Différentes méthodes pour manipuler l’architecture tridimensionnelle en hydrogels à base de protéines sont évaluées ici en ce qui concerne les propriétés du matériau. Les réseaux macroporeux sont fonctionnalisés avec un peptide de la cellule-adhésif et leur faisabilité en culture cellulaire est évaluée à l’aide de deux lignées de cellules de modèle différent.
Les hydrogels sont reconnus comme matière intéressante pour les applications de culture de cellules en raison de leur capacité à fournir des environnements de cellules fortement hydraté. Le domaine des modèles 3D est en hausse en raison de la ressemblance potentielle de ces matières à la matrice extracellulaire naturelle. Hydrogels à base de protéines sont particulièrement prometteuses car elles peuvent facilement être fonctionnalisés et peuvent atteindre les structures définies avec des propriétés physicochimiques réglables. Cependant, la production de modèles 3D macroporeux pour applications de culture de cellules à l’aide de matériaux naturels est souvent limitée par leurs caractéristiques mécaniques plus faibles comparés à ceux des matériaux synthétiques. Ici, différentes méthodes ont été évaluées pour produire macroporeux l’albumine sérique bovine (BSA)-systèmes d’hydrogel, avec la taille des pores réglable de l’ordre de 10 à 70 µm en rayon. En outre, une méthode pour générer des chaînes dans ce matériau à base de protéines qui sont plusieurs centaines microns de longs a été créée. Les différentes méthodes pour produire des pores, ainsi que l’influence de la taille des pores sur propriétés matérielles telles que gonflement ratio, pH, stabilité de la température et le comportement de la dégradation enzymatique, ont été analysés. La taille des pores ont été étudiée dans l’état natif, gonflée de l’hydrogel utilisant laser confocal, microscopie à balayage. La possibilité pour les applications de culture cellulaire a été évaluée en utilisant une cellule adhésive RGD peptide modification des protéines et deux lignées de cellules de modèle : cellules cancéreuses humaines (A549) et adenocarcinomic alvéolaires basale des cellules épithéliales humaines (MCF7).
Les hydrogels sont des matériaux qui forment des réseaux insolubles 3D capable de se lier de grandes quantités d’eau. Ces matières peuvent fournir d’excellentes conditions environnementales pour les cellules vivantes. Actuellement, il y un intérêt croissant dans la génération de structures tridimensionnelles hydrogel et dans le développement de procédés d’adapter leurs propriétés chimiques et physiques. Une fois que ce résultat est obtenu, un modèle pour la croissance des cellules et la manipulation du comportement cellulaire peut être généré1,2,3,4. Ces structures 3D non seulement de créer un environnement plus naturel et réaliste que les approches classiques de deux dimensions, mais ils également révéler de nouvelles possibilités pour la croissance des cellules souches ou tumeur modèles5. Différents matériaux possèdent un éventail de caractéristiques qui dépendent principalement de la taille des pores du gel6. Les pores jouent un rôle crucial dans les applications de culture de cellules, génie tissulaire et la croissance dirigée de cellules souches. Par exemple, oxygène et nutriments diffusent à travers la matrice, et une quantité adéquate doit être en mesure d’atteindre les cellules de7. En revanche, les métabolites nuisibles doivent être retirés aussi vite que possible et suffisamment d’espace pour la croissance cellulaire doit être disponible7. Par conséquent, les propriétés du matériau et donc la taille des pores, influencent fortement les applications potentielles, avantage et, éventuellement, de la matrice. Selon les propriétés des matériaux, des processus différents-la croissance des cellules peuvent se produire dans une culture cellulaire 3D, y compris la formation des structures neuronales ; la croissance et la différenciation des cellules de la peau ou des os ; et la croissance dirigée spécial de lignées de cellules, comme les hépatocytes ou fibroblastes2,3,8,9,10,11. Un autre point crucial qui influent sur l’application éventuelle d’un matériau est sa stabilité à des stimuli externes12. Par exemple, l’hydrogel doit maintenir son intégrité mécanique dans les milieux de culture cellulaire ou le corps humain.
Ces dernières années, la recherche sur 3D cell culture hydrogels intensifiées, et de nombreuses études ont été menées pour résoudre les architectures 3D des systèmes13. Hydrogels composées d’éléments chimiquement synthétisés sont étudiées plus souvent parce qu’ils peuvent être facilement synthétisés et chimiquement modifiées et qu’ils présentent une haute stabilité (voir Zhu et al., 2011 pour un examen)5. Cependant, les protéines ont de nombreuses propriétés bénéfiques : comme ce que l’on appelle « polymères de précision, » ils sont biocompatibles ; ils ont une longueur définie ; ils sont relativement faciles à modifier ; et ils ont un grand nombre de cibles sites14,15. À cet égard, des structures très spécifiques et innovantes peuvent être générés pour application dans de nombreux domaines. Dans cette étude, un hydrogel à base de protéines16 a été utilisé pour démontrer l’aptitude des méthodes bien établies pour influencer l’architecture 3D de la matière. En outre, la capacité d’et l’applicabilité à la génération de pore a été également étudiée.
Il existe beaucoup de techniques différentes modifier des structures 3D, y compris les méthodes simples et des techniques sophistiquées, hautement spécialisés de différents domaines de la science des matériaux. Une technique très répandue est l’utilisation d’électrofilage pour générer des structures bien définies,17. Fibres chargées sont tirés d’une solution par un champ électrique et puis se solidifient au contact de l’oxygène. De cette façon, les fibres de l’ordre de quelques nanomètres à quelques microns peuvent être produites. Autres techniques pour régler la taille, la structure et la distribution des pores dans la matrice sont doux lithographie, photolithographie, focalisation hydrodynamique, electro-pulvérisation et bio-impression18,19,20. Un inconvénient important de ces techniques est leur dépendance envers l’équipement spécifique et coûteux et des produits chimiques spéciaux ou des matériaux. En outre, expérience avec ces techniques n’est souvent pas directement transférable aux matériaux à base de protéine, et la plupart des produits chimiques et méthodes ne sont pas portable compatible.
En revanche, beaucoup de techniques ne comptez pas sur un équipement spécial, ce qui les rend plus facile et moins coûteux à appliquer et à reproduire. Une méthode répandue pour la manipulation de la structure est coulée solvant21,22,23. Les particules sont ajoutés avant la réaction de polymérisation et sont distribués de façon homogène pour saturer la solution. Après la polymérisation, une modification des conditions, comme une dilution ou une modification de pH, mène à la solvatation des particules, tandis que les pores restent dans le matériau. Les produits chimiques utilisés dans ces techniques, comme le sel, sucre, paraffine, gélatine et la craie, sont bon marché et facilement disponible. En lyophilisation, hydrogels gonflés sont gelés. La sublimation subséquente des phases liquides sous un vide est ensuite effectué23,24,25. Sublimation de l’eau du réseau est assez douce pour maintenir les structures 3D spécifiques du matériau. En gaz écumant, une solution est transmis en continu avec un gaz alors que la polymérisation se déroule, en laissant les pores dans le gel de21. La taille et la distribution des pores est réglable selon le flux de gaz.
Pour former l’hydrogel de protéine, BSA réagit avec le chlorure de tétrakis (hydroxyméthyl) phosphonium (THPC) dans une réaction de Mannich-type afin de permettre la formation de liaisons covalentes entre les amines primaires et les groupes hydroxyles de la molécule de quatre bras linker26. Intermédiaires nuisibles possibles sont éliminés par lavage excessif du matériel après que la réaction se produit.
Cette étude démontre la possibilité de traiter un matériau à base de BSA avec différentes techniques pour manipuler et adapter la taille des pores. Chacune des techniques peut être utilisé dans n’importe quel laboratoire dans le monde entier, car aucun équipement spécial n’est nécessaire. En outre, différents paramètres, tels que taux de gonflement, dégradabilité enzymatique, stabilité de pH et sensibilité à la température, examinées et comparées entre elles, en particulier quant à l’influence des différentes techniques sur la génération des architectures 3D. Enfin, les matériaux ont été fonctionnalisés avec des peptides de cellule-adhésif pour examiner l’application possible du matériel pour la culture cellulaire. Deux lignées de cellules de différents modèles ont été utilisées : A549 et MCF7.
The production of macroporous matrices can be beneficial to many different fields. It has high technical and economic potential due to the defined structure of the hydrogel and the ability to control and tune specific material properties. However, the introduction of supramolecular structural elements, such as pores or channels, to a 3D template might influence the overall properties of a material, such as the swelling ratio or the stiffness. This can result in the undesired decomposition, degradation, or breakdown of th…
The authors have nothing to disclose.
Les auteurs tiens à remercier la Fondation Baden-Württemberg pour leur soutien financier dans le cadre de la « Synthèse de matériaux Bioinspired » (Biotextiles-14).
Phosphate Buffered Saline (PBS) | Thermo Fisher Scientific | 10010023 | |
Dulbecco’s modified Eagle’s medium (high glucose) | Life Technologies / Thermo Fisher | 11140-050 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | Life Technologies / Thermo Fisher | 10270-106 | |
Penicillin-Streptomycin | Life Technologies / Thermo Fisher | 15140122 | |
MEM Nonessential Amino Acid Solution | Sigma Aldrich | M7145-100ML | |
Trypsin EDTA 0.05 % Phenol Red | Thermo Fisher Scientific | 25300062 | |
Ethanol 99.8 %, vergällt | Ölfabrik Schmidt | 2133 | |
NaCl | Carl Roth | 9265.1 | |
Albumin Fraction V | Carl Roth | 3854.2 | |
THPC | Sigma Aldrich | 404861-100ML | Toxic |
0.1 % Triton X 100 | Sigma Aldrich | X100-100ML | Slightly toxic |
Phalloidin-rhodamine | Life Technologies / Thermo Fisher | R415 | |
3.7 % Formaldehyde | Life Technologies / Thermo Fisher | F8775-25ML | Toxic |
Rhodamine B | Sigma Aldrich | 81-88-9 | |
Filtropur S 0.2, | Sarsted Ag und Co. | 2 83.1826.001 | |
µ slide 8 well | Ibidi GmbH | 80826 | |
KCSSGKSRGDS peptide | UPEP Ulm | Custom sysnthesis | |
Ethanol 99.8 %, vergällt | Carl Roth | K928.5 | |
Falcon 5 ml Polysterene Round-Bottom Tube | Sarsted Ag und Co. | 62.547.254 | |
Tubes 50 ml | Sarsted Ag und Co. | 62.547.254 | |
Tubes 1,5 ml | Sarsted Ag und Co. | 72,690,001 | |
Tubes 2 ml | Sarsted Ag und Co. | 72,691 | |
CELL CULTURE MICROPLATE, 96 WELL, PS, F-BOTTOM | Greiner | 655073 | |
FreezeDryer Epsilon 1-6D, | Christ, Osterode am Harz, Germany | ||
Confocal Laser Scanning Microscope | Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany | ||
Zen Software Version 2012 Sp1, black edition, 407 version 8,1,0,484 | Carl Zeiss AG, Oberkochen, Germany | ||
GSA Imaga Analyzer Software, GSA Image Analyzer, GSA, Version 419 3.8.7 | GSA GmbH |