Здесь мы представляем протокол для визуализации живого изображения вторичного слияния мыши с использованием конфокальной микроскопии. Этот протокол можно использовать в сочетании с различными линиями флуоресцентных репортерных мышей, а также с ингибиторами пути для механистической проницательности. Этот протокол может быть адаптирован для живых изображений в других системах развития.
Слияние вторичных небных стеллажей с образованием неповрежденного вторичного неба является ключевым процессом развития млекопитающих, и его разрушение может привести к расселению вторичного неба, общей врожденной аномалией у людей. Вторичный синтез неба широко изучен, что приводит к нескольким предложенным клеточным механизмам, которые могут опосредовать этот процесс. Однако эти исследования в основном проводились на фиксированных эмбриональных тканях в прогрессивные моменты времени во время развития или в фиксированных культурах эксплантатов, проанализированных в статические моменты времени. Статический анализ ограничен для анализа динамических морфогенетических процессов, таких как слияние неба, и какие типы динамического клеточного поведения опосредуют небное слияние, не полностью поняты. Здесь мы опишем протокол для реального изображения ex vivo вторичного слияния неба в эмбрионах мыши. Чтобы исследовать клеточное поведение слияния неба, эпителиальноспецифический кератин- 14 был использован для маркировки эпителиальных клеток неба в ROSА26-mTmG FLOX репортер эмбрионов. Для визуализации нитчатого актина использовались репортерные мыши Lifeact-mRFPruby . Живую визуализацию вторичного слияния неба проводили, рассекая недавно прикрепленные вторичные небные полки эмбриональных эмбрионов зародышевого дня (E) 14,5 и культивируя в агарозосодержащих средах на стеклянной донной тарелке, чтобы обеспечить визуализацию с помощью инвертированного конфокального микроскопа. Используя этот метод, мы обнаружили множество новых сотовых форм при вторичном слиянии неба. Понимание того, как четкое поведение клеток координируется в пространстве и времени, значительно способствует пониманию этого динамического морфогенетического процесса. Этот протокол может быть применен к мутантным линиям мыши или культурам, обработанным фармакологическими ингибиторами, для дальнейшего понимания того, как контролируется вторичное слияние неба.
Слияние тканей является важным шагом в развитии нескольких органов. Основные дефекты врожденного порока человека, такие как расщелина губы и неба, расщепление позвоночника и мальформации сердца, могут быть результатом дефектов в тканевом слиянии 1 . Мышцы вторичного слияния неба широко изучались для идентификации клеточных и молекулярных механизмов, контролирующих слияние тканей в развитии 2 , 3 , 4 . У мышей развитие вторичного неба начинается примерно в районе E11.5 с выростом вторичного небного шельфа от каждого из двусторонних верхнечелюстных процессов. Первоначальный рост небных полков происходит вертикально вдоль языка, до приблизительно E14.0, и в это время небные полки поднимаются горизонтально над языком. Медиально-направленный рост приводит к физическому контакту между прилегающим эпителием двух небных полочек, образуя эпителий средней линииАль-шва (МЧС) в Е14.5. Промежуточный МЭС должен быть удален из вторичных небных стеллажей, чтобы обеспечить мезенхимальное слияние и развитие неповрежденного, полностью слитого вторичного неба по E15.5 3 .
Как общий слой эпителиальных клеток MES образуется между двумя отдельными небными полками, а затем удаляется для достижения мезенхимальной слияния, был основным вопросом развития неба. Основываясь на исследованиях гистологической и электронной микроскопии мыши (ЭМ), исследованиях культивирования эксплантатов и экспериментов по генетической генетике мыши, в этом процессе участвовали несколько фундаментальных типов клеток. Филоподийные проекции из медиального краевого эпителия MEE каждого небного шельфа облегчают начальный контакт 5 , 6 , а затем интеркаляцию этих эпителиальных клеток в общую единицу MES 6 , 7 . Удаление итоговой общей MESБыло предложено использовать три неэксклюзивных механизма. Ранние исследования с использованием гистологического наблюдения и трассировки линии ex vivo с использованием жизненно важных красителей показали, что МЭС может быть удалена эпителиальным путем к мезенхимному переходу (ЕМТ) клеток MES 8 , 9 , хотя в последнее время генетическое отслеживание линий эпителиальных клеток вызывает неопределенность в отношении Долгосрочный вклад эпителиальных клеток в меланиму небной полки 10 , 11 , 12 . Значительное количество апоптотических клеток и уменьшение их числа у некоторых мутантов, которые не проходят надлежащего слияния неба, привели к мысли, что апоптоз может быть основным фактором растворения МЭС 2 , 3 . Наконец, основываясь первоначально на исследованиях, связанных с эпителиальной маркировкой и статическим наблюдением в прогрессивные моменты времени, клетки MESБыли предложены мигрировать в орональном и переднезаднем размерах 11 , 13 , но такое динамическое поведение клеток первоначально было неподтвержденным из-за невозможности наблюдать их в живой небной ткани. Недавно мы смогли непосредственно наблюдать это поведение, разработав новую технологию визуализации изображений, которая сочетает в себе генетические методы мыши с флуоресцентной маркировкой с конфокальной жировой визуализацией эксплантированных небных стеллажей.
Во-первых, для визуализации динамического клеточного поведения в эпителиальных клетках неба во время слияния неба мы создали эпителиальную репортерную мышь, пересекая мышей ROSA26-mTmG flox с мышами 14 , 15 Keratin14-cre . Конфокальные живые изображения культивирования неба в результате образования эмбрионов подтвердили некоторые ранее предложенные клеточные поведения и выявили новые события в процессе слияния 6 </SUP>. Выдвижения эпителиальных клеточных мембран предшествовали первоначальному клеточному клеточному контакту, за которым следовала эпителиальная конвергенция путем интеркаляции клеток и смещения овальных клеток. Примечательно, что мы также обнаружили, что экструзия клеток, процесс, который, как известно, играет важную роль в эпителиальном гомеостазе, был основным механизмом, приводящим к вторичному слиянию неба 6 , 16 . Этот метод визуализации можно использовать с другими линиями репортера; Мы использовали трансгенные мыши Lifeact-mRFPruby 17 , 18 для изучения динамики цитоскелета актина во время процесса слияния. Другие репортеры могут также использоваться для наблюдения за другими конкретными аспектами слияния неба, и этот метод может быть адаптирован как к лазерной сканирующей конфокальной микроскопии, так и к конфокальной микроскопии спиннингового диска в зависимости от потребностей в изображении и доступности микроскопа. Живое изображение все чаще становится краеугольным подходом в биологии развития. ПартиCularly, черепно-лицевой морфогенез является сложным, и человеческие врожденные дефекты, которые влияют на лицо, являются общими. Этот конфокальный живой метод визуализации поможет улучшить понимание основных основных механизмов развития, а также истоков черепно-лицевых аномалий человека.
Живое изображение морфогенеза ткани с культурой эмбрионального тела может предоставить подробную информацию о клеточных процессах, которые не могут быть показаны при обычном анализе окрашивания фиксированных участков ткани. Используя in vitro эксплантовую культуру эмбриональног?…
The authors have nothing to disclose.
Мы благодарим М. Дугласа Бенсона за начальные разговоры о вторичной визуализации неба. Мы также признаем Дэвида Кастанеду-Кастелланоса (Leica) и Криса Риекена (Zeiss) за помощь в настройке условий съемки в конфокальной микроскопии. Мы ценим Lynsey Hamilton (Bitplane) за полезные предложения по количественному анализу изображений с использованием программного обеспечения Imaris. Эта работа финансировалась NIH / NIDCR R01 DE025887.
Reagents | |||
DMEM/F12 | Life technology | 11330-032 | |
Fetal Bovine Serum | Life technology | 16000-044 | |
L-glutamine | Life technology | 25030-081 | |
L-Ascorbic acid | Sigma | A4544-100G | |
Pennicillin/Streptomycin | Life technology | 15140-122 | |
Low melting agarose | BioExpress | E-3111-125 | |
35mm glass bottom dish | MatTek | P35G-1.5-10-C | |
Petrolieum Jelly (Vaseline) | Sigma | 16415-1Kg | |
Mice | |||
Keratin14-cre | MGI: J:65294 | Allele = Tg(KRT14-cre)1Amc | |
ROSA26mTmG | MGI: J:124702 | Allele = Gt(ROSA)26Sortm4(ACTB-tdTomato,-EGFP)Luo | |
Lifeact-mRFPruby | MGI: J:164274 | Allele = Tg(CAG-mRuby)#Rows | |
Microscope | |||
White Light SP5 confocal microscope | Leica Microsystems | ||
Cell Observer spinning disk confocal microscope | Zeiss Microscopy |