Dit artikel beschrijft een reeks van technieken in licht- en elektronenmicroscopie te bestuderen van de interne en externe oog anatomie van insecten. Het gaat hierbij om verschillende traditionele technieken geoptimaliseerd voor werk op mier ogen, gedetailleerde probleemoplossing, en suggesties voor optimalisatie voor verschillende exemplaren en regio’s van belang.
Dit artikel schetst een suite van technieken in (LM) de lichte microscopie en elektronenmicroscopie (EM) die kan worden gebruikt voor de studie van de anatomie van de interne en externe oog van insecten. Het gaat hierbij om traditionele histologische technieken geoptimaliseerd voor werk op mier ogen en aangepast om te werken in concert met andere technieken zoals Transmissie Electronenmicroscopie (TEM) en scanning elektronen microscopie (SEM). Deze technieken, kunnen hoewel enorm nuttig, moeilijk zijn voor de beginnende microscopist, zodat grote nadruk in dit artikel over probleemoplossing en optimalisatie voor verschillende exemplaren. Wij verstrekken informatie over imaging technieken voor het hele model (foto-microscopie en SEM) en bespreken hun voor- en nadelen. We markeren de techniek die gebruikt wordt bij het bepalen van de diameter van de lens voor het hele oog en bespreken van nieuwe technieken voor verbetering. Tot slot bespreken we technieken die betrokken zijn bij de voorbereiding van monsters voor LM- en TEM, afdelen, kleuring en imaging van deze monsters. We bespreken de horden die één zouden kunnen komen over als voorbereiding van monsters en de beste manier om te navigeren naar hen.
Visie is een belangrijke sensorische modaliteit voor de meeste dieren. Visie is vooral belangrijk in het kader van navigatie voor het aanwijzen van doelstellingen, vaststelling van vast te houden aan routes en verkrijgen van kompas informatie1,2. Insecten detecteren visuele informatie met behulp van een paar samengestelde ogen en, in sommige gevallen één tot drie dorsally geplaatste eenvoudige ogen genoemd ocelli3,4,5.
De ogen van mieren zijn van bijzonder belang omdat, terwijl de mieren zijn verbazingwekkend verschillend, ze enkele belangrijke kenmerken over soorten besparen. Ondanks de dramatische variatie in de anatomie, de grootte en ecologie, de overgrote meerderheid van de soorten zijn eusociale en leven in kolonies; Dientengevolge, uitdagingen verschillende soorten soortgelijke visuele in termen van het heen en weer navigeren tussen een centrale plaats en middelen. Over mieren kan de dezelfde fundamentele oog-bauplan worden waargenomen bij dieren variërend van 0,5-26 mm in lengte, uitsluitend dagverloop naar strikt nachtactieve soorten, en traag lopen ondergrondse naar visuele roofdieren6,7, springen 8,9,10. Al deze duizelingwekkende verschillen in ecologie en gedrag geeft aanleiding tot talloze permutaties van de dezelfde fundamentele oog structuren aanpassen aan verschillende omgevingen, levensstijlen en lichaam-maten11,12. Dientengevolge, biedt bestuderen van de visuele ecologie van mieren een ware schat aan mogelijkheden om de vastberaden onderzoeker.
Inzicht van het visuele systeem van insecten is essentieel bij het verkrijgen van inzicht in hun gedrags vermogens. Dit blijkt uit integrative studies die mooi anatomie met ecologie en gedrag tot een groot succes in een paar insecten groepen (bijvoorbeeldverwijzingen13,14,15,16, combineren 17). Hoewel het gebied van ant navigatie en ant gedrag in het algemeen heel succesvol geweest, heel weinig nadruk is gelegd op mier visie buiten een paar geselecteerde soorten. Hier, zullen we ingaan op de technieken die betrokken zijn bij het onderzoeken van oog ontwerp van mieren. Terwijl we ons op mieren richten zullen, deze technieken kunnen worden toegepast, met kleine aanpassingen, aan andere insecten, ook.
De suite van bovengenoemde methoden, is voorzien van een daadwerkelijk onderzoek naar het optische systeem van mieren en andere insecten. Deze technieken informeren ons begrip van de sampling-resolutie, optische gevoeligheid en potentiële polarisatie gevoeligheid van het oog wordt onderzocht. Deze kennis is een belangrijke basis voor fysiologische en gedragsmatige onderzoek naar hun visuele mogelijkheden. Bovendien, terwijl de hier gedetailleerde methoden hebben gericht op mier visuele systemen, deze technieken kunnen w…
The authors have nothing to disclose.
We zijn dankbaar Jochen Zeil, Paul Cooper en Birgit Greiner voor het delen van hun kennis in de anatomie van insecten en voor het aantonen van enkele van de technieken die wij hier hebben beschreven. We zijn dankbaar om het getalenteerde en ondersteunend personeel van het centrum voor geavanceerde microscopie op ANU en The microscopie Unit op MQU. Dit werk werd gesteund door een gediplomeerde beurs FRE en subsidies van de Australian Research Council (DE120100019, FT140100221, DP150101172).
Ant | Myrmecia midas | ||
Stereomicroscope | Leica M205 FA | ||
Sputter coater | Pro Sci Tech | ||
Ethanol | Sigma Aldrich | ||
Petri dish | ProSciTech | ||
Dissecting microscope | Leica MZ6 | ||
Insect Pin | ProSciTech | ||
Colourless nail polish | Non branded: from any cosmetic store | ||
Glass slide | ProSciTech | ||
Razor blade | ProSciTech | ||
Foreceps | ProSciTech | ||
Cover slip | ProSciTech | ||
Compound microscope | Leica DM5000 B | ||
Glutaraldehyde | Sigma Aldrich | ||
Paraformalydehyde | Sigma Aldrich | ||
Potassium Chloride (KCl) | Sigma Aldrich | ||
di-Sodium Hydrogen phosphate (Na2HPO4) | Sigma Aldrich | ||
Potassium di-Hydrogen Phosphate (KH2PO4) | Sigma Aldrich | ||
Sodium Chloride (NaCl) | Sigma Aldrich | ||
Osmium tetroxide | Sigma Aldrich | ||
Acetone | Sigma Aldrich | ||
Araldite Epoxy Resin | Sigma Aldrich | ||
Pasteur pipette | Sigma Aldrich | ||
Toluidie Blue | Sigma Aldrich | ||
Hotplate | Riechert HK120 |