שיטות איתור שגרתית ניצול גנום ויראלי הגברה מוגבלים על ידי חוסר יכולתם להפלות זיהומיות של חלקיקים שאינן זיהומיות. מטרת מאמר זה נועד לספק נתונים היסטוריים פרוטוקולים עבור שיטות אלטרנטיביות לסייע אפליה של חלקיקים norovirus זיהומיות באמצעות איגוד aptamer, פיזור אור דינאמי במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים.
האדם norovirus האסלאם נוקם בריאות הציבור ניכר והפסדים כלכליים ברחבי העולם. מתעוררים במבחנה טיפוח ההתקדמות עדיין אינם ישימים עבור זיהוי שגרתית של הנגיף. כימות טכניקות, אשר מסתמך בעיקר על הגברה חומצת גרעין, וזיהוי הנוכחי לא להפלות זיהומיות של נגיפים שאינן זיהומיות. מטרת מאמר זה היא להציג פרטים ספציפיים על ההתקדמות טכניקות המשמשות ביחד כדי לקבל עוד מידע על מצב infectivity של נגיפים. טכניקה אחת כוללת הערכת קשירה של aptamer ssDNA norovirus כדי capsids. Aptamers יש את היתרון של להיות מסונתז בקלות והוא שונה, ויש זול ויציב. טכניקה נוספת, דינאמי פיזור אור (DLS), יש את היתרון של התנהגות capsid בפתרון. מיקרוסקופ אלקטרונים מאפשר הדמיה של שלמות המבנה של capsids נגיפי. למרות והבטיחה, יש מספר חסרונות כל טכניקה, כגון aptamer שאינם ספציפיים מחייב מפרוטונים שמטענם מולקולות של מטריצות לדוגמה, הדרישה של capsid מטוהרים עבור DLS, ורגישות המסכן עבור מיקרוסקופ אלקטרונים. ובכל זאת, כאשר שיטות אלה משמשים בשילוב, הגוף של נתונים המיוצר מספק מידע מקיף יותר על תקינות capsid norovirus ניתן להסיק infectivity, מידע חיוני עבור הערכה מדויקת של השתקה של כרומוזום שיטות או פרשנות של וירוס האיתור. מאמר זה מספק פרוטוקולים בשיטות אלה להפלות norovirus האנושי זיהומיות חלקיקים.
Norovirus האנושי הוא אחראי על נטל ניכר בבריאות הציבור ברחבי העולם, גורם על 685 מיליון מחלות ותמותה 212,000 מדי שנה1, בעלות של מיליארדים של דולרים2,3. היום, norovirus זיהוי, כימות כרוך הגנום הגברה ו/או פלטפורמות מבוססות-ליגנד. הראשון הוא בדרך כלל עדיף כפי שהוא רגיש יותר, מספק מידע כמותי, יש סיכון נמוך יותר באופן כללי של תוצאות חיוביות שגויות4. הנפוץ ביותר norovirus זיהוי, כימות הגנום הגברה הטכניקה היא תגובת שרשרת של פולימראז כמותיים רוורס טרנסקריפטאז (RT-qPCR). כי היא מטרות, מגביר את מקטע קטן של הגנום האנושי norovirus, RT-qPCR לבד אינה מסוגלת האפליה בין זיהומיות ופגעו חלקיקים שאינן זיהומיות, כמו ה-RNA הגנומי חינם, capsids המכיל הגנום, capsids עם אנושות מוטציה/קטום הגנום יכול עדיין להיות מוגבר על ידי RT-qPCR. בעוד שני במבחנה הטיפוח-תרגול טכניקות חדשות norovirus אנושי5,6 דווחו לאחרונה, שניהם עדיין לסמוך על RT-qPCR על וירוס כימות, עדיין לא ריאלי שיטות שגרתיות קליני/סביבתיים בדיקת noroviruses האנושית. לפיכך, RT-qPCR נשאר תקן הזהב בדיקה קלינית/סביבתיים.
שיטות אחרות במבחנה פותחו במטרה להעריך טוב יותר את המצב infectivity של חלקיקים norovirus. שיטות אלה יכולים להיות מסווגים בדרך כלל כ אלה המטפלות שלמות capsid norovirus ואלה הערכת תקינות הגנום. הגישה פופולרי יותר. השיטה הנפוצה היא RNase רעלני לפני מיצוי של נגיפי RNA הגנומי, אולם זה אינו חשבון נגיפים נשארים בעינם, אך חוסר היכולת לאגד מארח קולטנים/co-גורמים, כמו גם חלקיקים נגיפיים כי יש מוטציה אנושות או יש נחתך או שולית פגום הגנום7. שלמות capsid גם ניתן להעריך בהתבסס על היכולת של הווירוס כדי לאגד norovirus האנושי co-receptor/co-גורמים, אשר הם פחמימות המכונה אנטיגנים קבוצה היסטו-דם (HBGAs). HBGAs נמצאים בתאי האפיתל במעי מארח כחלק glycoproteins או glycolipids (בין מספר רקמות אחרות), עשוי להיות מופרש בנוזלי גוף שונים כמו רוק. בה חיידק המכילים חומרים דמויי-HBGA על משטחים שלהם יש גם הוכח כדי לאגד norovirus האנושי8,9,10, אינטראקציות כאלה עשויים לקדם norovirus זיהום5. התפיסה הבסיסית של ניצול HBGA מחייב הוא כי רק מסוגל מחייב את בשם הקולטן/co-factor נגיפים יהיה מסוגל להדביק תאים. מחקרים רבים מראים כי מבוסס-חרוז איגוד HBGA שקדמו חומצת גרעין הגברה היא שיטה מבטיחה infectivity אפליה11,12,13,14, 15,16. האתגר העיקרי לגבי HBGAs היא כי אין סוג HBGA יחיד באפשרותך לאגוד כל norovirus אנושיים אחרים. כדי לטפל בבעיה זו, שימש חזירי mucin קיבה, אשר מכיל HBGAs, במקום פחמימות מטוהרים HBGA כדי לשמור על נוחות של סינתזה, עקביות, עלות מופחתת.
פרסום זה התבצעה על ידי מור. et al. 17 הציג סט של טכניקות חדשות עבור הערכת תקינות capsid norovirus אנושי. במקום HBGAs, מור. et al. 17 חקרו את הכריכה של חומצת גרעין בהרחבה תגובתי aptamer (M6-2)18 ו ש GII.4 סידני שילדת norovirus capsids (חלקיקים דמויי וירוס או האח מים)19 בהרחבה תגובתי נוגדנים חד שבטיים (NS14), לעומת זאת על הכריכה כדי HBGAs סינתטי. חומצת גרעין aptamers הם קצר (~ 20-80 nt) יחיד נטושים חומצות גרעין (ssDNA או RNA) לקפל לתוך מבנים תלת מימדיים ייחודיים כתוצאה הרצף שלהם, לאגד מטרה. כי הם חומצות גרעין, הם פחות יקר; בקלות כימית מסונתז מטוהרים, שונה; יציב לחום קיימים מספר דיווחים של aptamers שנוצר נגד noroviruses, עם חלק מהם מציג תגובתיות רחב מגוון של זנים18,20,21,22. דוגמה, מור. et al. 17 הפגינו את aptamer M6-2 קשורה norovirus האנושי מטוהרים, שהורכב capsids (האח מים) ו התנהגה באופן דומה כדי HBGA והתלות capsid ויראלי כדי לשמור על מבנה החלבון סדר (למשל, משניות ושלישוניות) גבוה יותר עבור כריכת להתרחש. מצד שני, חלק ניכר norovirus האח מים מחייב נוגדן NS14 נותרה לאחר היו capsids שפגע בסימני לחלוטין. הערכה של איגוד norovirus במחקר על ידי מור. et al. 17 נעשתה באמצעות שיטה פשוטה, המבוססים על צלחת דומה, אליסה, למעט כי aptamers משמשים במקום נוגדנים (ומכאן השיטה נקראה ELASA). זו השיטה הניסיונית של תפוקה גבוהה שימש כדי להעריך את ההשפעות של טיפולים שונים על capsid norovirus, עבודה זה חשוב להבנת המנגנון של איון ויראלי בתגובה לחשיפה לחצים פיזי או כימי. עם זאת, חסרון אחד לשיטה זו הוא נמוך יותר רגישות חוסר סובלנות כלפי מזהמים מטריקס-הקשורים ברמות גבוהות יותר, הגורמות מחייב שאינם ספציפיים על-ידי aptamers.
מור. et al. 17 להשתמש בשיטה אחרת, אור דינאמי פיזור (DLS), כדי לפקח על צבירה של נגיפים בתגובה טיפול בחום. DLS משמש בדרך כלל כדי להעריך את הגודל של ננו-חלקיק המתלים, הורחבה חלבונים23,24 ווירוסים25,26,27. עוצמת האור מפוזר על ידי חלקיקים בתמיסה תנודות כפונקציה של גודל החלקיקים, המאפשר חישוב מקדם דיפוזיה ולאחר מכן קוטר חלקיקים באמצעות נוסחות ומבוססת. הטכניקה DLS יכולים להבחין הקוטר hydrodynamic של חלקיקים התפזרו עד הננומטרי, המאפשר זיהוי של וירוסים התפזרו, חלבונים capsid בודדים או הדימרים אגרגטים וירוס מבוסס על גודל27. מצבור וירוס, המיוצג על-ידי עלייה גודל החלקיקים, הוא מרמז על אובדן של capsid שלמות. Capsid הוא שפגע בסימני, המבנה שלו משובשות, שאריות הידרופובי הופכים חשופים וגורמים החלקיקים להישאר ביחד ויוצרים אגרגטים. DLS יכול לשמש כדי למדוד את גודל החלקיקים לאחר טיפול שצוין או את קינטיקה של מצבור בזמן אמת17,28. בשיטה זו יש את היתרון של ומאפשר תצפית בהתנהגות capsid בפתרון אך דורש ריכוז גבוה של capsid מטוהרים, אשר ייתכן שאינו לגמרי נציג של הוירוס במצבו הטבעי.
השיטה האחרונה מנוצל על ידי מור. et al. 17 היה במיקרוסקופ אלקטרונים הילוכים (TEM). למרות ששיטה זו חסר רגישות, אינו מייצר נתונים כמותיים, היא מאפשרת הדמיה של ההשפעות של טיפולים שונים על המבנה capsid ויראלי. למרות שלא עדיין אידיאלי עבור הגדרות קליני/סביבתיים, השימוש בשיטות אלה בשילוב הוא חשוב בהבנת האדם norovirus איון. מטרת מאמר זה היא לספק פרוטוקולים מעמיק המבוסס על צלחת איגוד וזמינותו (ELASA), DLS, והשתמשו בשיטות הכנה TEM כדי לחקור את ההשפעות של טיפולים תרמיים על capsid norovirus בהקשר של ההשפעות של הטיפולים על capsid שלמות כפי שהוצג במור. et al. 17.
הפרוטוקול ואת הטכניקות המתוארות כאן מספקים אמצעי הערכת norovirus האנושי capsid תקינות/הפונקציונליות של…. שיטות אלה יכול לשמש להשגת תובנה מכניסטית ההשפעות של איון טיפולים נגד הנגיף, באופן פוטנציאלי יכול לשמש כתוספת מסורתיים יותר שיטות ההערכה איון כמו assay RT-qPCR או פלאק. למשל, הערכת איון כימיים או פ?…
The authors have nothing to disclose.
עבודה זו נתמכה על ידי חקלאות, מזון המחקר יוזמת תחרותי מענק מס 2011-68003-30395 מחלקת החקלאות של ארצות הברית, המכון הלאומי של המזון, החקלאות באמצעות הפרויקט NoroCORE. מימון עבור גישה פתוחה תשלום סופק על ידי מחלקת החקלאות של ארצות הברית. ברצוננו להודות רוברט Atmar (ביילור לרפואה, יוסטון, טקסס) בחביבות לספק לנו את capsids מטוהרים ואת ואלרי לפאם על הסיוע עם תמונות TEM. אנחנו רוצים גם פרנק נ’ בארי. תודה שעזרת לנו להתחיל את הניסויים שהוצגו.
Plate-Based Binding Assay for Evaluating Loss of Higher Order Norovirus Capsid Structure | |||
96-well, medium-binding polystyrene EIA plate | Fisher (Costar) | 07-200-36 | |
Lid for 96-well plate | Thermo Fisher | 3098 | |
Paraffin film (Parafilm) | Thermo Fisher | PM999 | |
1x PBS (pH 7.2) | Life Technologies | 20012-050 | |
Polysorbate 20 | Sigma-Aldrich | P9416 | |
1x PBS (pH 7.2) + 0.05% Polysorbate 20 | N/A | N/A | |
Purified, assembled human norovirus GII.4 capsids | N/A | N/A | |
Individual 0.2 ml PCR tubes | Genesee Scientific | 22-154G | |
2 thermocyclers | Bio-Rad | 1861096 | |
Tabletop mini centrifuge | Fisher Scientific | 12-006-901 | |
Skim milk solids | Thermo Fisher | LP0031B | |
Synthetic histo-blood group type A disaccharide, biotinylated | Glycotech | 01-017 | |
Biotinylated aptamer M6-2 (stock concentration 100 µM in nuclease-free water): 5'-/5Biosg/AGTATACGTATTACCTGCAGCTGGGAAGAGGTCCGGTAAATGCAGGGTCAGCCCGGAGAGCGATATCTCGGAGATCTTGC -3’ | Integrated DNA Technologies | N/A | |
Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (ELISA grade), We use Life Technologies SNN2004 | Life Technologies | SNN2004 | |
3,3’,5,5’-tetramethylbenzidine (TMB) substrate, room temperature | Thermo Fisher | 50-76-00 | |
1 M phosphoric acid | N/A | N/A | |
Microplate reader capable of reading 450 nm | Tecan | Infinite m200 Pro | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Analysis of Plate-Based Assay Results | |||
Microsoft Excel or similar program | N/A | N/A | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Dynamic Light Scattering Experiments | |||
Zetasizer ZSP, or similar particle size analysis instrument | Malvern Instruments | N/A | |
Vortex | Fisher Scientifc | 02-215-365 | |
Quartz cuvette | Hellma | 104-002-10-40 | |
Small volume disposable cuvette (to reduce VLP use) | Malvern Instruments | ZEN0040 | |
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Transmission Electron Microscopy Sample Preparation | |||
Nickel electron microscopy grids with carbon support film | Ladd Research | 10880-100 | |
Self-closing reverse electron microscopy tweezers | Ted Pella | 5372-NM | |
Qualitative filter paper | Sigma-Aldrich (Whatman) | WHA1002055 | |
Glass petri dishes | Sigma-Aldrich | BR455743 | |
100 mM stock HEPES solution (pH 7.2) | N/A | N/A | |
2% uranyl acetate | N/A | N/A |