Summary

La diferenciación eficiente de pluripotentes células madre a NKX6-1<sup> +</sup> Progenitores pancreáticas

Published: March 07, 2017
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Summary

Aquí se describe un protocolo de 4 etapas para diferenciar células madre embrionarias humanas para NKX6-1 + progenitoras pancreáticas in vitro. Este protocolo se puede aplicar a una variedad de líneas de células madre pluripotentes humanas.

Abstract

Las células madre pluripotentes tienen la capacidad de auto renovarse y diferenciarse a múltiples linajes, por lo que una fuente atractiva para la generación de células progenitoras pancreáticas que se puede utilizar para el estudio de y el tratamiento futuro de la diabetes. En este artículo se describe un protocolo de diferenciación de cuatro etapas diseñado para generar células pancreáticas progenitoras a partir de células madre embrionarias humanas (hESCs). Este protocolo se puede aplicar a una serie de líneas de células madre pluripotentes humano (HPSC). El enfoque adoptado para generar células progenitoras pancreáticas es diferenciar hESCs para modelar con precisión las etapas clave del desarrollo de páncreas. Esto comienza con la inducción de la endodermo definitivo, que se consigue cultivando las células en presencia de activina A, factor básico de crecimiento de fibroblastos (bFGF) y CHIR990210. Una mayor diferenciación y el patrón con el factor de crecimiento de fibroblastos 10 (FGF10) y Dorsomorphin genera células se asemejan al intestino anterior posterior. La adición de RetinOico, NOGGIN, SANT-1 y FGF10 diferencia a las células del intestino anterior posterior en las células propias del endodermo pancreático. Finalmente, la combinación de Factor de Crecimiento Epidérmico (EGF), nicotinamida y NOGGIN conduce a la generación eficiente de PDX1 + / + NKX6-1 células. La citometría de flujo se realiza para confirmar la expresión de marcadores específicos en las etapas clave del desarrollo de páncreas. Los + / + NKX6-1 progenitores pancreáticos PDX1 al final de la etapa 4 son capaces de generar células beta maduras en el trasplante dentro ratones inmunodeficientes y pueden diferenciarse además para generar células productoras de insulina in vitro. Por lo tanto, la generación eficiente de PDX1 + / + NKX6-1 progenitores pancreáticos, como se demuestra en este protocolo, es de gran importancia, ya que proporciona una plataforma para estudiar el desarrollo de páncreas humano in vitro y proporciona una fuente de células con el potencial de diferenciarse de células ß que podrían eVentually ser utilizado para el tratamiento de la diabetes.

Introduction

La prevalencia de la diabetes está en aumento y según la Asociación Canadiense de Diabetes, se estima que más de 11 millones de personas en Canadá son diabéticos o prediabéticos, con 5-10% de estas personas que tienen diabetes tipo 1 (DM1) 1. T1D es una enfermedad autoinmune que se produce por la destrucción de las células beta productoras de insulina que se encuentran dentro de los islotes de Langerhans. En la actualidad, las personas que viven con diabetes tipo 1 requieren fuentes exógenas de la insulina 2. A pesar de los avances en la terapia con insulina, los pacientes T1D siguen teniendo dificultades para regular sus niveles de glucosa en sangre y continúan sufriendo tanto hipoglucemia y la hiperglucemia. Una forma prometedora de tratamiento para restaurar la normoglucemia en T1D es el uso de células madre embrionarias humanas (hESCs), que podrían utilizarse para generar un suministro ilimitado de células productoras de ß tanto in vivo como in vitro 3 insulina, <shasta class = "xref"> 4, 5, 6, 7. La diferenciación de hESCs a ß-como las células podrían hacer posible el estudio de la diabetes in vitro, lo que permite la identificación de nuevas dianas terapéuticas para la diabetes tipo 2 y proporcionar células para el trasplante en pacientes T1D.

El intento más exitoso en la generación de células productoras de insulina a partir de hESCs in vitro es de recapitular los eventos embrionarias que se producen durante el desarrollo de páncreas 4, 5. Esta consiste en la manipulación de distintas vías de señalización para modelar con precisión las etapas clave del páncreas en desarrollo. Desarrollo pancreático comienza con la inducción de la endodermo definitivo, que se caracteriza por la expresión de CXCR4 y CD117 (c-KIT) 8, 9. La regulación precisa de DefinitSe requiere organización endodermo ive para la formación del tubo intestinal, que a continuación se somete anterior-a-posterior patrón y-ventral dorsal. El dorsal y las yemas de páncreas ventral emergen de la región del intestino anterior posterior que expresa el gen homeobox pancreática y duodenal (Pdx1), que es necesaria para el desarrollo de páncreas 10. El dorsal y ventral brotes se fusionan para formar el páncreas, que luego se somete a una amplia remodelación epitelial y expansión 11. Compromiso con el endocrino y exocrino linaje va acompañada de la generación de células progenitoras multipotentes (PSM) que expresan, entre otros, los factores de transcripción Pdx1, Nkx6.1 y Ptf1a 12, 13. PSM que se convertirán en células endocrinas y ductales continúan expresando Nkx6-1 la vez que disminuye la expresión Ptf1a. Contrariamente a esto, las células exocrinas del linaje perderán expression de Nkx6-1 y mantener la expresión Ptf1a 12.

El factor de transcripción Nkx6-1 tiene un papel clave en el desarrollo de páncreas, particularmente durante la diferenciación de las células progenitoras endocrinas a las células ß. Como se ha descrito anteriormente, la supresión de los resultados en la formación de Nkx6-1 deteriorada de las células beta durante el desarrollo de páncreas 14. Por lo tanto, la generación de células beta productoras de insulina tanto in vitro como in vivo requiere la inducción eficiente de Nkx6-1.

Recientemente hemos desarrollado un protocolo para generar eficientemente PDX1 + / + NKX6-1 progenitores pancreáticos de hPSCs. Estos progenitores pancreáticos derivados de HPSC generan células beta maduras en el trasplante dentro ratones inmunodeficientes 3. El protocolo de diferenciación se puede dividir en 4 etapas características de: 1) la inducción endodermo definitivo, 2) el patrón posterior intestino anterior, 3) la especificación de páncreas y 4) la inducción NKX6-1. A continuación se realiza una descripción detallada de cada paso de la diferenciación dirigida.

Protocol

1. Preparación de Soluciones y Medios NOTA: Preparar todos los medios para el cultivo de células en un ambiente estéril. Los medios de comunicación tiene que ser realizada y utilizada inmediatamente. Detalles de reactivos se proporcionan en la Tabla de Materiales. medio de diferenciación Preparar Día 0 Diferenciación Medio: Medio RPMI con 1% de glutamina, 2 mM CHIR 99021, 100 ng / ml de activina A, 10 4 …

Representative Results

Generación eficiente de progenitores pancreáticos se basa en el buen crecimiento y mantenimiento de las células no diferenciadas, seguido de la adición precisa de moléculas de señalización específicas durante el protocolo de diferenciación, como se ilustra en el esquema de la Figura 1A. En el día 0, las células no diferenciadas deben ser 80 a 95% de confluencia y colonias deben tener bordes definidos (Figura 1A). En la etapa 1, los medios de c…

Discussion

Generar con éxito NKX6-1 + progenitores pancreáticos de hPSCs in vitro se basa en el uso de cultivos de alta calidad de hPSCs y diferenciación dirigida que implican la regulación precisa de determinadas vías de señalización que regulan etapas de desarrollo clave durante el desarrollo de páncreas. Aunque este protocolo se puede utilizar para inducir la expresión robusta de NKX6-1 través de una variedad de líneas de HPSC como se muestra previamente 3, para asegurar la…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este manuscrito fue financiada por la Fundación General de Toronto y Occidental y el Premio de Graduados Red de Salud Banting y Best Diabetes Centro-Universidad.

Materials

Media and cytokines
1-Thioglycerol (MTG) Sigma M6145
Activin A R&D 338-AC/CF 
Ascorbic Acid Sigma A4544
B-27 Supplement Life Technologies 12587-010 
BD Cytofix/Cytoperm Buffer BD Bioscience 554722
BD Perm/Wash buffer, 1x BD Bioscience 554723
bFGF R&D 233-FB
CHIR990210 Tocris 4423a
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Life Technologies 11995
DNase I VWR 80510-412 
Dorsomorphin Sigma P5499
EGF R&D 236-EG
Fetal Bovine Serum (FBS) Wisent 88150
FGF10 R&D 345-FG
Gelatin from porcine skin Sigma G1890
Glutamine Life Technologies 25030
Nicotinamide Sigma NO636
NOGGIN R&D 3344-NG
Penicillin/Streptomycin Life Technologies 15070-063
Retinoic acid Sigma R2625
RPMI Medium 1640 Life Technologies 11875
SANT-1 Tocris 1974
TrypLE Express Enzyme (1x), phenol red Life Technologies 12605-010
Name Company Catalogue Number Comments
Antibodies for flow cytometry (working dilutions)
CD117 PE (1:100) Life Technologies CD11705
CXCR4 APC (1:50) BD  Bioscience 551966
Donkey Anti-Mouse IgG (H+L), Alexa Fluor 647 conjugate (1:400) Life Technologies A-31571
Donkey Anti-Goat IgG (H+L), Alexa Fluor 488 (1:400)  Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc. 705-546-147
Isotype Control Mouse IgG  Jackson ImmunoResearch Laboratories Inc.  015-000-003
Isotype Control Goat IgG R&D   AB-108-C
NKX6-1 (1:2000) DSHB F55A10
PDX1 (1:100) R&D AF2419

References

  1. Cogger, K., Nostro, M. C. Recent advances in cell replacement therapies for the treatment of type 1 diabetes. Endocrinology. 156 (1), 8-15 (2015).
  2. Nostro, M. C., et al. Efficient generation of NKX6-1+ pancreatic progenitors from multiple human pluripotent stem cell lines. Stem Cell Reports. 4 (4), 591-604 (2015).
  3. Pagliuca, F. W., et al. Generation of Functional Human Pancreatic beta Cells In Vitro. Cell. 159 (2), 428-439 (2014).
  4. Rezania, A., et al. Reversal of diabetes with insulin-producing cells derived in vitro from human pluripotent stem cells. Nat Biotechnol. , (2014).
  5. Kroon, E., et al. Pancreatic endoderm derived from human embryonic stem cells generates glucose-responsive insulin-secreting cells in vivo. Nat Biotechnol. 26 (4), 443-452 (2008).
  6. Rezania, A., et al. Maturation of human embryonic stem cell-derived pancreatic progenitors into functional islets capable of treating pre-existing diabetes in mice. Diabetes. 61 (8), 2016-2029 (2012).
  7. D’Amour, K. A., et al. Efficient differentiation of human embryonic stem cells to definitive endoderm. Nat Biotechnol. 23 (12), 1534-1541 (2005).
  8. Gouon-Evans, V., et al. BMP-4 is required for hepatic specification of mouse embryonic stem cell-derived definitive endoderm. Nat Biotechnol. 24 (11), 1402-1411 (2006).
  9. Jonsson, J., Carlsson, L., Edlund, T., Edlund, H. Insulin-promoter-factor 1 is required for pancreas development in mice. Nature. 371 (6498), 606-609 (1994).
  10. Pan, F. C., Wright, C. Pancreas organogenesis: from bud to plexus to gland. Dev Dyn. 240 (3), 530-565 (2011).
  11. Schaffer, A. E., Freude, K. K., Nelson, S. B., Sander, M. Nkx6 transcription factors and Ptf1a function as antagonistic lineage determinants in multipotent pancreatic progenitors. Dev Cell. 18 (6), 1022-1029 (2010).
  12. Zhou, Q., et al. A multipotent progenitor domain guides pancreatic organogenesis. Dev Cell. 13 (1), 103-114 (2007).
  13. Sander, M., et al. Homeobox gene Nkx6.1 lies downstream of Nkx2.2 in the major pathway of beta-cell formation in the pancreas. Development. 127 (24), 5533-5540 (2000).
  14. Sharow, K. A., Temkin, B., Asson-Batres, M. A. Retinoic acid stability in stem cell cultures. Int J Dev Biol. 56 (4), 273-278 (2012).
  15. Korytnikov, R., Nostro, M. C. Generation of polyhormonal and multipotent pancreatic progenitor lineages from human pluripotent stem cells. Methods. , 56-64 (2016).
  16. Baumgarth, N., Roederer, M. A practical approach to multicolor flow cytometry for immunophenotyping. J Immunol Methods. 243 (1-2), 77-97 (2000).
  17. Nostro, M. C., et al. Stage-specific signaling through TGFbeta family members and WNT regulates patterning and pancreatic specification of human pluripotent stem cells. Development. 138 (5), 861-871 (2011).
  18. Schulz, T. C., et al. A scalable system for production of functional pancreatic progenitors from human embryonic stem cells. PLoS One. 7 (5), e37004 (2012).

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Cite This Article
McGaugh, E. C., Nostro, M. C. Efficient Differentiation of Pluripotent Stem Cells to NKX6-1+ Pancreatic Progenitors. J. Vis. Exp. (121), e55265, doi:10.3791/55265 (2017).

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