Summary

Un metodo per testare l 'effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento in<em> Drosophila melanogaster</em

Published: July 17, 2017
doi:

Summary

Noi dimostriamo un dosaggio per analizzare i suggerimenti ambientali e genetici che influenzano il comportamento di accoppiamento nella mosca di frutta Drosophila melanogaster .

Abstract

L'azionamento sessuale di un individuo è influenzato dal genotipo, dall'esperienza e dalle condizioni ambientali. Come questi fattori interagiscono per modulare i comportamenti sessuali rimane poco compreso. In Drosophila melanogaster , i segnali ambientali, come la disponibilità di cibo, influenzano l'attività di accoppiamento che offre un sistema tracciato per indagare i meccanismi che modulano il comportamento sessuale. In D. melanogaster , i segnali ambientali vengono spesso rilevati attraverso i sistemi gassosi e olfattivi chemosensoriali. Qui espostiamo un metodo per testare l'effetto dei segnali chimici ambientali sul comportamento dell'accoppiamento. Il dosaggio è costituito da una piccola arena di accoppiamento contenente un mezzo alimentare e una coppia di accoppiamenti. La frequenza di accoppiamento per ogni coppia viene monitorata continuamente per 24 ore. Qui esprimiamo l'applicabilità di questo test per testare i composti ambientali da una sorgente esterna attraverso un sistema di aria compressa e la manipolazione dei componenti ambientali direttamente nell'arena di accoppiamento. L'uSe di un sistema di aria compressa è particolarmente utile per testare l'effetto di composti molto volatili, mentre manipolazione di componenti direttamente nell'arena di accoppiamento può essere utile per accertare la presenza di un composto. Questo saggio può essere adattato per rispondere a domande sull'influenza delle indicazioni genetiche e ambientali sul comportamento e sulla fecondità di accoppiamento e su altri comportamenti riproduttivi maschi e femmine.

Introduction

I comportamenti riproduttivi hanno generalmente elevati costi energetici, soprattutto per le femmine, che producono gameti più grandi rispetto ai maschi e devono scegliere con cura le condizioni per aumentare la loro prole in via di sviluppo. A causa del costo energetico, non sorprende che la riproduzione sia connessa alle condizioni nutrizionali. Questo è vero nella maggior parte, se non in tutti, animali compresi i mammiferi, la cui pubertà può essere ritardata dalla malnutrizione e il cui comportamento sessuale può essere influenzato negativamente dalla restrizione alimentare 1 .

La riproduzione dell'organismo del modello genetico Drosophila melanogaster è anche influenzata da condizioni nutrizionali. La corte dei maschi a livello più elevato in presenza di volatili alimentari 2 e le femmine sono più ricettive sessualmente in presenza di lieviti, un importante nutrimento per la produzione di uova e la sopravvivenza dei figli 3 , 4 , 5 . QuestoLa risposta riproduttiva evoluzionistica riposta all'alimentazione offre l'opportunità di studiare meccanismi che connettono la disponibilità di cibo ambientale alla riproduzione sessuale in un organismo geneticamente tractable e time-efficient. Infatti, il lavoro in D. melanogaster ha implicato il percorso dell'insulina come un importante regolatore della connessione tra il comportamento alimentare e l'accoppiamento 6 . Ha anche dimostrato che l'atto di accoppiamento modifica la preferenza alimentare delle femmine nonché i neuroni chemiosensori associati 7 , 8 , 9 .

È chiaro che le indicazioni alimentari influenzano i comportamenti riproduttivi in D. melanogaster . Questi effetti sembrano interessare principalmente le femmine, in particolare quelle che hanno già maturato 5 . Tuttavia, per testare questi effetti acuti delle condizioni ambientali, il dosaggio classico utilizzato per il comportamento femminile di accoppiamento potrebbeNon essere molto adatto a causa delle lunghe interruzioni tra gli episodi di accoppiamento. Nel classico test di rimozione, una femmina vergine prima si collega con un maschio e viene immediatamente isolata e presentata con un nuovo maschio 24-48 h più tardi. Questo saggio classico è stato usato con grande successo per identificare componenti dell'eiaculato maschile che modificano il comportamento femminile e la risposta femminile 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 . Il test di accoppiamento continuo dimostrato qui è quindi un'aggiunta a saggi classici di accoppiamento che possono essere utilizzati per studiare l'effetto acuto delle condizioni ambientali sui comportamenti riproduttivi.

Utilizzando il dosaggio continuo per il comportamento di accoppiamento che viene spiegato qui, abbiamo precedentemente mostrato che una coppia di mosche esposte al lievito rimateràSempre in un periodo di osservazione di 24 ore 5 , 19 , 20 , 21 , mentre mosche non esposte al cibo rimarrà solo una volta 5 . Questa scoperta può essere sconcertante alla luce di una grande parte della letteratura D. melanogaster che indica che le femmine non si ritraggono per diversi giorni dopo un accoppiamento iniziale (riveduto nei riferimenti 10 , 11 ). Tuttavia, questa discrepanza può essere facilmente spiegata da condizioni di analisi, in cui una femmina è isolata per uno a diversi giorni prima di fornire una nuova opportunità di accoppiamento. Se la coppia non si accoppia in questo periodo di osservazione, la donna è caratterizzata come non ricettivo. Inoltre, la frequenza di accoppiamento elevato non dovrebbe sorprendere, dato che i dati provenienti da mosche selvatiche mostrano che le femmine contengono spermatozoi da 4 a 6 maschi nei loro organi di stoccaggio; Così inDicating che le femmine naturalmente rimane diverse volte 22 , 23 .

Qui dimostriamo l'uso di questo saggio di accoppiamento continuo per scoprire come le mosche raccolgono e combinano informazioni sulle condizioni ambientali per modulare la frequenza di accoppiamento. Questo test consente di testare un numero relativamente elevato di coppie di maternità per studi genetici e di verificare l'influenza dei segnali ambientali volatili e non volatili. Il dosaggio viene tipicamente eseguito per 24 h, ma può essere esteso a 48 h, consentendo la sperimentazione di segnali ambientali di ciclo come il ciclo scuro (LD). Ci dimostriamo questo test verificando l'influenza dei segnali volatili da una coltura di lieviti all'interno di un sistema di aria pressurata in combinazione con la disponibilità di nutrienti di lievito non volatili nel substrato alimentare.

L'impianto a pressione pressurizzata pompava continuamente segnali volatili in un'arena di accoppiamento che contengonoSubstrato alimentare e una coppia di test (il cui comportamento di accoppiamento è monitorato). Per determinare ulteriormente le specificità attraverso le quali il lievito influenza l'accoppiamento, si prova un importante composto volatile di lievito, cioè acido acetico 24 , in combinazione con un contenuto di amminoacidi che corrisponde a quello del lievito nel substrato alimentare, sotto forma di peptone (amino Acidi derivati ​​dalla digestione enzimatica delle proteine ​​animali). Insieme questi esperimenti dimostrano come l'effetto dei segnali ambientali sul comportamento di accoppiamento di D. melanogaster possa essere testato con questo saggio.

Protocol

1. Contenitore di accoppiamento controllato dall'ambiente Per garantire un'area di prova controllata e facile da pulire, installare un mobile da cucina in acciaio inox di 120 cm x 64 cm x 85 cm come illustrato nella figura 1A. Praticare un foro sul retro dell'armadio appena sotto il soffitto e quattro set di quattro fori nei lati, ognuno con un diametro di 2 cm. Praticare i primi due set di quattro fori, su ciascun lato della scatola ad un'altezza di 7 cm dal fondo de…

Representative Results

Utilizzando questo test continuo, il comportamento di accoppiamento e la frequenza di accoppiamento in specifiche possono essere determinati in condizioni ambientali sperimentali. Per controllare le condizioni ambientali, abbiamo trasformato un armadio in acciaio inox in una zona di prova, con una propria sorgente luminosa e diffusione che assicura un'elevata abbondanza di luce e una minima quantità di riflessi dalla parte superiore delle arene di accoppiamento ( figura 1A</…

Discussion

Questo protocollo descrive un test per verificare il comportamento di accoppiamento per 24 ore mentre controlla continuamente i segnali ambientali che una coppia di accoppiamenti è ipotizzata per utilizzare per determinare la frequenza di accoppiamento. È possibile aumentare la frequenza di accoppiamento in risposta all'aria del lievito erogata attraverso un sistema di aria compressa quando il mezzo contiene anche il lievito ( Figura 2B ). Inoltre, una risposta simile in frequenza di accoppiamento…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ringraziamo il Bloomington Drosophila Stock Center per gli stock fly; C. Gahr, JT Alkema e S. van Hasselt per il loro primo tentativo di sviluppare il dosaggio dell'aria sotto pressione; Jasper Bosman per il consiglio sulla coltivazione del lievito; E Rezza Azanchi e Joel Levine per sviluppare in origine il monitoraggio del comportamento di accoppiamento Drosophila . JA Gorter è stato sostenuto da una borsa di studio della Neuroscience Research School di BCN / NWO. Questo lavoro è stato sostenuto in parte dall'organizzazione olandese per la ricerca scientifica (NWO) (riferimento: 821.02.020) a JC Billeter.

Materials

Cabinet
Stainless steel kitchen cabinet Horecaworld 7412.0105
White LEDs Lucky Light ll-583wc2c-001 Cold white, 20 mAmp and 2 V
Red LEDs Lucky Ligt ll-583vc2c-v1-4da Wavelength between 625 nm, 20 mAmp and 6 V
Resistor Royal Ohm CFR0W4J0561A50 560 ohm, 0.25 W, 250 V and 5 % tolerance
Smartphone light meter app Patrick Giudicelli Light/Lux Meter FREE, version 1.1.1
Power timer Alecto TS-121
Metal brackets Sharp angle 5 by 5 mm,  2 x 5450 and 1 x 1100 mm long
Frosted glass plate 1190 x 545 x 5 mm
Filter paper sheets LEE filters 220 White frost
Small fan Nanoxia Deep silence 4260285292828 80 mm Ultra-Quiet PC Fan, 1200 RPM
Big fan Nanoxia Deep silence 4260285292910 120 mm Ultra-Quiet PC Fan, 650-1500 RPM
Webcam camera Logitech 950270 B910 HD WEBCAM OEM, Angle: 78-degree, resolution: 5-million-pixel  
Camera software DeskShare Security monitor pro
Name Company Catalog Number Comments
Fly rearing
Fly rearing bottles Flystuff 32-130 6oz Drosophila stock bottle
Flypad Flystuff 59-114
Wild-type flies Canton-S
Fly rearing vials Dominique Dutscher 789008 Drosophila tubes narrow 25×95 mm
Incubator Sanyo MIR-154
Magnetic hot plate Heidolph 505-20000-00 MR Hei-Standard
Agar Caldic Ingredients B.V. 010001.26.0
Glucose Gezond&wel 1019155 Dextrose/Druivensuiker
Sucrose Van Gilse Granulated sugar
Cornmeal Flystuff 62-100
Wheat germ Gezond&wel 1017683
Soy flour Flystuff 62-115
Molasses Flystuff 62-117
Active dry yeast Red Star
Tegosept Flystuff 20-258 100%
Peptone (bacto) BD 211677
Acetic Acid Merck 1000631000 Glacial, 100%
Small petridish Greiner bio-one 627102 35 x 10 mm with vents
Paraffin film Bemis NA Parafilm
Name Company Catalog Number Comments
Yeast and pressurised air set-up
Big petridish Gosselin BP140-01 140 x 20.6 mm
Ultrapure water Millipore corporation MiliQ
Yeast extract BD 212750
Agar (pure) BD 214530 bacto
Glucose (0(+)-glucose monohydrate)  Merck 18270000004
Open caps Schott 29 240 28  GL45
Silicone septum VWR 548-0662
Barbed bulkhead fittings Nalgene 6149-0002
Large PVC tubing diameter: outer 1.2 cm and inner 0.9 cm
Small PVC tubing diameters: outer 0.8 cm and inner 0.5 cm
15 ml tube Falcon
Aquarium pump Sera precision Sera air 110 plus, AC 220-240 V, 50/60 Hz, 3 W and pressure >100 mbar
Activated charcoal Superfish A8040400 Norit activated carbon
Disposible filter unit Whatman 10462100
Serological pipettes VWR 612-1600
Syringe BD Plastipak 300013
Hot glue Pattex
Syringe filter Whatman FP 30/pore size 0.45 mm CA-S
Name Company Catalog Number Comments
Analysis
Statistics software R lme4 package

References

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Cite This Article
Gorter, J. A., Billeter, J. A Method to Test the Effect of Environmental Cues on Mating Behavior in Drosophila melanogaster. J. Vis. Exp. (125), e55690, doi:10.3791/55690 (2017).

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