Este protocolo describe un medio eficaz para controlar la persistencia de la célula y la biodistribución de humanas derivados del adiposo células madre mesenquimales (haMSCs) por far-red de la fluorescencia de etiquetado en un modelo de ratas rodilla osteoartritis (KOA) mediante inyección intra-articular (IA).
Para apoyar la aplicación clínica de humano adiposo derivado mesenquimal (haMSC) terapia de células madre para la artrosis de rodilla (KOA), examinamos la eficacia de la persistencia de la célula y la biodistribución de haMSCs en modelos animales. Hemos demostrado un método para etiquetar la membrana de la célula de haMSCs con colorante fluorescente lipofílico. Posteriormente, la inyección intraarticular de las células etiquetadas en ratas con KOA quirúrgico inducido fue monitoreada dinámicamente por un en vivo sistema de imagen. Se empleó el lipofílico carbocyanines hizo (DilC18 (5)), un far-red análogo fluorescente de Dil (dialkylcarbocyanines), que utiliza un láser rojo para evitar la excitación de la autofluorescencia verde natural de los tejidos circundantes. Además, los espectros de emisión rojo-cambiado de puesto de permitir la proyección de imagen de tejidos profundos en animales vivos y el procedimiento de etiquetado no causaron efectos citotóxicos o daño funcional de haMSCs. Este enfoque ha demostrado ser un método de seguimiento eficiente para haMSCs en un modelo de ratas KOA. La aplicación de este método podría utilizarse también para determinar la vía de administración óptima y la dosis de MSCs de otras fuentes en los estudios preclínicos.
Osteoartritis de rodilla (KOA) es un desorden degenerativo, resultantes de la pérdida de cartílago articular y la inflamación progresiva, que se ha convertido en una enfermedad crónica importante en los ancianos en el mundo1. Sin embargo, los tratamientos actuales con fármacos antiinflamatorios, suplementos físicos y procedimientos quirúrgicos sólo pueden proporcionar alivio temporal de dolor sintomático2.
Humanas derivado de adiposo células madre mesenquimales (haMSCs) se han convertido en un prometedor remedio regenerativo para la osteoartritis de la rodilla, debido a su diferenciación multipotent potencial para regeneración de cartílago e inmunomoduladores propiedades3, 4. En comparación con vías farmacológicas para investigar mecanismos de acción en vivo, seguimiento de haMSCs vivo en modelos animales de pequeño KOA es actualmente instructivo para establecer la razón de ser de y la factibilidad de la terapia de haMSC antes de la aplicación clínica. Para las pruebas preclínicas, meniscectomy medial (MM) desestabiliza la carga mecánica de la articulación para inducir KOA en ratas, que ofrece un modelo relativamente factible con reproducibilidad constante5. La aparición de KOA inducida por MM es anterior a la transección del ligamento cruzado anterior sola o combinada con parcial meniscectomy intermedio6. Por lo tanto, las interacciones a largo plazo entre haMSCs inyectado con el microambiente patológico de KOA son a menudo evaluadas en ratas inducidas por MM7,8.
Aunque la eficacia terapéutica de haMSCs ha sido ampliamente divulgado conocimiento relevante sobre la persistencia en vivo de haMSCs implantado mediante inyección intra-articular (IA) es escaso9,10. Por lo tanto, distintos métodos de etiquetado celulares han sido desarrollados, incluyendo el immunohistology11, luciferasa12, transfección de13 proteína fluorescente verde, óxido de hierro de etiquetado para la proyección de imagen de resonancia magnética (MRI)14 y numerosas células fluorescentes tintes8,15,16. Comparado con el análisis de la histología de la mano de obra intensiva, en vivo no invasivo la proyección de imagen emplea dispositivos ópticos para detectar la distribución en tiempo real y dinámica de las células etiquetadas con señales fluorescentes10,17. Para la proyección de imagen funcional de células vivas, etiquetado fluorescente de cytocompatible es una técnica de sofisticado rastreo radioactivo libre para revelar actividades celulares después de trasplante de células madre18. Por otra parte, tintes lipofílicos fluorescentes multicoloras poseen ventajas sobre tintes hidrófilos amino reactivos o proteínas fluorescentes, incluyendo la permeabilidad de la célula mejorada y mayor fluorescencia cuántica rendimientos19.
Por lo tanto, los protocolos aquí utilizan un rojo láser para excitar las células etiquetadas con carbocyanines lipofílico hizo (DilC18(5)), que es un far-red fluorescente Dil (dialkylcarbocyanines) analógico20. Los espectros de excitación y emisión rojo-cambiado de puesto de evita autofluorescent interferencia y permite la proyección de imagen durante un largo período de tiempo en animales vivos8de tejidos profundos. Este método de seguimiento de células en vivo con que es válido para el monitoreo de células madre trasplantadas, tales como haMSCs, en modelos animales, que es esencial para entender y mejorar la actual terapia regenerativa con células madre.
Normas de seguridad y estudios de biodistribución de terapia de células madre están urgente antes de que podemos llevar tratamiento regenerador de células madre para el KOA del Banco a la cabecera. Sin embargo, el medio ambiente patológico de la enfermedad desempeña un papel importante en la persistencia y la biodistribución de trasplantados haMSCs10. Recientemente, nuestro grupo demostró que la inyección intraarticular de haMSCs persistió ya en un ambiente patológico de KOA de las inye…
The authors have nothing to disclose.
El presente estudio fue apoyado por Shanghai innovación fondos (1402H 294300) patrocinado por la ciencia y la tecnología de la Comisión de la Shangai municipio (CN) a Dr. Wen Wang. Nos gustaría agradecer a Dr. Zhou Guangdong (nacional tejido ingeniería centro de China) por su asistencia técnica y asesoramiento para este manuscrito. También quisiéramos agradecer a Sr. Huitang Xia (Hospital de Shanghai novena popular) por su ayuda en el bienestar de los animales.
Matrx VMR animal anesthesia system | Midmark | VIP3000 | |
4-0 suture | Shanghai Jinhuan | KC439 | |
Razor | Pritech | LD-9987 | |
Gentamicin | Zhejiang Jindakang Animal Health Product Co., Ltd. | None | |
0.9% Sodium chloride solution | Hunan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd. | H43020455 | |
Penicillin | Shanghai Kangfu chemical pharmaceutical Co., Ltd. | None | |
Buprenorphine | Tianjin Pharmaceutical Research Institute Pharmaceutical Co., Ltd. | None | |
Paraformaldehyde | Sigma-Aldrich | 16005 | Dilute to final concentration of 10% in PBS |
EDTA | Sigma-Aldrich | E9884 | Dilute to final concentration of 20% in PBS |
0.1% Hematoxylin Solution, Mayer’s | Sigma-Aldrich | MHS16 | |
0.5% Eosin Y solution, alcoholic | Sigma-Aldrich | HT110116 | |
Safranin O | Sigma-Aldrich | S8884 | |
Fast Green | Sigma-Aldrich | F7258 | |
Shandon Excelsior ESTM Tissue Processor | Thermo Fisher | A78400006 | |
Shandon Histocentre™ 3 Tissue Embedding Center | Thermo Fisher | B64100010 | |
Fully Automated Rotary Microtome | Leica | RM2255 | |
DiD | Molecular Probes, Life Technologies |
V-22887 | |
D-MEM High Glucose | Sigma-Aldrich | D5648 | |
PBS | GIBCO, Life Technologies | 14190-144 | |
0.25% Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25200-114 | |
10 cm Petri Dish | Corning | V118877 | |
Centrifuge | Beckman | Optima MAX-TL | |
Fluorescent microscope | Olympus | BX53 | |
0.4% Trypan Blue solution | Sigma-Aldrich | 93595 | |
Titetamme | Virbac (Zoletil 50) | 1000000188 | |
Zolazepam | Virbac (Zoletil 50) | 1000000188 | |
Sterile hyposermic syringe for single use 26G | Shanghai Misawa Medical Industry | None | |
IVIS Spectrum In Vivo Imaging System | PerkinElmer | 124262 | |
Living Imaging 4.0 software | PerkinElmer | None |