Summary

Hızla Nötrofil Kemotaksis Analizinde Doğrudan Bir Damla Kan Alınacak Bütünleşik Çip Yöntemi

Published: June 23, 2017
doi:

Summary

Bu makale, tam kandan alınan çipte nötrofil izolasyonunu ve kemotaks testini tek bir mikroakışkan yonga üzerine entegre ederek hızlı bir nötrofıl kemotaksis tahlilini gerçekleştirmek için ayrıntılı bir yöntem sunmaktadır.

Abstract

Nötrofil göçü ve kemotaksis, vücudumuzun bağışıklık sistemi için kritik öneme sahiptir. Mikroakışkan cihazlar, gerçek zamanlı görselleştirme, kimyasal konsantrasyon gradyanı üretiminin hassas kontrolü ve reaktif ve numune tüketiminin azaltılması gibi avantajlarından ötürü nötrofil göçünü ve kemotaksiyi araştırmak için giderek daha fazla kullanılmaktadır. Son zamanlarda, doğrudan doğruya kandan, mikroakışkan araştırmacılar tarafından entegre ve kolaylıkla çalıştırılan mikroakışkan kemotaks analizi sistemlerine yönelik büyüyen bir çaba gösterildi. Bu yönde, nötrofillerin manyetik negatif arıtımını ve küçük kan hacmi numunelerindeki kemotaksis tahlilini bütünleştirmek için ilk all-on-chip yöntemi geliştirildi. Bu yeni yöntem, 25 dakika içinde hızlı numune-sonuç nötrofil kemotaksisi testine izin verir. Bu yazıda, sorun giderme stratejileri üzerine bir tartışma ile bu all-on-chip chemotaxis tahlilinin detaylı inşası, işletimi ve veri analizi yöntemi sunulmaktadır.Tations ve gelecekteki yönergeler. Tanımlanmış bir kemoatraktan, N -Formyl-Met-Leu-Phe (fMLP) ve kronik obstrüktif akciğer hastalığı (KOAH) hastasından alınan balgamın bu all-on-chip yöntemini kullanarak test eden nötrofil kemotaksis testinin temsilci sonuçları gösterilmiştir. Bu yöntem birçok hücre göçüyle ilgili araştırmalar ve klinik uygulamalar için geçerlidir.

Introduction

Kemotaksis, çözünür kimyasal konsantrasyon gradiyentine yönlendirilmiş bir hücre migrasyon süreci, bağışıklık yanıtı 1 , 2 , 3 , doku gelişimi 4 ve kanser metastazı 5 dahil olmak üzere birçok biyolojik proseste kritik rol oynar. Nötrofiller, en bol beyaz kan hücresi altkümesidir ve vücudun doğal konakçı savunma işlevlerinin sağlanmasında, ayrıca adaptif bağışıklık yanıtlarının düzenlenmesinde 6 , 7 önemli rol oynamaktadır. Nötrofiller, bu hareketli bağışıklık hücrelerinin hem patojenden türetilen kemoatraktanlara ( örn ., FMLP) ve hem de konaktan türetilen kemoatraktanlara ( örn ., Interlökin-8) karşı kemotaksis 8'e cevap verebilmelerini sağlayan oldukça düzenlenmiş kemotaktik makinelerle donatılmıştır. Nötrofil göçü ve kemotaksi çeşitli fizyolojik sorunlara aracılık ederVe inflamasyon ve kanserler 1 , 9 gibi hastalıklar. Böylece, nötrofil kemotaksisinin doğru olarak değerlendirilmesi nötrofil biyolojisi ve ilişkili hastalıkların çalışılması için önemli bir işlevsel okuma sağlar.

Yaygın olarak kullanılan kemotaksis tahlilleriyle ( örn., Transwell assay 10 ) karşılaştırıldığında, mikro akışkan cihazlar, hassas kontrol edilen kimyasal gradyan oluşumu ve minyatürleştirme sayesinde, hücre göçü ve kemotaksisin kantitatif değerlendirmesi için büyük bir vaat göstermektedir. 11 , 12 , 13 . Son yirmi yılda, farklı biyolojik hücre tiplerinin, özellikle de nötrofillerin kemotaksisini incelemek için çeşitli mikroakışkan cihazlar geliştirildi. Spatiyotik olarak kompleks che'de nötrofil göçü karakterize etmek için önemli çaba sarf edildi Mikroakışkan cihazlarda 14 , 15 yapılandırılmış olan mical gradyanlar. Nötrofiller tarafından mikroakışkan cihazlar 16 kullanılarak yönsel karar verme eğitimi için ilginç stratejiler geliştirildi. Biyolojik yönelimli araştırmanın yanı sıra, mikroakışkan cihazların uygulamaları hastalığın değerlendirilmesi için klinik örneklerin test edilmesi için genişletildi 17 , 18 , 19 . Bununla birlikte, birçok mikroakışkan cihazın kullanımı uzmanlaşmış araştırma laboratuvarlarıyla sınırlıdır ve büyük miktarda kan numunesinden uzun süre nötrofil izolasyonu gerektirir. Bu nedenle, hızlı bir şekilde nötrofil kemotaksis analizi için entegre mikroakışkan cihazlar geliştiren büyümekte olan bir eğilim, tam damla bir damla 20 , 21 , 22 ,Ef "> 23 , 24 .

Bu yönde, manyetik negatif nötrofil saflaştırma ve takip eden kemotaksis analizini tek bir mikroakışkan cihaz üzerinde bütünleştiren all-on-chip metodu geliştirildi. Bu all-on-chip yöntemi aşağıdaki yeni özelliklere sahiptir: 1) nötrofilleri yapışkan tabanlı hücre yakalama veya hücre boyutuna dayanan filtreleme 20 , 22 ile kandan izole eden önceki çipli stratejilerin aksine, bu yeni yöntem, Saflık, nötrofillerin küçük hacimlerde tam kandaki manyetik ayrımının yanı sıra kemoatraktan uyarımı üzerine kemotaksis ölçümü; 2) hücre yerleştirme yapısı nötrofillerin başlangıç ​​konumlarını kimyasal gradyan kanalına yakınlaştırmaya yardımcı olur ve tek hücre izlemesi olmaksızın basit kemotaks analizi yapılmasına izin verir; 3) nötrofil izolasyonu ve kemoterapiEksen tayini, deneysel adımlar arasında herhangi bir kesinti olmadığında, 25 dakika içinde hızlı örnek-sonuç kemotaksis analizine olanak tanır.

Bu yazı, all-on-chip chemotaxis testinin yapımı, çalışması ve veri analizi yöntemi için ayrıntılı bir protokol sunmaktadır. Bu makale, bilinen bir rekombinant kemoatraktan ve kompleks kemotaktik numuneleri hastalardan test ederek nötrofil kemotaksisi gerçekleştirmek için gelişmiş yöntemin etkin kullanımını ve bunu takiben sorun giderme stratejileri, sınırlamaları ve gelecekteki yönergeler üzerine bir tartışma ortaya koymaktadır.

Protocol

Tüm insan numunesi toplama protokolleri, Winnipeg Manitoba Üniversitesi'nde Ortak Fakülte Araştırma Etik Kurulu tarafından onaylandı. 1. Mikroakışkan Cihaz Üretimi ( Şekil 1A ) Şeffaflık maskesi tasarlayın ve yazdırın. Aygıtı daha önce ayrıntılı olarak tasarlayın 25 . Bkz. Şekil 1A . NOT: Cihaz iki kat içerir. İlk katman (4 μm yüksekl…

Representative Results

Nötrofiller mikroflüidik aygıta doğrudan tam damla bir damla seçilir. İzole edilmiş nötrofillerin saflığı çip üzerinde Giemsa boyaması ile doğrulandı ve sonuçlar nötrofillerin tipik halka şeklindeki ve lob şeklindeki çekirdeklerini gösterdi ( Şekil 2A ) 25 . Bu, küçük bir hacimdeki tüm kandan yüksek saflıkta etkili bir çipte nötrofil izolasyonu olduğunu gösterir. Ayrıca, yerleştirme yapısı, kimyasa…

Discussion

Bu yazıda, doğrudan tek bir mikroakışkan yonga üzerinde kemotaksis testi ile tam kandan nötrofilleri doğrudan izole etmek için ayrıntılı bir protokol açıklanmıştır. Bu yöntem, kolay çalışması, yüksek saflıktaki nötrofillerin negatif seçimi, hızlı numuneden sonuç toplayan kemotaks testi, indirgenmiş reaktifler ve numune tüketimi ve doğru hücre göç verileri analizi için yararlı özellikler sunar. Kaba bir tahmini olarak, giren tam kan örneğindeki nötrofillerin en az% 25'i aygıtt…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Bu çalışma kısmen Kanada Doğal Bilimler ve Mühendislik Araştırma Konseyi (NSERC) ve Kanada Sağlık Araştırmaları Enstitülerinden (CIHR) hibeler tarafından desteklenmektedir. Winnipeg'daki Victoria Genel Hastanesi'ndeki Uygulamalı Araştırma ve Eğitim Klinik Enstitüsüne ve Winnipeg'taki Seven Oaks Genel Hastanesine, insan deneklerinden klinik örnekleri yönettikleri için teşekkür ediyoruz. Tahlil operasyon stratejileri hakkında yararlı tartışmalar için Dr. Hagit Peretz-Soroka'ya teşekkür ederiz. Çekimler sürecine cömertçe destek verdikleri için Waterloo Üniversitesi'nden Profesör Carolyn Ren ve Dr. Xiaoming (Cody) Chen'e teşekkür ediyoruz.

Materials

Device fabrication
Mask aligner ABM N/A
Spinner Solitec 5000
Hotplate VWR 11301-022
Plasma cleaner Harrick Plasma PDC-001
Vacuum dessicator Fisher Scientific 08-594-15A
Digital scale Ohaus CS200
SU-8 2000 thinner Microchem SU-8 2000
SU-8 2025 photoresist Microchem SU-8 2025
SU-8 developer Microchem SU-8 developer
Si wafer Silicon, Inc LG2065
isopropyl alcohol Fisher Scientific A416-4
(tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl) trichlorosilane Gelest 78560-45-9
Polydimethylsiloxane
(PDMS)
Ellsworth Adhesives 2065622
Petri Dish Fisher Scientific FB0875714
Glass slides Fisher Scientific 12-544-4
Cutting pad N/A N/A Custom-made
Punchers N/A N/A Custom-made
Name Source Catalog Number Comments
On-chip cell isolation and chemotaxis assay
RPMI 1640 Fisher Scientific SH3025502
DPBS Fisher Scientific SH3002802
Bovine serum albumin
(BSA)
Sigma-Aldrich SH3057402
Fibronectin VWR CACB356008
fMLP Sigma-Aldrich F3506-10MG
Magnetic disks Indigo Instruments 44202-1 5 mm in diameter,
1 mm thick
FITC-Dextran Sigma-Aldrich FD10S
Rhodamine
Sigma-Aldrich
R4127-5G
Giemsa stain solution Rowley Biochemical Inc. G-472-1-8OZ
EasySep Direct Human
Neutrophil Isolation
Kit
STEMCELL
Technologies Inc
19666
Dithiothreitol Sigma-Aldrich D0632
Nikon Ti-U inverted fluorescent microscope Nikon Ti-U
Microscope environmental chamber. InVivo Scientific N/A
CCD camera Nikon DS-Fi1

References

  1. Kolaczkowska, E., Kubes, P. Neutrophil recruitment and function in health and inflammation. Nat Rev Immunol. 13 (13), 159-175 (2013).
  2. Luster, A. D., Alon, R., von Andrian, U. H. Immune cell migration in inflammation: present and future therapeutic targets. Nat Immunol. 6 (12), 1182-1190 (2005).
  3. Griffith, J. W., Luster, A. D. Targeting cells in motion: migrating toward improved therapies. Eur. J. Immunol. 43 (6), 1430-1435 (2013).
  4. Laird, D. J., von Andrian, U. H., Wagers, A. J. Stem cell trafficking in tissue development, growth, and disease. Cell. 132 (4), 612-630 (2008).
  5. Condeelis, J., Segall, J. E. Intravital imaging of cell movement in tumours. Nat Rev Cancer. 3 (12), 921-930 (2003).
  6. Kruger, P., et al. Neutrophils: between host defence, immune modulation, and tissue injury. PLoS Pathog. 11 (3), e1004651 (2015).
  7. Mócsai, A. Diverse novel functions of neutrophils in immunity, inflammation, and beyond. J Exp Med. 210 (7), 1283-1299 (2013).
  8. Foxman, E. F., Campbell, J. J., Butcher, E. C. Multistep navigation and the combinatorial control of leukocyte chemotaxis. J Cell Biol. 139 (7), 1349-1360 (1997).
  9. Tazzyman, S., Niaz, H., Murdoch, C. Neutrophil-mediated tumour angiogenesis: subversion of immune responses to promote tumour growth. Semin Cancer Biol. 23 (3), 149-158 (2013).
  10. Boyden, S. The chemotactic effect of mixtures of antibody and antigen on polymorphonuclear leucocytes. J Exp Med. 115 (3), 453-466 (1962).
  11. Wu, J., Wu, X., Lin, F. Recent developments in microfluidics-based chemotaxis studies. Lab Chip. 13 (13), 2484-2499 (2013).
  12. Sackmann, E. K., Fulton, A. L., Beebe, D. J. The present and future role of microfluidics in biomedical research. Nature. 507 (7491), 181-189 (2014).
  13. Kim, S., Kim, H. J., Jeon, N. L. Biological applications of microfluidic gradient devices. Integr Biol. 2 (11-12), 584-603 (2010).
  14. Irimia, D., et al. Microfluidic system for measuring neutrophil migratory responses to fast switches of chemical gradients. Lab Chip. 6 (2), 191-198 (2006).
  15. Lin, F., et al. Neutrophil migration in opposing chemoattractant gradients using microfluidic chemotaxis devices. Ann Biomed Eng. 33 (4), 475-482 (2005).
  16. Ambravaneswaran, V., Wong, I. Y., Aranyosi, A. J., Toner, M., Irimia, D. Directional decisions during neutrophil chemotaxis inside bifurcating channels. Integr Biol. 2 (11-12), 639-647 (2010).
  17. Jones, C. N., et al. Spontaneous neutrophil migration patterns during sepsis after major burns. PloS One. 9 (12), e114509 (2014).
  18. Butler, K. L., et al. Burn injury reduces neutrophil directional migration speed in microfluidic devices. PloS One. 5 (7), e11921 (2010).
  19. Wu, J., et al. A microfluidic platform for evaluating neutrophil chemotaxis induced by sputum from COPD patients. PloS One. 10 (5), e0126523 (2015).
  20. Sackmann, E. K., et al. Microfluidic kit-on-a-lid: a versatile platform for neutrophil chemotaxis assays. Blood. 120 (14), e45-e53 (2012).
  21. Agrawal, N., Toner, M., Irimia, D. Neutrophil migration assay from a drop of blood. Lab Chip. 8 (12), 2054-2061 (2008).
  22. Jones, C. N., et al. Microfluidic platform for measuring neutrophil chemotaxis from unprocessed human whole blood. J Vis Exp. (88), (2014).
  23. Jones, C. N., et al. Microfluidic assay for precise measurements of mouse, rat, and human neutrophil chemotaxis in whole-blood droplets. J Leukocyte Biol. 100 (1), 241-247 (2016).
  24. Sackmann, E. K. -. H., et al. Characterizing asthma from a drop of blood using neutrophil chemotaxis. P Natl Acad Sci. 111 (16), 5813-5818 (2014).
  25. Wu, J., et al. An all-on-chip method for testing neutrophil chemotaxis induced by fMLP and COPD patient’s sputum. Technology. 04 (02), 104-109 (2016).

Play Video

Cite This Article
Yang, K., Wu, J., Zhu, L., Liu, Y., Zhang, M., Lin, F. An All-on-chip Method for Rapid Neutrophil Chemotaxis Analysis Directly from a Drop of Blood. J. Vis. Exp. (124), e55615, doi:10.3791/55615 (2017).

View Video