Summary

Patógenos de transmisión alimentaria proyección utilizando Magneto-fluorescente Nanosensor: Detección rápida de e. Coli O157: H7

Published: September 17, 2017
doi:

Summary

El objetivo general del presente Protocolo es sintetizar funcional nanosensores para el portable, eficiente, y rápida detección de específicamente las bacterias patógenas a través de una combinación de relajación magnética y las modalidades de emisión de fluorescencia.

Abstract

Enterohemorrágica Escherichia coli O157: H7 se ha ligado a ambas transmitidas por el agua y enfermedades transmitidas por los alimentos y sigue siendo una amenaza a pesar de los métodos de investigación de alimentos y agua utilizada en la actualidad. Mientras que los métodos convencionales de detección bacteriana, tales como reacción en cadena de polimerasa (PCR) y análisis enzima-ligado del inmunosorbente (ELISA) detectan específicamente a contaminantes patógenos, requieren preparación de la muestra extensos y largos períodos de espera. Además, estas prácticas exigen instrumentos de laboratorio sofisticado y configuración y deben ser ejecutadas por profesionales capacitados. Aquí, se propone un protocolo para una técnica de diagnóstico más simple que ofrece una combinación única de parámetros magnéticos y fluorescentes en una plataforma basada en nanopartículas. La propuesta nanosensores de magneto-fluorescente multiparamétrico (MFnS) pueden detectar contaminación de e. coli O157: H7 con tan poco como 1 unidad formadora de colonias presente en solución en menos de 1 h. Además, la capacidad de MFnS permanecer altamente funcional en medios complejos tales como leche y agua del lago ha sido verificada. Análisis de especificidad adicional también fueron utilizados para demostrar la capacidad de MFnS para detectar sólo las bacterias objetivo específico, incluso en presencia de especies bacterianas similares. El apareamiento de las modalidades magnéticas y fluorescentes permite la detección y cuantificación de la contaminación por patógenos en una amplia gama de las concentraciones, exhibiendo su alto rendimiento en la detección de contaminación de ambas etapa temprana y tardía. La eficacia, la asequibilidad y la portabilidad de los MFnS hacen un candidato ideal para punto de atención detección de bacterias contaminantes en una amplia gama de ajustes, de reservorios acuáticos a alimentos envasados comercialmente.

Introduction

La ocurrencia persistente de contaminación bacteriana en los alimentos comercialmente producidos y fuentes de agua ha creado la necesidad de plataformas diagnóstico cada vez más rápidas y específicas. 1 , 2 algunos de los más comunes contaminantes bacterianos responsables de contaminación de alimentos y agua son de los géneros Salmonella, Staphylococcus, Listeria, Vibrio, Shigella, Bacillus y Escherichia. 3 , 4 contaminación bacteriana por estos patógenos a menudo resultados en síntomas tales como fiebre, cólera, gastroenteritis y diarrea. 4 contaminación de fuentes de agua a menudo tiene efectos drásticos y nocivos en las comunidades sin acceso a agua suficientemente filtrada y contaminación de los alimentos ha llevado a un gran número de enfermedades y los esfuerzos de recuperación de producto. 5 , 6

Con el fin de reducir la ocurrencia de enfermedades causadas por contaminación bacteriana, ha habido una serie de esfuerzos para desarrollar métodos con que agua y comida pueden eficientemente analizará antes de la venta o consumo. 3 técnicas como PCR,1,7,8,9,10 ELISA,11,(12 ) amplificación isotérmica mediada lazo LÁMPARA),13,14 entre otros,15,16,17,18,19,20,21, 22,23,24 se han utilizado recientemente para la detección de diferentes patógenos. En comparación con bacterias tradicionales métodos de cultivo, estas técnicas son mucho más eficientes en cuanto a la especificidad y el tiempo. Sin embargo, estas técnicas aún batallan con los falsos positivos y negativos, procedimientos complejos y los costos. 1 , 3 , 25 es por este motivo que nanosensores de magneto-fluorescente multiparamétrico (MFnS) se propusieron como un método alternativo para la detección de bacteria.

Estos nanosensores únicamente par juntos relajación magnética y modalidades fluorescentes, lo que permite una plataforma de doble detección rápida y precisa. Utilizando e. coli O157: H7 como un contaminante de la muestra, se demuestra la capacidad de MFnS para detectar tan poco como 1 UFC en minutos. Anticuerpos patógenos específicos se utilizan para aumentar la especificidad, y permite la combinación de modalidades magnéticas y fluorescentes para la detección y cuantificación de contaminantes bacterianos en dos rangos de baja y alta contaminación. 16 en el caso de contaminación bacteriana, los nanosensores que pululan alrededor de las bacterias debido a las capacidades de segmentación de los anticuerpos específicos del patógeno. La unión entre las bacterias y nanosensores magnético limita la interacción entre el núcleo de hierro magnético y los protones de agua circundantes. Esto provoca un aumento en los tiempos de relajación T2, según lo registrado por un relaxometer magnético. Medida que aumenta la concentración de bacterias en solución, los nanosensores dispersan con el aumento del número de bacterias, lo que resulta en valores más bajos de la T2. Por el contrario, emisión de fluorescencia se incrementará en proporción a la concentración de bacterias, debido al mayor número de nanosensores vinculado directamente al patógeno. Centrifugación de las muestras y el aislamiento de los pellets bacterianos, sólo conservará las nanopartículas conectadas directamente a las bacterias, la eliminación de cualquier flotante nanosensores y correlacionar directamente la emisión de fluorescencia con el número de bacterias presentes en la solución. Una representación esquemática de este mecanismo se representa en la figura 1.

Esta plataforma de MFnS ha sido diseñada con proyección del punto de atención en la mente, dando por resultado características portables y de bajo costo. MFnS son estables a temperatura ambiente y sólo son necesarios en concentraciones muy bajas para la precisa detección de contaminantes bacterianos. Además, después de la síntesis, el uso de los MFnS es simple y no requiere el uso de profesionales en el campo. Por último, esta plataforma de diagnóstico permite orientación altamente personalizable, proporcionar un medio por que esta una plataforma puede usarse para detectar patógenos de todo tipo, en muchos entornos diferentes.

Protocol

1 síntesis y funcionalización de nanosensores multi-paramétrico de Magneto-fluorescente (MFnS). Síntesis de óxido de hierro superparamagnético nanopartículas (IONPs) para preparar síntesis IONP, preparar las 3 siguientes soluciones: solución 1: FECLAS 3 0,70 g y FECLAS 2 H 2 O (2 mL), solución 2: NH 4 OH (2,0 mL, 13,4 M) en H 2 O (15 mL) y solución 3: ácido poliacrílico (0,855 g) H 2 O (5 mL). Agregar 90 μl de 2…

Representative Results

El mecanismo de acción de MFnS está representado en la figura 1. El agrupamiento de MFnS alrededor de la superficie de contaminantes bacterianas interfiere con las interacciones entre la magnetic cores de los MFnS y los núcleos de hidrógeno circundante. Como resultado de este agrupamiento, magnética relajación aumentan de valores. A medida que aumenta la concentración de contaminantes bacterianos, agrupamiento reduce, y el cambio en los valores de T2 disminuye. Por lo tanto, la adici?…

Discussion

Este protocolo ha sido diseñado para producir MFnS completamente funcional como simplemente como sea posible. Sin embargo, hay muchos puntos claves en el que alteración del Protocolo puede ser útil, dependiendo de la finalidad del usuario. Por ejemplo, el uso de diferentes anticuerpos permitiría atacar muchos otros patógenos. Además, este Protocolo no se limita a la utilización de anticuerpos como dirigidos a moléculas. Cualquier molécula que tiene afinidad de Unión específicos…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabajo es apoyado por P20GM103418 K INBRE, Kansas soja Comisión (KSC/PSU 1663), ACS PRF 56629-UNI7 y PSU polímero química Inicio fondo todos SS. Agradecemos al camarógrafo de la Universidad, el Sr. Jacob Anselmi, por su destacada labor con el video. También agradecemos al Sr. Roger Heckert y Sra. Katha Heckert por su generoso apoyo para la investigación.

Materials

Ferrous Chloride Tetrahydrate Fisher Scientific I90-500
Ferric Chloride Hexahydrate Fisher Scientific I88-500
Ammonium Hydroxide Fisher Scientific A669S-500
Hydrochloric Acid Fisher Scientific A144S-500
Polyacryllic Acid Sigma-Aldrich 323667-100G
EDC Thermofisher Scientific 22980
NHS Fisher Scientific AC157270250
Anti-E. coli O111 antibody  sera care 5310-0352
Anti-E. coli O157:H7 antibody [P3C6]  Abcam ab75244
DiI Stain Fisher Scientific D282
Nutrient Broth Difco 233000
Freeze-dried E. coli O157:H7 pellet ATCC 700728
Magnetic Relaxomteter  Bruker mq20
Zetasizer Malvern NANO-ZS90
Plate Reader  Tecan Infinite M200 PRO
Magnetic Column  QuadroMACS 130-090-976
Centrifuge Eppendorf 5804 Series
Centrifuge (accuSpin Micro 17) Fisher Scientific 13-100-676
Floor Model Shaking Incubator SHEL LAB SSI5
Analytical Balance Metler Toledo ME104E
Digital Vortex Mixer Fisher Scientific 02-215-370
Open-Air Rocking Shaker Fisher Scientific 02-217-765

References

  1. Law, J. W., Ab Mutalib, N. S., Chan, K. G., Lee, L. H. Rapid methods for the detection of foodborne bacterial pathogens: principles, applications, advantages and limitations. Front Microbiol. 5, 770 (2014).
  2. Pandey, P. K., Kass, P. H., Soupir, M. L., Biswas, S., Singh, V. P. Contamination of water resources by pathogenic bacteria. AMB Express. 4, 51 (2014).
  3. Zhao, X., Lin, C. W., Wang, J., Oh, D. H. Advances in rapid detection methods for foodborne pathogens. J Microbiol Biotechnol. 24 (3), 297-312 (2014).
  4. Heithoff, D. M., et al. Intraspecies variation in the emergence of hyperinfectious bacterial strains in nature. PLoS Pathog. 8 (4), e1002647 (2012).
  5. Ishii, S., Sadowsky, M. J. Escherichia coli in the Environment: Implications for Water Quality and Human Health. Microbes Environ. 23 (2), 101-108 (2008).
  6. Chiou, C. S., Hsu, S. Y., Chiu, S. I., Wang, T. K., Chao, C. S. Vibrio parahaemolyticus serovar O3:K6 as cause of unusually high incidence of food-borne disease outbreaks in Taiwan from 1996 to 1999. J Clin Microbiol. 38 (12), 4621-4625 (2000).
  7. Zhou, G., et al. PCR methods for the rapid detection and identification of four pathogenic Legionella spp. and two Legionella pneumophila subspecies based on the gene amplification of gyrB. Appl Microbiol Biotechnol. 91 (3), 777-787 (2011).
  8. Chen, J., Tang, J., Liu, J., Cai, Z., Bai, X. Development and evaluation of a multiplex PCR for simultaneous detection of five foodborne pathogens. J Appl Microbiol. 112 (4), 823-830 (2012).
  9. LeBlanc, J. J., et al. Switching gears for an influenza pandemic: validation of a duplex reverse transcriptase PCR assay for simultaneous detection and confirmatory identification of pandemic (H1N1) 2009 influenza virus. J Clin Microbiol. 47 (12), 3805-3813 (2009).
  10. Mahony, J. B., Chong, S., Luinstra, K., Petrich, A., Smieja, M. Development of a novel bead-based multiplex PCR assay for combined subtyping and oseltamivir resistance genotyping (H275Y) of seasonal and pandemic H1N1 influenza A viruses. J Clin Virol. 49 (4), 277-282 (2010).
  11. Alvarez, M. M., et al. Specific recognition of influenza A/H1N1/2009 antibodies in human serum: a simple virus-free ELISA method. PLoS One. 5 (4), e10176 (2010).
  12. Huang, C. J., Dostalek, J., Sessitsch, A., Knoll, W. Long-range surface plasmon-enhanced fluorescence spectroscopy biosensor for ultrasensitive detection of E. coli O157:H7. Anal Chem. 83 (3), 674-677 (2011).
  13. Zhang, J., et al. Rapid visual detection of highly pathogenic Streptococcus suis serotype 2 isolates by use of loop-mediated isothermal amplification. J Clin Microbiol. 51 (10), 3250-3256 (2013).
  14. Han, F., Wang, F., Ge, B. Detecting potentially virulent Vibrio vulnificus strains in raw oysters by quantitative loop-mediated isothermal amplification. Appl Environ Microbiol. 77 (8), 2589-2595 (2011).
  15. Wang, J., et al. Rapid detection of pathogenic bacteria and screening of phage-derived peptides using microcantilevers. Anal Chem. 86 (3), 1671-1678 (2014).
  16. Banerjee, T., et al. Multiparametric Magneto-fluorescent Nanosensors for the Ultrasensitive Detection of Escherichia coli O157:H7. ACS Infect Dis. 2 (10), 667-673 (2016).
  17. Shelby, T., et al. Novel magnetic relaxation nanosensors: an unparalleled "spin" on influenza diagnosis. Nanoscale. 8, 19605-19613 (2016).
  18. Bui, M. P., Ahmed, S., Abbas, A. Single-Digit Pathogen and Attomolar Detection with the Naked Eye Using Liposome-Amplified Plasmonic Immunoassay. Nano Lett. 15 (9), 6239-6246 (2015).
  19. Farnleitner, A. H., et al. Rapid enzymatic detection of Escherichia coli contamination in polluted river water. Lett Appl Microbiol. 33 (3), 246-250 (2001).
  20. Huh, Y. S., Lowe, A. J., Strickland, A. D., Batt, C. A., Erickson, D. Surface-enhanced Raman scattering based ligase detection reaction. J Am Chem Soc. 131 (6), 2208-2213 (2009).
  21. Jayamohan, H., et al. Highly sensitive bacteria quantification using immunomagnetic separation and electrochemical detection of guanine-labeled secondary beads. Sensors (Basel). 15 (5), 12034-12052 (2015).
  22. Kaittanis, C., Naser, S. A., Perez, J. M. One-step, nanoparticle-mediated bacterial detection with magnetic relaxation. Nano Lett. 7 (2), 380-383 (2007).
  23. Meeker, D. G., et al. Synergistic Photothermal and Antibiotic Killing of Biofilm-Associated Staphylococcus aureus Using Targeted Antibiotic-Loaded Gold Nanoconstructs. ACS Infect Dis. 2 (4), 241-250 (2016).
  24. Wang, Y., Ye, Z., Si, C., Ying, Y. Subtractive inhibition assay for the detection of E. coli O157:H7 using surface plasmon resonance. Sensors (Basel). 11 (3), 2728-2739 (2011).
  25. Zhao, X., et al. A rapid bioassay for single bacterial cell quantitation using bioconjugated nanoparticles. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (42), 15027-15032 (2004).

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Shelby, T., Sulthana, S., McAfee, J., Banerjee, T., Santra, S. Foodborne Pathogen Screening Using Magneto-fluorescent Nanosensor: Rapid Detection of E. Coli O157:H7. J. Vis. Exp. (127), e55821, doi:10.3791/55821 (2017).

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