Precisie-cut Mouse Lung Slices Live Pulmonary visualiseren van dendritische cellen

Na inhalatie van pro-inflammatoire stimuli zoals lipopolysaccharide (LPS), is er een gecoördineerde beweging van immuuncellen in, binnen en uit de longen. Bijvoorbeeld worden neutrofielen snel aangeworven om het longparenchym en luchtwegen. Bovendien hebben sommige professionele antigeenpresenterende cellen bekend als conventionele dendritische cellen (CDCS) ondergaat een betrekkelijk ingewikkelde migratiepatroon ^{1, 2.} CDCS kunnen worden geïdentificeerd met gebruik van doorstroomcytometrie, gedeeltelijk gebaseerd op de weergave van de oppervlaktemerker, CD11c. Verschillende subsets van DCs kan worden onderscheiden door het verschil oppervlakte-expressie van CD103 en CD11b ^3. Bij het verwerven van geïnhaleerde antigeen, sommige CDCs verlaat de long en migreren door de lymfevaten to-long drainerende lymfeklieren (LN), waar ze presenteren peptiden op antigeen-specifieke T-cellen ^4. Dit is een kritieke vroege gebeurtenis bij de initiatie van adaptieve immuunsysteem responses. Om onbekende redenen, echter niet alle CDCs dat geïnhaleerde antigenen verwerven verlaat de longen, en veel van deze cellen blijven in dat orgaan voor enkele maanden ^{5, 6.} Deze waarneming kan gedeeltelijk worden verklaard door de ontwikkelings afstamming van deze cellen omdat monocyten afgeleide CD11c ⁺ cellen die de chemokine receptor CCR7, niet kunnen migreren naar regionale LN's ^{7, 8.} Het lijkt waarschijnlijk dat de migratiepotentieel van CDC Ook wordt bepaald, ten minste gedeeltelijk, door de anatomische positie binnen de long. Echter, de precieze lokalisatie van deze verschillende populaties van CDC in de long niet volledig gekarakteriseerd. Een verbeterde kennis van immuuncel lokalisatie binnen de longen en van de moleculen die direct het, is nodig voor een beter begrip van hoe het immuunsysteem van de longen wordt geactiveerd.

PCLS worden dat verhogingly gebruikt als een ex vivo benadering voor cellulaire positionering en cel-cel interacties visualiseren, met behoud van de structurele integriteit van de long architectuur ^{9, 10.} PCLS zijn gebruikt om de longen van de vele soorten, waaronder muizen, runderen, apen, schapen, paarden en mensen ¹¹ te bestuderen. Een belangrijk voordeel van deze techniek is dat ongeveer 20 plakken kunnen worden bereid uit een kwab van een muislong, waardoor het aantal dieren om eigen proeven verminderen. Vrijwel alle immuun celtypen, met inbegrip van DCs, macrofagen, neutrofielen, en T-cellen, zijn aanwezig in PCLS en hun normale structuur te behouden.

PCLS kan ook worden gebruikt om calcium signalering en contractiliteit van de luchtwegen en gladde spiercellen studie na behandeling met acetylcholine ¹² of ¹³ methacholine. In deze benadering slechts een klein deel van de long is eenmicroscopisch alyzed, maar een studie rapporteerde dat metingen van de luchtwegen inkrimping PCLS varieert slechts ongeveer 10% van plak tot plak, en dit verschil is vergelijkbaar met dat gebruikt longfunctietesten bij intacte dieren ^14. Andere onderzoekers hebben PCLS een ex vivo benadering gebruikt om veranderingen in cytokine-expressie en celoppervlak markers na incubatie studie met ¹⁵ LPS. PCLS zijn ook gebruikt in een ex vivo model van hypoxische pulmonale vasoconstrictie in kleine intra-acinaire slagaders. Deze vaten liggen in het deel van de long die niet kunnen worden bereikt met andere procedures, waaronder opnamen van ontleed arteriële segmenten of analyse van subpleural vaten ^16. Ons laboratorium heeft voornamelijk gebruikt PCLS om immuuncel lokalisatie in levende longweefsel bij steady state en naar aanleiding van een in vivo inflammatoire stimulus te visualiseren. De procedures die we hebben ontwikkeld voor dit zijn als volgt.