Estudar canais iônicos através de um sistema heterólogo expressar tornou-se uma técnica nuclear em pesquisa biomédica. Neste texto, apresentamos um método eficiente tempo para conseguir uma expressão de canal iónico com força controlada através da realização de transfecção transiente, sob o controlo de um promotor indutível.
A transfecção, a entrega de ácidos nucleicos estranhos numa célula, é uma ferramenta poderosa na pesquisa de proteínas. Através deste método, os canais iónicos pode ser investigada através de análise electrofisiológica, caracterização bioquímica, estudos mutacionais, e os seus efeitos sobre os processos celulares. As transfecções transientes oferecer um protocolo simples, em que a proteína se torna disponível para análise em poucas horas ou dias. Embora este método apresenta um protocolo de tempo relativamente simples e eficiente, um dos componentes críticos é calibrar a expressão do gene de interesse a níveis fisiológicos relevantes ou níveis que são adequados para análise. Para este fim, muitas abordagens diferentes, que oferecem a capacidade de controlar a expressão do gene de interesse têm surgido. Vários protocolos de transfecção de células estáveis fornecem uma maneira de introduzir de forma permanente um gene de interesse no genoma celular sob a regulação de um transcrip controlado por tetraciclinaactivação cional. Embora essa técnica produz níveis de expressão de confiança, cada gene de interesse requer algumas semanas de trabalho qualificado, nomeadamente calibração de uma curva de morte, seleção de colônias de células e, em geral mais recursos. Aqui apresenta-se um protocolo que utiliza a transfecção transitória do canal de catiões Potencial membro da subfamília V um gene transiente do receptor (TRPV1) num sistema indutível de uma maneira eficiente para expressar uma proteína de uma forma controlada que é essencial na análise de canal iónico. Nós demonstramos que usando esta técnica, somos capazes de realizar imagem de cálcio, células inteiras, e análise único canal com os níveis dos canais controlados necessários para cada tipo de coleta de dados com uma única transfecção. No geral, esta técnica fornece uma replicáveis que podem ser usadas para estudar a estrutura e função de canais iónicos.
Sistemas de expressão heteróloga é uma das técnicas mais amplamente utilizado para estudar uma multiplicidade de funções celulares 1. Seu perfil baixo endógena de proteína, os requisitos mínimos de manutenção, o crescimento confiável e capacidade de assumir e expressar DNA estranho fizeram linhas celulares tais como embrionárias humanas de rim (HEK293) e ovário de hamster chinês (CHO) quase essencial para a pesquisa biológica 2, 3. Áreas de pesquisa usando sistemas heterólogos incluem proteínas de membrana, sinalização intracelular e atividade enzimática. A seguir à transfecção de ADN estranho na célula, muitas formas diferentes de análise pode ser realizada, incluindo a electrofisiologia, imagem de cálcio raciométrica, western blot, etc 4, 5.
Devido à grande variedade de aplicações potenciais para sistemas de expressão heterólogos, muitos difereReagentes e produtos nt foram desenvolvidos para utilizar estas células e as suas qualidades 6. sistemas de entrega de DNA que transitoriamente ou permanentemente integrar DNA estranho em células para estudar proteína exógena tornou-se uma das ferramentas mais populares e úteis para a pesquisa biológica. Mais especificamente, a transfecção transiente de ADN para uma célula é amplamente usado como um processo para a frente simples, linear que requer relativamente pouco tempo e materiais. Além disso, a taxa de sucesso de células que sofrem transfecção é alta 7. Esta técnica é muito fiável quando combinado com um gene marcador tal como a proteína fluorescente verde (GFP), e pode ser usado para muitas técnicas diferentes, como a imagiologia de cálcio e electrofisiologia 5. Infelizmente, no entanto, que expressam transitoriamente o DNA em células hospedeiras vem com alguns dos principais armadilhas, não menos que o nível de expressão por célula não é fiável. O número de cópias do DNA de plasmídeo feita up por célula é incontrolável, assim, a expressão entre experiências individuais podem variar muito 2. Esta questão torna-se significativo quando quer tentar replicar condições fisiológicas, ou a realização de técnicas precisas de coleta de dados.
Como uma solução para as complicações acima mencionadas, os protocolos de transfecção estável foram concebidos em que um gene de interesse pode ser inserido no genoma de uma célula sob o controlo apertado de um promotor indutível, tal como um sistema de tetraciclina repressor expressão, assegurando uma única cópia do plasmídeo se integra no genoma de cada célula e só é expressa após a indução do mecanismo de transcrição, por exemplo, na presença de doxiciclina. Enquanto isso resolve os obstáculos de níveis de expressão de proteína inconsistentes, este método perde a conveniência de protocolo rápido e relativamente simples de transfecções transitórias. O estabelecimento de uma linha de células estável leva pelo menos algumas semanas em which uma necessário calibrar uma curva de morte definido por antibióticos específicos para manter a expressão da proteína e assegurar a integração do vector e habilmente seleccionar e fazer crescer colónias de células. No geral, isto leva muito mais tempo e esforço com uma menor taxa de sucesso 8.
Aqui, apresentamos um protocolo intermediário que tem por base os pontos fortes de ambas as opções de transfecção populares para fornecer uma maneira simples e eficaz para controlar os níveis de expressão em qualquer linha de células inducible. Enquanto se mantém as células com um sistema tet indutível, que transientemente transfectar nosso gene de interesse, transiente do receptor potencial canal de catião membro da subfamília V 1 (TRPV1), ligado a um vector que pode homologamente combinar com o sistema de repressor. Deste modo, o gene pode ser introduzido nas células sem começando a expressar. Apenas com a adição de doxiciclina não o gene começam a expressar, o que nos permite calibrar os níveis de proteína exprESSÃO de acordo com a técnica ou níveis observados em condições fisiológicas. Nosso protocolo também evita complicações associadas à geração de longas uma linha celular que expressa de forma estável. Começamos mostrando alteração dos níveis de ativação de TRPV1 na imagem de cálcio a partir de-un induzida através de quatro horas de indução e como o aumento dos níveis de cálcio intracelular está correlacionado. Em seguida, duplicar o protocolo em toda a configuração da célula da técnica de patch-clamp, mostrando o aumento da corrente com o tempo de indução a aumentar. Por fim, apresentamos exemplos de gravações de eletrofisiologia único canal, e mostrar que esta técnica é especialmente útil para a expressão controlada quando se olha para a coleta de dados precisos com base em unidades individuais da proteína. Através do nosso protocolo, que oferecem um modo conveniente de controlar a expressão de proteínas em sistemas heterólogos, evitando longas complicações de cultura de células, proporcionando assim uma maneira de controlar as condições de entre experiências e fornecer MOre resultados replicáveis.
Transfecção é um protocolo amplamente utilizado para a expressão da proteína e da pesquisa, com muitas variações diferentes para melhorar a consistência e a estabilidade de expressão. reagentes de transfecção transitória oferecer um método simples, fácil de usar o protocolo em que a célula e a proteína de interesse pode ser analisado dentro de horas ou durante a noite a partir do momento da transfecção. Infelizmente, esta abordagem pode ser imprevisível quando o modo de análise requer um nível consi…
The authors have nothing to disclose.
Este trabalho foi apoiado pelo Israel Science Foundation [Grants 1721/12, 1368/12 e 1444/16] (para o AP). AP é afiliado com Brettler Center e David R. Bloom Center, Escola de Farmácia, Universidade Hebraica de Jerusalém.
pcDNA™4/TO Mammalian Expression Vector | ThermoScientific Fisher | V102020 | |
pcDNA™5/TO Mammalian Expression Vector | ThermoScientific Fisher | V103320 | |
PureLink Quick PCR Purification Kit | Invitrogen | K310001 | |
Swift™ MaxPro Thermal Cycler | Esco | n.a | |
Restriction Enzymes | ThermoScientific Fisher | ER0501 | |
Agarose | Lonza | 50004 | |
PureLink Quick Gel Extraction Kit | Invitrogen | K210012 | |
NanoDrop 2000c | ThermoScientific Fisher | ND-2000C | |
T4 DNA Ligase | ThermoScientific Fisher | EL0011 | |
One Shot® TOP10 Chemically Competent E. coli | ThermoScientific Fisher | C404006 | |
Ampicillin (Sodium), USP Grade | Gold Bio | A-301-5 | |
Tryptone for microbiology | Merck | 6.19305E+13 | |
Yeast Extract | BD worldwide | 212750 | |
SIF6000R Incubated Shaker | LAB COMPANION | 45H118 | |
NucleoSpin®plasmid |
Macherey Nagel | 740588.25 | |
MS 300V Power Supply | Major Science | MP-300V | |
Owl™ EasyCast™ B1A Mini Gel Electrophoresis System | ThermoScientific Fisher | B1A | |
T-REx™-293 cell line | Invitrogen | R710-07 | |
DMEM (1X), liquid (high glucose) | Gibco | 41965-039 | |
HindIII-HF® | NEB | R3104S | |
ApaI | NEB | R0114S | |
CutSmart® Buffer | NEB | B7204S | |
pcDNA™6/TR Mammalian Expression Vector | ThermoScientific Fisher | V102520 | |
Fetal Bovine Serum, qualified, E.U.-approved, South America origin | Gibco | 10270106 | |
HEPES Buffer Solution (1 M) | Biological Industries | 03-025-1B | |
Penicillin-Streptomycin Solution | Biological Industries | 03-031-1B | |
L-Alanyl-L-Glutamine (Stable Glutamine) (200 mM) | Biological Industries | 03-022-1B | |
Heracell™ 150i CO2 Incubator | ThermoScientific Fisher | 51026406 | |
MSC-Advantage™ Class II Biological Safety Cabinet | ThermoScientific Fisher | 51025411 | |
Blasticidine S hydrochloride | Sigma-Aldrich | 15205-25MG | |
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Modified, without calcium chloride and magnesium chloride | Sigma-Aldrich | D8537-500ML | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | Gibco | 25300054 | |
DOUBLE NEUBAUER RULED METALLIZED HEMACYTOMETER | Hausser Scientific | 31000 | |
Opti-MEM I Reduced Serum Medium | Gibco | 31985070 | |
TransIT®-LT1 Transfection Reagent | Mirus | MIR 2300 | |
glass coverslips, #1 thickness, 12mm diameter round | Knittel Glass | GG-12 | |
BioCoat™ Poly-D-Lysine | Corning | 354210 | |
Water, Cell Culture Grade | Biological Industries | 03-055-1A | |
Doxycycline hyclate | Sigma-Aldrich | D9891-1G | |
Fura-2, AM ester | Biotium | BTM-50034 | |
Pluronic® F-127 | Sigma-Aldrich | P2443-250G | |
µ-Slide 8 Well | ibidi | 80826 | |
(E)-Capsaicin | Tocris | 462 | |
Olympus IX70 Fluorescence Microscope | Olympus | n.a | |
Lambda DG-4 Wavelength Switcher | Sutter Instruments | n.a | |
EXi Blue Fluorescence Microscopy Camera | QImaging | n.a | |
MetaFluor Fluorescence Ratio Imaging Software | Molecular Devices | n.a | |
Thin Walled Borosilicate Tubing | Sutter Instruments | B150-110-7.5HP | |
Standard Walled Borosilicate Tubing | Sutter Instruments | B150-86-7.5HP | |
Dimethyl sulfoxide anhydrous | Sigma-Aldrich | 276855 | |
P1000 micropipette puller | Sutter Instruments | P-1000 | |
MF-900 Microforge | NARISHIGE | n.a | |
ValveBank perfusion sysytem | AutoMate Scientific | ||
Digidata® 1440A Low-noise Data Acquisition System | Molecular Devices | n.a | |
Axopatch 200B Amplifier | Molecular Devices | n.a | |
pCLAMP 10.6 Software | Molecular Devices | n.a | |
micromanipulator | Sutter Instruments | MP-225 |