Summary

Purificação de DNA de alto peso molecular genômico de oídio de longo Read Sequencing

Published: March 31, 2017
doi:

Summary

Described here is a method for the extraction, purification, and quality control of genomic DNA from the obligate biotrophic fungal pathogen, powdery mildew, for use in long-read genome sequencing.

Abstract

Os fungos de oídio são um grupo de economicamente importantes agentes patogénicos fúngicos de plantas. Relativamente pouco se sabe sobre a biologia molecular e genética de estes agentes patogénicos, em parte devido à falta de recursos genéticos e genómicos bem desenvolvidos. Estes organismos possuem grandes genomas, repetitivas, que fizeram a sequenciação e montagem do genoma proibitivamente difícil. Aqui, nós descrevemos métodos para a avaliação de recolha, a extracção, purificação e controle de qualidade de ADN genómico de elevado peso molecular a partir de espécies de míldio em pó, um Golovinomyces cichoracearum. O protocolo descrito inclui ruptura mecânica de esporos seguido por uma extracção de ADN genómico optimizado fenol / clorofórmio. Um rendimento típico foi de 7 g de ADN por 150 mg de conídios. O ADN genómico que é isolado utilizando este procedimento é adequado para a sequenciação de leitura longa (isto é,> 48,5 kpb). medidas de controlo de qualidade para assegurar o tamanho, rendimento e a pureza do ADN genómico são igualmentedescrito neste método. A sequenciação do ADN genómico da qualidade descrito aqui vai permitir a montagem e a comparação dos múltiplos genomas de oídio, que por sua vez irá conduzir a uma melhor compreensão e uma melhor controle deste patogénio agrícola.

Introduction

Oídios são um grupo de obrigatório planta fúngico biotrófica agentes patogénicos que, quando tomados em conjunto, são a maior causa de doenças de plantas em todo o mundo 1. Existem mais de 900 espécies descritas de oídio, que foram taxonomicamente agrupadas em cinco tribos dentro da família Erisyphaceae 2. Devido tanto à sua importância econômica e a íntima relação que desenvolvem com seus anfitriões, doenças de oídio foram objecto de investigação por> 100 anos. Após a infecção, oídio provocar mudanças drásticas na estrutura celular, metabolismo e biologia molecular de seus hospedeiros, para beneficiar deste patógeno. No entanto, o estudo de oídios é particularmente difícil devido ao seu estilo de vida obrigatória, e o crescimento do fungo em cultura pura ainda não foi descrito 3, 4, 5,"xref"> 6, 7, 8. Reliable transformação, estável genética de oídios ainda não foi também conseguida, embora a expressão transiente tem sido relatada em algumas espécies 9, 10.

O sequenciamento e montagem de genomas oídio tem sido difícil devido a uma série de características do próprio genoma. Genomas oídio são grandes (120-180 MBP) em relação a outros genomas de fungos, e consistem em 60 – 90% de elementos repetitivos uniformemente distribuídas 11. Estes elementos incluem repeties terminais longas não, bem como elementos repetitivos não classificadas. Dois speciales formae de uma única espécie de oídio, Blumeria graminis f. sp. hordei e f. sp. tritici (BGH e Bgt, respectivamente), bem como o míldio pulverulento da uva Erysiphe necator, têm abelhan sequenciado, e os projectos de genomas de vários outros foram concluídos 12, 13, 14. A natureza repetitiva dos genomas fez montagem difícil, e o genoma Bgh completada foi montado em 6.989 supercontigs com um L50 de 2 Mb 12.

Apesar do grande genoma, os míldios pulverulentos parecem ter um pequeno número de genes que codificam proteínas, com 5.845 e 6.540 genes previstos em Bgh e Bgt, respectivamente. Os oídios sequenciados também parecem carecer de pelo menos 99 genes principais que são essenciais em outros fungos, o que é consistente com a dependência dos fungos na sua planta hospedeira para a sobrevivência de 11, 12, 13, 14.

seqüências repetitivas perto telômeros, centrômeros, RN ribossomalA matrizes e as regiões enriquecidas em elementos transponíveis de genes são mal montada a partir de estratégias de sequenciação de curto-ler e são frequentemente sub-representados em conjuntos de 15 genoma. Tais regiões são pensados para ser responsável por muitas das lacunas que ocorrem em sequências do genoma, e isto aplica-se aos míldios pulverulentos, com o seu grande expansão de elementos repetitivos 16. Altamente regiões do genoma de plástico são freqüentemente encontrados nessas regiões repetitivas 3. Eles servem como um local de rearranjos de cromossomas e muitas vezes codificam genes sob forte pressão selectiva, tais como os genes que codificam para proteínas efectoras e os genes que codificam as enzimas do metabolismo secundário. Advances in única molécula de tecnologias de sequenciação de leitura longa fornecer uma solução potencial para a sequenciação através das regiões repetitivas de genomas 15. Por exemplo, Faino et al. (2015) verificaram que a inclusão de sequência de leitura longa e tecnologias m ópticoapping lhes permitiu produzir uma sequência de genoma lacuna-menos para duas estirpes de planta fúngico patógeno dália Verticillium, triplicando a proporção de sequências repetitivas de ADN no genoma, aumentando o número de notas de genes (e a redução do número de parcial ou ausente anotações gene ) e revelador genoma rearranjos 17.

Para empregar estas tecnologias de sequenciamento de leitura longa, altas concentrações de DNA genômico de alta qualidade, com o mínimo de tamanhos> 20 kbp, são necessários. Descrevemos aqui os nossos métodos para a recolha de conídios, purificação de DNA de alto peso molecular a partir de conídios e nossas avaliações de controlo de qualidade utilizando as espécies de oídio Golovinomyces cichoracearum cultivadas em pepino 18. Este protocolo baseia-se num protocolo desenvolvido no laboratório grupo B. Keller (Universidade de Zurique, Zurique Suíça) 13, 19e inclui várias modificações que levaram ao aumento da produção de ADN e uma proporção mais elevada de ADN de> 48,5 kpb em tamanho. O protocolo também inclui etapas de controle de qualidade com base nas recomendações do Departamento de Estados Unidos da Joint Genome Institute Energia 20, 21, 22.

A função de cada um dos reagentes incluídos no tampão de lise, e a razão para cada passo de purificação, são como descrito em Henry (2008) 23. Disponíveis protocolos publicados para o isolamento de DNA de alto peso molecular genómico a partir de tecidos de plantas e microbianas foram também consultados durante a concepção deste protocolo 24, 25, 26, 27, 28.

Protocol

1. Preparação do material Fúngica Crescer Oídio Cultivar plantas em câmaras de crescimento com as seguintes condições: 22 ° C dia temperatura, 20 ° C Temperatura de noite, 80% de humidade relativa, 14 h duração do dia e uma intensidade de luz de 125 μE / m 2 / s (fornecida pela iluminação fluorescente ). Infectar plantas de pepino (Cucumis sativa variedade de Bush Champion) com Golovinomyces cichoracearum UCSC1 estirpe como descrito <sup class="xre…

Representative Results

Um exemplo representativo de 60 ng de ADN genómico purificado de G. cichoracearum passado em gel de agarose, utilizando electroforese em gel e usando electroforese em gel de campo pulsado são mostrados nas Figuras 1 e 2, respectivamente. preparações de ADN genómico que passam, marginalmente passam e falham o controlo de qualidade são representados. preparações de ADN genómico que passam completamente o controlo de quali…

Discussion

A fim de se obter alta ADN genómico puro, de peso molecular a partir do obrigatório biotrófica fungos de oídio, uma versão modificada dos métodos anteriormente descritos foi desenvolvido 30. O rendimento médio usando este protocolo optimizado é de 7 g de ADN por 150 mg de conídios, uma duplicação do rendimento obtido com um protocolo anterior. Além disso, o tamanho médio aumentou de cerca de 20 kpb a mais de 48,5 kpb. Este protocolo foi optimizado no sistema cichoracearum G.

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This protocol was developed in support of a Joint Genome Institute-Community Sequencing Project (#1657). The work was supported in part by the Philomathia Foundation, the National Science Foundation (#0929226) and the Energy Biosciences Institute to S. Somerville; and by Swiss National Science Foundation (#310030_163260) to B. Keller. We would like to thank our colleagues, M. Figureroa and M. Miller (University of Minnesota), R. Panstruga (RWTH Aachen University), C. Pedersen (University of Copenhagen), P. Spanu (Imperial College), J. Taneja (University of California Berkeley), M. Wildermuth (University of California Berkeley), R. Wise (Iowa State University) and S. Xiao (University of Maryland) for their generous advice and for volunteering their protocols as we developed the protocol described here.

Materials

MM400 Ball Mill Retsch 20.745.0001 Or equivalent ball mill
2mL tubes for ball milling Sarstedt  72.694.007
5/32" stainless steel milling balls OPS Diagnostics GBSS 165-5000-01
Microprocessor controlled 280 Series Water Bath Preset to 65°C  Thermo Fisher Scientific 2825 Or equivalent water bath
Microprocessor controlled 280 Series Water Bath Preset to 37°C Thermo Fisher Scientific 2825 Or equivalent water bath
Eppendorf 5417R refrigerated microcentrifuge Krakeler Scientific  38-022621807 Or equivalent microcentrifuge
Chlorform:IAA (24:1 v/v) Sigma-Aldrich  C0549 Hazardous in case of skin contact or inhalation. Wear nitrile gloves, protective eyewear, lab coat and work in chemical hood
Phenol:Chloroform:IAA (25:24:1 v/v) Thermo Fisher Scientific 15593031 Hazardous in case of skin contact or inhalation. Wear nitrile gloves, protective eyewear, lab coat and work in chemical hood
100% Isopropanol Sigma-Aldrich  W292907
100% Ethanol Sigma-Aldrich  34923 Chill to -20°C prior use
Sodium Acetate Sigma-Aldrich  S2889
Rnase, Dnase-free (10mg/ml) Thermo Fisher Scientific EN0531
Potassium metabisulfite Sigma-Aldrich  P2522
Sodium Lauryl Sacroinate Sigma-Aldrich  L9150
Tris base Sigma-Aldrich  10708976001
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) Sigma-Aldrich  EDS
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich  S9888
Cetyltrimethyl ammonium bromide (CTAB) Sigma-Aldrich  H6269
Uvex by Honeywell Futura Goggles S345C, Uvextreme Staples 423263 Or equivalent eyewear
High Five COBALT nitrile gloves, LARGE Neta Scientific HFG-N193 Or equivalent gloves
GelRed Nucleic Acid Gel Stain 10,000X in water Biotium 41003
Ethidium Bromide 10mg/ml Biotium 40042 Hazardous in case of skin contact. Wear nitrile gloves and protective eyewear
 Agarose Ultrapure Bioreagent VWR International LLC JT4063
GeneRuler 1kb Plus DNA Ladder Thermo Fisher Scientific FERSM1332
8-48kb CHEF DNA size standards Bio-Rad 170-3707
Pippin Prep   Life Technologies Corporation 4472172 Or equivalent pulse-field gel aparatus
Whatman qualitative filter paper, Grade 1 Sigma-Aldrich  WHA1001042 Or equivalent growth chamber
Percival  Growth Chamber Percival AR66LXC9
NanoDrop 8000 UV-Vis Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific ND-8000-GL Or equivalent spectrophotometer
Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit Thermo Fisher Scientific P11496
TAE Buffer (Tris-acetate-EDTA) (50X) Thermo Fisher Scientific B49 Dilute 1/50 with water before use (to 1X)
TE Buffer Thermo Fisher Scientific 12090015 
Tris-Borate-EDTA, 10X Solution (Electrophoresis) Thermo Fisher Scientific BP13334 Dilute 1/10 with water before use (to 1X)
Liquid Nitrogen Liquid nitrogen (-196 °C) is a freezing hazard. It will also expand rapidly upon warming and should not keep in a tightly closed container

References

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Feehan, J. M., Scheibel, K. E., Bourras, S., Underwood, W., Keller, B., Somerville, S. C. Purification of High Molecular Weight Genomic DNA from Powdery Mildew for Long-Read Sequencing. J. Vis. Exp. (121), e55463, doi:10.3791/55463 (2017).

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