Summary

Réponse auditif du tronc cérébral et des cellules ciliées externes Whole-cell Patch Clamp enregistrement chez le rat Postnatal

Published: May 24, 2018
doi:

Summary

Ce protocole décrit les méthodes pour enregistrer la réponse auditif du tronc cérébral de ratons postnatal. Pour examiner le développement fonctionnel des cellules ciliées externes, la procédure expérimentale de cellules entières patch clamp d’enregistrement en isolé les cellules ciliées externes est décrit étape par étape.

Abstract

Les cellules ciliées externes est l’un des deux types de sensorielle des cellules ciliées de la cochlée mammifères. Ils modifient leur longueur des cellules avec le récepteur potentiel pour amplifier la vibration faible du signal sonore à basse altitude. La morphologie et la propriété électrophysiologique des cellules ciliées externes (contaminants organohalogénés) se développent dans l’âge postnatal précoce. La maturation des cellules ciliées externes peut-être contribuer au développement du système auditif. Toutefois, le processus de développement de contaminants organohalogénés n’est pas bien étudié. C’est en partie à cause de la difficulté à mesurer leur fonction par une approche électrophysiologique. Dans le but de développer une méthode simple pour résoudre le problème ci-dessus, nous décrivons ici un protocole étape par étape pour étudier la fonction des contaminants organohalogénés cochlée aiguë dissociés des rats postnatals. Avec cette méthode, nous pouvons évaluer la cochléaire réponse à des stimuli de sons purs et examiner le niveau d’expression et la fonction de la protéine motrice de prestin en contaminants organohalogénés. Cette méthode peut également être utilisée pour étudier les cellules ciliées internes (CSI).

Introduction

Deux fonctions distinctes de cellules de cheveux sensoriels cochléaires sont essentielles pour l’audience chez les mammifères : mechanoelectric transduction (MET) et electromotility1,2. Par MET les canaux situés dans le faisceau de cheveux, CSI (CSI) et contaminants organohalogénés convertir les vibrations sonores des changements potentiels de membrane, ainsi que les signaux électriques des neurones du ganglion spiral innervés. Contaminants organohalogénés changent leur longueur avec le potentiel de membrane des cellules et amplifient la vibration du son à basse altitude. Cette activité appelée electromotility est dérivée de la protéine motrice prestin situé dans la paroi latérale des contaminants organohalogénés3.

Chez de nombreuses espèces, y compris les rongeurs, la fonction auditive est immature à l’époque postnatale précoce4,5. Aucun potentiel d’action en réponse aux signaux sonores ne pourraient être détectée dans le cortex auditif avant l’audience début6,7. Développement de la morphologie et le fonctionnement de la cochlée a été largement étudiées en souris, gerbille et rat4,5,8. La mécanotransduction et electromotility des cellules ciliées sont également développées dans la première époque de vie5.

Afin d’évaluer la sensibilité auditive des rats à différents âges postnatals, nous avons développé une méthode de réaction auditif du tronc cérébral (PEATC) enregistrement chez les ratons. Cellule entière patch clamp d’est une technologie idéale pour enquêter sur les contaminants organohalogénés électrophysiologique. Toutefois, le faible taux de cellules entières d’étanchéité en comparaison avec le patch clamp de jouée dans les neurones et autres cellules épithéliales, limité l’enquête d’electromotility des contaminants organohalogénés isolés.

Ici, nous décrivons une procédure pour enquêter sur les contaminants organohalogénés morphologiquement et électrophysiologique dans la cochlée aiguë dissociée des rats postnatals. Cette méthode peut être modifiée afin d’étudier les mécanismes moléculaires qui régissent la fonction et le développement des cellules ciliées internes.

Protocol

Tous les protocoles expérimentaux avec des sujets animaux ont été approuvées par le Comité d’éthique animale de l’Université médicale du Sud. 1. préparer des Solutions pour des expériences Préparer l’anesthésique (voir Table des matières) : 1,5 % pentobarbital sodique dissous dans ddH2O. Préparer la solution de dissection (voir Table des matières) : dissoudre un sachet de poudre de L-15 de Leiboviz dans 1 L…

Representative Results

ABR peut être déclenché de rat anesthésié petits plus vieux que le jour après la naissance 7 (P7) à l’aide de salves de sons purs (Figure 1 a). Comme le montre la Figure 1 b, les formes d’onde ABR provenant de ratons ont montré seulement trois ou quatre de vagues distinctes avec petite amplitude. Habituellement, jusqu’à sept sommets ont été observées dans les formes d’onde ABR des animaux adultes (<strong class=…

Discussion

Chez les rats âgés de moins de jour 11, n’on observe aucun potentiel d’action en réponse à une stimulation sonore au cortex auditif6,7. C’est pourquoi, jour après la naissance 11 est décrit comme « début de l’audience »10. Le développement d’une fonction d’audition avant le début de l’audience n’était pas bien étudié encore. En utilisant la méthode semblable pour l’enregistrement de ABR adulte, nous démo…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par des subventions du programme 973 (2014CB943002) et la Fondation nationale sciences naturelles de Chine (11534013, 31500841).

Materials

Anesthetic
Pentobarbital sodium Sigma P3761 1.5% in water
Name Company Catalog Number Comments
Dissection solution
Leiboviz's L-15 Medium Life Technologies 41300-039 1 pack in 1 L water
Collagenase IV Sigma C5138 2 mg/mL in L-15
HEPES Sigma 7365-45-9 10 mM
Name Company Catalog Number Comments
Immunostaining solutions
PBS Thermo Fisher Scientific 10010023 PH 7.3
Paraformaldehyde Sigma 158127 4% in PBS
Triton X-100 Amresco ZS-0694 0.3% in PBS
Normal goat serum Thermo Fisher Scientific 10000C 10% in PBS
prestin antibody Santa Cruz SC-22694 dil 1:200
Alexa Fluor 488-conjugated antibody Thermo Fisher Scientific A-11055 dil 1:600
Phalloidin-Tetramethylrhodamine B isothiocyanate Sigma P1951 dil 1:200
DAPI Solarbio C0060 dil 1:20
Name Company Catalog Number Comments
Extracellular solution
Leiboviz's L-15 Medium Life Technologies 41300-039 1 pack in 1 L water
HEPES Sigma 7365-45-9 10 mM
Name Company Catalog Number Comments
Intracellular solution
CsCl Sigma 7647-17-8 140 mM
MgCl2 Sigma 7791-18-6 2 mM
EGTA Sigma 67-42-5 10 mM
HEPES Sigma 7365-45-9 10 mM
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
Osmometer Gonotec OSMOMAT 3000 basic
Forcep WPI 14095 Tweezers dumont
Micropipette puller Sutter Instrument MODLE-P97
Micro Forge Narishigen MF-830
Mini Operating System Sutter Instrument MP-285
MultiClamp Axon 700B
Low-Noise Data Acquisition System Axon 1440A
ES1 speaker Tucker-Davis Technologies
TDT system 3 Tucker-Davis Technologies
Name Company Catalog Number Comments
Software
SigGenRP software Tucker-Davis Technologies
BioSigRP software Tucker-Davis Technologies
jClamp Scientific Solutions
Name Company Catalog Number Comments
Animal
SD rat Experimental Animal Center of Southern Medical University

References

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Cite This Article
Chang, A., Li, C., Huang, J., Pan, W., Tian, Y., Tang, J. Auditory Brainstem Response and Outer Hair Cell Whole-cell Patch Clamp Recording in Postnatal Rats. J. Vis. Exp. (135), e56678, doi:10.3791/56678 (2018).

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