Summary

Medir a funcionalidade da junção Neuromuscular

Published: August 06, 2017
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Summary

Uma avaliação funcional da junção neuromuscular (JNM) pode fornecer informações essenciais sobre a comunicação entre o músculo e do nervo. Aqui descrevemos um protocolo para avaliar exaustivamente o músculo e o MNJ funcionalidade usando duas preparações diferentes de nervo-músculo, ou seja, sóleo-isquiático e frênico-diafragma.

Abstract

Funcionalidade de junção neuromuscular (JNM) desempenha um papel crucial ao estudar as doenças em que a comunicação entre neurônio motor e músculo é prejudicada, como envelhecimento e esclerose lateral amiotrófica (ela). Aqui descrevemos um protocolo experimental que pode ser usado para medir a funcionalidade MNJ combinando dois tipos de estimulação elétrica: direto de estimulação da membrana muscular e a estimulação através do nervo. A comparação da resposta muscular para esses dois estímulos diferentes pode ajudar a definir, a nível funcional, potenciais alterações no MNJ que levam ao declínio funcional no músculo.

Preparações dex vivo E são adequadas para estudos bem controlados. Aqui descrevemos um protocolo intensivo para medir vários parâmetros do músculo e funcionalidade Nicotínico para a preparação do nervo isquiático-sóleo e para a preparação nervo frênico-diafragma. O protocolo dura aproximadamente 60 minutos e é realizado ininterruptamente por meio de uma custom-made software que mede as propriedades de cinética de contração muscular, a relação força-frequência de estimulação do músculo e do nervo e dois parâmetros específicos para a funcionalidade de JNM, ou seja, falha de neurotransmissão e fadiga intratetanic. Esta metodologia foi utilizada para detectar danos em preparações de nervo-músculo sóleo e diafragma usando SOD1G93A mouse transgénico, um modelo experimental de ALS que ubiquitously overexpresses o mutante antioxidante da enzima superóxido dismutase 1 (SOD1).

Introduction

Junção neuromuscular (JNM) é uma sinapse química formada pela conexão entre a placa terminal motor da fibra muscular e o axônio do neurônio motor terminal. O MNJ foi mostrado para jogar um papel crucial, quando a comunicação entre o músculo e do nervo é prejudicada, como ocorre no envelhecimento ou esclerose lateral amiotrófica (ela). Como o músculo e nervo comunicar-se em uma maneira de bidirecional1,2, sendo capaz de medir defeitos MNJ separadamente do músculo defeitos pode fornecer novos insights sobre sua interação fisiopatológica. Com efeito, esta avaliação funcional pode ajudar a avaliar se alterações morfológicas ou bioquímicas reduzem neurotransmissão funcionalidade de sinalização.

A comparação da resposta contrátil muscular, provocada pela estimulação do nervo e a resposta do mesmo músculo evocado por estimulação direta de sua membrana tem sido proposta como uma medida indireta da funcionalidade do MNJ. Com efeito, desde a membrana neurotransmissão de by-pass de estimulação sinalização, quaisquer diferenças nas duas respostas contráteis podem são imputáveis mudanças no MNJ. Esta abordagem foi extensivamente proposta para ratos3,4,5,6,7e também usada para reunir informações sobre modelos de rato8,9,10,11,12.

Aqui, descrevemos em detalhe um procedimento para excisar e testar duas preparações nervo-músculo, i. e. as preparações sóleo-isquiático e frênico-diafragma. Usando um Custom-Made software, nós projetamos um protocolo de teste contínuo que combina a medição de vários parâmetros que caracterizam a funcionalidade tanto Mioneural e músculo, desse modo, produzindo uma avaliação abrangente dos prejuízos MNJ separadamente do músculo. Em particular, o protocolo mede a força de contração muscular, a cinética de músculo, a curva força-frequência para direta e estímulos nervosos, a neurotransmissão falha13 para um despedimento e as frequências tetânica e a fadiga intratetanic7.

Protocol

All the animal experiments were approved by the ethics committee of Sapienza University of Rome-Unit of Histology and Medical Embryology and were performed in accordance with the current version of the Italian Law on the Protection of Animals. 1. Experimental set-up Set-up the experimental system composed of 1 actuator/transducer, 2 stimulators, 1 in-vitro muscle apparatus, 1 preparatory tissue bath, 1 suction electrode, 1 digital oscilloscope, 1 stereomicroscope, 1 cold l…

Representative Results

O protocolo descrito fornece informações sobre denervação funcional em diversas doenças neuromusculares ou envelhecimento-sarcopenia. Este protocolo pode ser usado para determinar se (e, em caso afirmativo, em que nível) alterações musculares são devido a seletivas mudanças que ocorrem no músculo em si ou na transmissão neuromuscular. Os dados mostrados abaixo são os resultados de um trabalho anterior de nosso grupo18, realizado sobre o modelo de rato …

Discussion

O protocolo experimental descrito acima fornece uma maneira ideal de medir e discriminar qualquer alterações funcionais ocorridas diretamente no músculo ou indirectamente a nível da junção neuromuscular. Uma vez que esta técnica baseia-se em uma medida indireta da funcionalidade de JNM, não pode ser usado para determinar se qualquer defeito está relacionado às alterações morfológicas ou a alterações bioquímicas. Por outro lado, ele fornece uma maneira eficaz de determinar se as alterações morfológicas …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Trabalho no laboratório dos autores foi apoiado pela Fondazione Roma e Teleton (conceder n. GGP14066).

Materials

Dual-Mode Lever System  Aurora Scientific Inc. 300B actuator/transducer
High-Power Bi-Phase Stimulator  Aurora Scientific Inc. 701B pulse stimulator (nerve)
High-Power Bi-Phase Stimulator  Aurora Scientific Inc. 701C pulse stimulator (muscle)
In vitro Muscle Apparatus  Aurora Scientific Inc. 800A
Preparatory tissue bath Radnoti 158400
Monopolar Suction Electrode A-M Systems 573000 with a home-made reference 
Oscilloscope  Tektronix TDS2014
Stereomicroscope Nikon SMZ 800
Cold light illuminator  Photonic Optics PL 3000
Acquisition board National Instruments NI PCIe-6353
Connector block National Instruments NI 2110
Personal computer AMD Phenom II x4 970 Processor 3.50 Ghz with Windows 7
LabView 2012 software National Instruments
Krebs-Ringer Bicarbonate Buffer  Sigma-Aldrich K4002  physiological buffer
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761 
Calcium chloride CaCl2 Sigma-Aldrich C4901 anhydrous, powder, ≥97%
Potassium dihydrogen phosphate KH₂PO₄ AnalaR 7778-77-0
Magnesium sulphate MgSO₄ AnalaR 7487-88-9
Buffer HEPES Sigma-Aldrich H3375 ≥99.5% (titration)
Dishes 60mm x 15mm Falcon 353004 Polystyrene
Silicone Sylgard  184 Silicone  Elastomer Kit  0.5Kg.
Thermostat Dennerle DigitalDuomat 1200
Pump Newa Mini MN 606 for aquarium
Heat resistance Thermocable Lucky Reptile 61403-1 50/60Hz 50W
Bucket any 10 liters Polypropylene
O2 + 5%CO2 siad Mix gas
#5 Forceps  Fine Science Tools 11252-20 2 items
Spring Scissors – 8 mm Blades Fine Science Tools 15024-10 nerve excision
Sharp Scissors  Fine Science Tools  14059-11 muscle removal
Delicate Scissors Wagner 02.06.32 external of the animal
Student Scalpel Handle #3 Fine Science Tools  91003-12 
Scalpel Blades #10 Fine Science Tools  10010-00
Scalpel Blades #11 Fine Science Tools  10011-00
nylon wire Ø0.16 mm any

References

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Cite This Article
Rizzuto, E., Pisu, S., Nicoletti, C., Del Prete, Z., Musarò, A. Measuring Neuromuscular Junction Functionality. J. Vis. Exp. (126), e55227, doi:10.3791/55227 (2017).

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