (2016).
  32. Sawyer, S., Krause, J., Guschanski, K., Savolainen, V., Pääbo, S. Temporal patterns of nucleotide misincorporations and DNA fragmentation in ancient DNA. PLoS ONE. 7 (3), e34131 (2012).
  33. Head, S. R., et al. Library construction for next-generation sequencing: overviews and challenges. BioTechniques. 56 (2), 61-64 (2014).
  34. Grover, C. E., Salmon, A., Wendel, J. F. Targeted sequence capture as a powerful tool for evolutionary analysis. Am J Bot. 99, 312-319 (2012).

Play Video

Cite This Article
Saeidi, S., McKain, M. R., Kellogg, E. A. Robust DNA Isolation and High-throughput Sequencing Library Construction for Herbarium Specimens. J. Vis. Exp. (133), e56837, doi:10.3791/56837 (2018).

View Video