ヒトに誘導された多能性幹(hiPS)細胞の強力な誘導は、真皮線維芽細胞の非組込みセンダイウイルス(SeV)ベクター媒介性再プログラミングを使用することによって達成された。 hiPS細胞の維持およびクローン増殖は、組換えヒトラミニン521(LN-521)マトリックスおよびEssential E8(E8)培地を用いた異種非含有および化学的に規定された培養条件を用いて行った。
Xeno-freeおよび完全に定義された条件は、均一なヒト誘導多能性幹(hiPS)細胞の堅牢で再現性のある世代のための重要なパラメータである。フィーダー細胞または未定義マトリックス上のhiPS細胞の維持は、バッチの変動、病原性の汚染および免疫原性のリスクに影響されやすい。定義された組換えヒトラミニン521(LN-521)マトリックスを異種非含有培地および規定培地と組み合わせて使用することにより、変動性が減少し、hiPS細胞の一貫した生成が可能になる。センダイウイルス(SeV)ベクターは、非組み込み型RNAベースのシステムであるため、組み込みベクターが有するゲノムの完全性に対する潜在的な破壊的効果に関連する懸念を回避することができる。さらに、これらのベクターは真皮線維芽細胞の再プログラミングにおいて比較的高い効率を示した。さらに、細胞の酵素的な単細胞継代は、実質的に以前の経験のないhiPS細胞の均質な維持を容易にする培養する。ここでは、再現性と使いやすさに重点を置いて広範囲に試験および開発され、線維芽細胞から定義された異種非含有ヒトhiPS細胞を生成するための堅牢で実用的な方法を提供するプロトコールについて説明します。
Takahashi らによるhiPS細胞株の最初の誘導以来、 1、2 、hiPS細胞は、疾患モデル化、創薬、および再生医療における細胞療法を生成するための原材料として有用なツールを提供している3 。 hiPS細胞培養は、線維芽細胞フィーダー細胞4,5またはマトリゲル6および胎児ウシ血清(FBS)を含有する培地製剤との共培養に長く依存してきた。バッチ間の変動は、これらの培養条件の未定義の性質の共通の結果であり、予測不可能な変動をもたらし、これらのプロトコルの信頼性に大きく寄与する7 。 Essential 8(E8) 8および定義された細胞培養マトリックス、例えばLN-521 9のような規定された培地の開発は、高度に再現可能なプロトコールの確立および均質なhiPS細胞の堅牢な生成および維持を助けるためのものである7,8,9,10。
統合型の再プログラミング技術の開発は飛躍的な進歩を遂げています。もともと、再プログラミングは、ゲノムの完全性に破壊的な影響を与えてゲノムにランダムに組み込まれたレトロウイルスベクターに依存していました11 。再プログラミング方法の進歩には、RNAに基づくベクターの開発が含まれる。 RNAベクターは、ゲノム組換えによる意図しない組込みが不可能であるため、DNAベースの再プログラミング方法よりも有利である12 。 SeVベクターは、DNA相11を持たない一本鎖RNAを介して、外因性因子の高い一過性の発現を提供する。 SeVによって送達された再プログラミングベクター細胞の増殖の至るところで希釈され、最終的に培養から脱落して、フットプリントの自由な再プログラミング方法を提供する。その後、多能性の維持は、多能性遺伝子の内在的発現に依存する2 。
先駆的なhiPS細胞ベースの治療法が臨床試験に移行し始めているため、標準化されたバッチ、再現性、および安全性に対する要求は、 13に対処するための重要な課題です。したがって、動物起源の製品は避けるべきである。例えば、異種産物の使用は、非ヒト病原体汚染のリスクと関連している。また、動物由来の培養成分の存在下で培養された細胞は、非ヒトのシリア酸を細胞膜に取り込ませ、誘導された細胞を免疫原性にすると脅かされている14 。したがって、将来の臨床研究には、異種産物を排除する必要があります。このプロトコルはxeを適用しますhiPS細胞の維持における無細胞で規定された培養は、細胞を臨床コンプライアンスに近づける。
このプロトコルは、線維芽細胞から標準化されたhiPS細胞を生成する、一貫性があり、再現性があり、使い易い方法を記載しています。また、確立されたhiPS細胞の維持のための使いやすい培養システムを提供します。このプロトコールは、Karolinska Institutetのスウェーデン国内ヒトiPSコア施設で、300以上のhiPS細胞株を誘導するために使用されています。
このプロトコールの予想される結果は、いくつかのクローン的に誘導されたhiPS細胞株の生成が成功したことである。重要なことに、ここに記載された確立されたhiPS細胞の維持および増殖のための方法は信頼性があり、幹細胞培養の経験がほとんどない状態で実施することができる。 ROCKiとLN-521マトリックスとの酵素的単一細胞継代は、細胞を核型正常、多能性および容易に分化させること?…
The authors have nothing to disclose.
この作業は、SSF(B13-0074)とVINNOVA(2016-04134)の資金提供機関によってサポートされました。
Dispase | Life Technologies | 171105-041 | Biopsy digestion |
Collagenase | Sigma | C0130 | Biopsy digestion |
Gelatin | Sigma | G1393 | Fibroblast matrix |
IMDM | Life Technologies | 21980002-032 | Fibroblast medium |
FBS | Invitrogen | 10270106 | Fibroblast medium |
PenicillinStreptomycin | Life Technologies | 15070-063 | Antibiotic |
Essential 8 media | ThermFisher Scientific | A1517001 | iPS cell culture media |
LN-521 | Biolamina | LN521-03 | iPS cell culture matrix |
TrypLE select 1X | ThermoFisher Scientific | 12563011 | Dissociation reagent |
Rho-kinase inhibitor Y27632 | Millipore | SCM075 | Rho-kinase inhibitor (ROCKi) |
CytoTune – iPS 2.0 reprogramming kit | Life Technologies | A1377801 | Sendai virus reprogramming vector |
35 mm tissue culture dish | Sarstedt | 83.3900.300 | Cell culture |
60 mm tissue culture dishes | Sarstedt | 83.3901.300 | Cell culture |
24 well tissue culture plates | Sarstedt | 83.3922.300 | Cell culture |
T25 tissue culture flasks | VWR | 734-2311 | Cell culture |
15 ml tubes | Corning | 430791 | Centrifuge tubes |
1.5 ml tube | Eppendorf | 0030123.301 | 1.5 ml tube |
CoolCell cell LX | Biocision | BCS-405 | Freezing container |
DMSO | Sigma | D2650-100ml | Fibroblast freezing |
Cryovials 1.8 ml | VWR | 479-6847 | Cryovials |
PSC Cryopreservation Kit | Gibco | A2644601 | PSC CryomediumRevitaCell supplement |
Trypsin-EDTA (0.05%) | ThermoFisherScientific | 25300054 | Fibroblast dissociation enzyme |
DMEM/F12 | Life Technologies | 31331-028 | Digestive enzymes dilutant |
DPBS | Life Technologies | 14190-094 | PBS |
HBSS | ThermoFIsher Scientific | 14025-050 | Biopsy preparation |
Haemocytometer | Sigma | BRAND, 718920 | Cell counting |