Summary

Очистка ДНК с высоким молекулярным весом геномной от мучнистой росы для Long-Read Sequencing

Published: March 31, 2017
doi:

Summary

Described here is a method for the extraction, purification, and quality control of genomic DNA from the obligate biotrophic fungal pathogen, powdery mildew, for use in long-read genome sequencing.

Abstract

Мучнистая роса грибы представляют собой группу экономически важных грибковых патогенов растений. Относительно мало известно о молекулярной биологии и генетике этих патогенов, отчасти из-за отсутствия хорошо развитых генетических и геномных ресурсов. Эти организмы имеют большие, повторяющиеся геном, которые сделали секвенирование генома и сборка запредельно трудно. Здесь мы описываем методы оценки сбора, экстракции, очистки и контроля качества с высокой молекулярной массой геномной ДНК от одного порошкообразных видов плесени, Golovinomyces cichoracearum. Протокол, описанный включает в себя механическое разрушение спор с последующей экстракции геномной ДНК оптимизировано фенол / хлороформ. Типичный выход составил 7 мкг ДНК на 150 мг конидий. Геномная ДНК, которая изолирована с помощью этой процедуры подходит для длительного чтения последовательности (то есть,> 48,5 т.п.н.). Качественные меры контроля, чтобы обеспечить размер, выход и чистоту геномной ДНК такжеописанный в этом методе. Секвенирование геномной ДНК качества, описанное здесь позволит для сборки и сравнения нескольких геномов мучнистой росы, что в своей очереди приведет к лучшему пониманию и улучшения контроля над этим сельскохозяйственным патогеном.

Introduction

Мучнисторосяных представляют собой группу облигатных биотрофных грибковых патогены растений , которые, взятые вместе, являются основной причиной болезни растений во всем мире 1. Есть более 900 описанных видов мучнистой росы, которые таксономически сгруппированные в пять племен в семье Erisyphaceae 2. В связи как их экономическое значение, и интимные отношения они развиваются со своими хозяевами, мучнистая роса заболевания были предметом исследования для> 100 лет. После заражения, настоящая мучнистая роса вызывают резкие изменения в клеточной структуре, метаболизма и молекулярной биологии их хозяев, в пользу этого патогена. Тем не менее, изучение мучнисторосяных является особенно сложной задачей из – за их облигатным образ жизни, и рост гриба в чистой культуре до сих пор не было описано 3, 4, 5,"Xref"> 6, 7, 8. Надежная, стабильная генетическая трансформация мучнисторосяных также еще не была достигнута, хотя переходное преобразование было сообщено в некоторых видах 9, 10.

Последовательность и монтаж мучнистой росы геномов оказались трудными из-за ряд особенностей самого генома. Мучнистая роса геном крупный (120 – 180 МВРА) по отношению к другим грибковым геном, и состоят из 60 – 90% равномерно распределенных повторяющихся элементов 11. Эти элементы включают в себя не-длинные концевые повторы, а также неклассифицированные повторяющиеся элементы. Два formae speciales одного вида мучнистой росе, Blumeria graminis ф. зр. hordei и е. зр. tritici (BGH и Bgt, соответственно), а также мучнистая роса винограда Erysiphe Necator, у пчелп секвенирования и проект геномы для ряда других были завершены 12, 13, 14. Повторяющийся характер геномов сделал сборку трудным, и заполненный BGH геном был собран в 6,989 supercontigs с L50 2 Мб 12.

Несмотря на большое генома, то настоящая мучнистая роса , как представляется, небольшое количество белковых генов , кодирующих, с 5,845 и 6,540 генов предсказанных в BGH и БГТ, соответственно. Виртуализированное мучнистая роса также , кажется, не имеют , по крайней мере 99 основных генов, которые необходимы в других грибов, что согласуется с зависимостью грибов на их растения – хозяина для выживания 11, 12, 13, 14.

Повторяющиеся последовательности вблизи теломеры, центромеры, рибосомальной Р.Н.Ген , массивы и область , обогащенная мобильных элементы плохо собраны из коротких чтения стратегий секвенирования и часто недостаточно представлены в геноме сборках 15. Такие области , как полагает, ответственны за многие пробела , которые происходят в геномных последовательностях, и это относится к мучнисторосяным с их экстенсивным расширением повторяющихся элементов 16. Высококвалифицированный пластические участки генома часто встречается в таких повторяющихся областях 3. Они служат в качестве сайта хромосомных перестроек и часто кодируют гены под сильным селективным давлением, такие как гены, кодирующие эффекторные белки и гены, кодирующие ферменты вторичного метаболизма. Прогресс в одной молекуле давно прочитанных технологии секвенирования обеспечивает потенциальное решение для секвенирования через повторяющиеся области геномов 15. Например, Файно и др. (2015) обнаружил, что в том числе длинных последовательностей чтения технологии и оптический мapping позволили им производить последовательность генома разрыва менее двух штаммов грибковых растений патогенов Verticillium георгина, утроение доли повторяющихся последовательностей ДНК в геноме, увеличивая количество генных аннотаций (и сокращение числа частичного или отсутствуют ген аннотации ) и выявление перестроек генома 17.

Для того, чтобы использовать эти длинные читаемые технологии секвенирования, высокие концентрации высокого качества геномной ДНК, с минимальными размерами> 20 т.п.н., необходимо. Здесь мы опишем наши методы конидий сбора, очистки ДНК высокой молекулярной массы от конидий и наши оценки контроля качества с использованием мучнистой росы видов Golovinomyces cichoracearum , выращенные на огурце 18. Этот протокол основан на протоколе , разработанном в лаборатории группы В. Келлера (Университет Цюриха, Цюрих Швейцария) 13, 19и включает в себя несколько модификаций, которые привели к повышению урожайности ДНК и более высокую долю ДНК> 48,5 т.п.н. в размере. Протокол также включает в себя этапы контроля качества на основе рекомендаций департамента Соединенных Штатов энергетики Объединенного института генома 20, 21, 22.

Функция каждого реагента , включенный в буфере для лизиса, и обоснования для каждой стадии очистки, такой , как описана в Генри (2008) 23. Доступные опубликованные протоколы для изоляции с высокой молекулярной массой геномной ДНК из растений и микроорганизмов , тканей были также проведены консультации в ходе разработки этого протокола 24, 25, 26, 27, 28.

Protocol

1. Приготовление грибного вещества, Рост к мучнистой росе Grow растений в ростовых камерах при следующих условиях: 22 ° C день температура, температуру 20 ° С ночью, 80% относительной влажности, 14-ч длина дня и интенсивность света 125 мкЕ / м 2 / с ( при условии , флуоресцентным осве?…

Representative Results

Характерным примером 60ng очищенной геномной ДНК из G. cichoracearum на агарозном геле с помощью гель – электрофореза и с помощью электрофореза в пульсирующем поле гель показаны на фигурах 1 и 2, соответственно. Геномные препараты ДНК, которые пр?…

Discussion

Для того чтобы получить чистую, высокую молекулярную массу геномной ДНК из облигатных биотрофных грибов мучнистой росы, модифицированная версия ранее описанные методов была разработана 30. Средний выход, используя этот оптимизированный протокол составляет 7 мкг ДНК на 150 ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This protocol was developed in support of a Joint Genome Institute-Community Sequencing Project (#1657). The work was supported in part by the Philomathia Foundation, the National Science Foundation (#0929226) and the Energy Biosciences Institute to S. Somerville; and by Swiss National Science Foundation (#310030_163260) to B. Keller. We would like to thank our colleagues, M. Figureroa and M. Miller (University of Minnesota), R. Panstruga (RWTH Aachen University), C. Pedersen (University of Copenhagen), P. Spanu (Imperial College), J. Taneja (University of California Berkeley), M. Wildermuth (University of California Berkeley), R. Wise (Iowa State University) and S. Xiao (University of Maryland) for their generous advice and for volunteering their protocols as we developed the protocol described here.

Materials

MM400 Ball Mill Retsch 20.745.0001 Or equivalent ball mill
2mL tubes for ball milling Sarstedt  72.694.007
5/32" stainless steel milling balls OPS Diagnostics GBSS 165-5000-01
Microprocessor controlled 280 Series Water Bath Preset to 65°C  Thermo Fisher Scientific 2825 Or equivalent water bath
Microprocessor controlled 280 Series Water Bath Preset to 37°C Thermo Fisher Scientific 2825 Or equivalent water bath
Eppendorf 5417R refrigerated microcentrifuge Krakeler Scientific  38-022621807 Or equivalent microcentrifuge
Chlorform:IAA (24:1 v/v) Sigma-Aldrich  C0549 Hazardous in case of skin contact or inhalation. Wear nitrile gloves, protective eyewear, lab coat and work in chemical hood
Phenol:Chloroform:IAA (25:24:1 v/v) Thermo Fisher Scientific 15593031 Hazardous in case of skin contact or inhalation. Wear nitrile gloves, protective eyewear, lab coat and work in chemical hood
100% Isopropanol Sigma-Aldrich  W292907
100% Ethanol Sigma-Aldrich  34923 Chill to -20°C prior use
Sodium Acetate Sigma-Aldrich  S2889
Rnase, Dnase-free (10mg/ml) Thermo Fisher Scientific EN0531
Potassium metabisulfite Sigma-Aldrich  P2522
Sodium Lauryl Sacroinate Sigma-Aldrich  L9150
Tris base Sigma-Aldrich  10708976001
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich  EDS
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich  S9888
Cetyltrimethyl ammonium bromide (CTAB) Sigma-Aldrich  H6269
Uvex by Honeywell Futura Goggles S345C, Uvextreme Staples 423263 Or equivalent eyewear
High Five COBALT nitrile gloves, LARGE Neta Scientific HFG-N193 Or equivalent gloves
GelRed Nucleic Acid Gel Stain 10,000X in water Biotium 41003
Ethidium Bromide 10mg/ml Biotium 40042 Hazardous in case of skin contact. Wear nitrile gloves and protective eyewear
 Agarose Ultrapure Bioreagent VWR International LLC JT4063
GeneRuler 1kb Plus DNA Ladder Thermo Fisher Scientific FERSM1332
8-48kb CHEF DNA size standards Bio-Rad 170-3707
Pippin Prep   Life Technologies Corporation 4472172 Or equivalent pulse-field gel aparatus
Whatman qualitative filter paper, Grade 1 Sigma-Aldrich  WHA1001042 Or equivalent growth chamber
Percival  Growth Chamber Percival AR66LXC9
NanoDrop 8000 UV-Vis Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific ND-8000-GL Or equivalent spectrophotometer
Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit Thermo Fisher Scientific P11496
TAE Buffer (Tris-acetate-EDTA) (50X) Thermo Fisher Scientific B49 Dilute 1/50 with water before use (to 1X)
TE Buffer Thermo Fisher Scientific 12090015 
Tris-Borate-EDTA, 10X Solution (Electrophoresis) Thermo Fisher Scientific BP13334 Dilute 1/10 with water before use (to 1X)
Liquid Nitrogen Liquid nitrogen (-196 °C) is a freezing hazard. It will also expand rapidly upon warming and should not keep in a tightly closed container

References

  1. Agrios, G. N. . Plant Pathology. , (1969).
  2. Braun, U., Cook, R. T. . Taxonomic manual of the Erysiphales (Powdery Mildews). , (2012).
  3. Both, M., Csukai, M., Stumpf, M. P. H., Spanu, P. D. Gene expression profiles of Blumeria graminis indicate dynamic changes to primary metabolism during development of an obligate biotrophic pathogen. Plant Cell. 17 (7), 2107-2122 (2005).
  4. Glawe, D. A. The powdery mildews: A review of the world’s most familiar (yet poorly known) plant pathogens. Annu Rev Phytopathol. 46, 27-51 (2008).
  5. Fabro, G., et al. Genome-wide expression profiling Arabidopsis at the stage of Golovinomyces cichoracearum haustorium formation. Plant Physiol. 146 (3), 1421-1439 (2008).
  6. Hückelhoven, R., Panstruga, R. Cell biology of the plant-powdery mildew interaction. Curr Opin Plant Biol. 14 (6), 738-746 (2011).
  7. Micali, C. O., Neumann, U., Grunewald, D., Panstruga, R., O’Connell, R. Biogenesis of a specialized plant-fungal interface during host cell internalization of Golovinomyces orontii haustoria. Cell Microbiol. 13 (2), 210-226 (2011).
  8. Chandran, D., Inada, N., Hather, G., Kleindt, C. K., Wildermuth, M. C. Laser microdissection of Arabidopsis cells at the powdery mildew infection site reveals site-specific processes and regulators. Proc Natl Acad Sci. 107 (1), 460-465 (2010).
  9. Spanu, P. D., Panstruga, R. Powdery mildew genomes in the crosshairs. New Phytol. 195 (1), 20-22 (2012).
  10. Vela-Corcía, D., Romero, D., Torés, J. A., De Vicente, A., Pérez-García, A. Transient transformation of Podosphaera xanthii by electroporation of conidia. BMC Microbiol. 15 (20), (2015).
  11. Hacquard, S., Francis, M. M. . Advances in Botanical Research. 70, 109-142 (2014).
  12. Spanu, P. D., et al. Genome expansion and gene loss in powdery mildew fungi reveal tradeoffs in extreme parasitism. Science. 330 (6010), 1543-1546 (2010).
  13. Wicker, T., et al. The wheat powdery mildew genome shows the unique evolution of an obligate biotroph. Nat Genet. 45 (9), 1092 (2013).
  14. Jones, L., et al. Adaptive genomic structural variation in the grape powdery mildew pathogen, Erysiphe necator. BMC Genomics. 15, 1081 (2014).
  15. Thomma, B. P. H. J., et al. Mind the gap; seven reasons to close fragmented genome assemblies. Fungal Genet Biol. 90, 24-30 (2016).
  16. Parlange, F., et al. A major invasion of transposable elements accounts for the large size of the Blumeria graminis f.sp. tritici genome. Funct Integr Genomics. 11, 671-677 (2011).
  17. Faino, L., et al. Single-molecule real-time sequencing combined with optical mapping yields completely finished fungal genome. mBio. 6, (2015).
  18. Adam, L., et al. Comparison of Erysiphe cichoracearum and E. cruciferarum and a survey of 360 Arabidopsis thaliana accessions for resistance to these two powdery mildew pathogens. Mol Plant Microbe In. 12 (12), 1031-1043 (1999).
  19. Bourras, S., et al. Multiple avirulence loci and allele-specific effector recognition control the PM3 race-specific resistance of wheat to powdery mildew. Plant Cell. 27 (10), 2991-3012 (2015).
  20. Henry, R. J. . Plant genotyping II: SNP technology. , (2008).
  21. Healey, A., Furtado, A., Cooper, T., Henry, R. J. Protocol: a simple method for extracting next-generation sequencing quality genomic DNA from recalcitrant plant species. Plant Methods. 10 (21), (2014).
  22. Fang, G., Hammar, S., Grumet, R. A quick and inexpensive method for removing polysaccharides from plant genomic DNA. Biotechniques. 13 (1), 52-54 (1992).
  23. Jordon-Thaden, I. E., Chanderbali, A. S., Gitzendanner, M. A., Soltis, D. E. Modified CTAB and TRIzol protocols improve RNA extraction from chemically complex Embryophyta. Appl Plant Sci. 3 (5), 1400105 (2015).
  24. Murray, M. G., Thompson, W. F. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucleic Acids Res. 8 (19), 4321-4325 (1980).
  25. Greco, M., Sáez, C. A., Brown, M. T., Bitonti, M. B. A simple and effective method for high quality co-extraction of genomic DNA and total RNA from low biomass Ectocarpus siliculosus, the model brown alga. PLoS One. 9 (5), e96470 (2014).
  26. Wilson, I. W., Schiff, C. L., Hughes, D. E., Somerville, S. C. Quantitative trait loci analysis of powdery mildew disease resistance in the Arabidopsis thaliana accession Kashmir-1. Genetics. 158 (3), 1301-1309 (2001).

Play Video

Cite This Article
Feehan, J. M., Scheibel, K. E., Bourras, S., Underwood, W., Keller, B., Somerville, S. C. Purification of High Molecular Weight Genomic DNA from Powdery Mildew for Long-Read Sequencing. J. Vis. Exp. (121), e55463, doi:10.3791/55463 (2017).

View Video