Summary

פרוטוקול הניסוי לזיהוי<em> כחוליות</em> בדגימות נוזלים ומוצקים עם צ'יפ Microarray נוגדן

Published: February 07, 2017
doi:

Summary

The presence of cyanobacterial toxins in fresh water reservoirs for human consumption is a major concern for water management authorities. To evaluate the risk of water contamination, this article describes an protocol for the in-field detection of cyanobacterial strains in liquid and solid samples by using an antibody microarray chip.

Abstract

התחממות גלובלית eutrophication לעשות קצת אקולוגיות מימיות להתנהג bioreactors נכון כמו המפעילות צמיחה כחוליות מהירות ומסיבית; יש זה בריאות רלוונטית השלכות כלכליות. זנים כחוליות רבים מפיקים רעלן, ורק כמה תאים נחוצים כדי לגרום נזק בלתי הפיך לסביבה. לכן, מי גוף הרשויות ומנהלים דורשים מערכות מהירות ויעילות התרעה מספקות נתונים אמינים כדי לתמוך בהחלטות המניעות או ריפוי שלהם. כתב יד זה מדווח פרוטוקול הניסוי לצורך זיהוי ב-שדה של זנים כחוליות לייצר רעלן באמצעות שבב microarray נוגדן עם 17 נוגדנים (ABS) עם רזולוציה טקסונומיות (CYANOCHIP). הנה, immunoassay microarray כריך זמנית ניאון (FSMI) עבור ניטור סימולטני של 17 זנים כחוליות נמצא לעתים קרובות פורח במערכות אקולוגיות של מים מתוקים, חלקם מפיקים רעלן, מתואר. Microarray עם רבple משכפל זהה (עד 24) של CYANOCHIP שהודפס לשקופית מיקרוסקופ יחידה לבחון מספר דומה זמני של דגימות. דגימות נוזליות יכולות להיבדק על ידי דגירה ישירה עם (ABS) הנוגדנים או לאחר ריכוז תא על ידי סינון דרך פילטר 1 עד 3 מיקרומטר. דגימות מוצקות, כגון משקעים וסלעי קרקע, הם הומוגני ומתפזרים ראשונים על ידי ultrasonicator כף יד מאגר דגירה. הם מסונן מכן (5 – 20 מיקרומטר) כדי להסיר את החומר הגס, ואת התסנין הוא מודגרות עם שרירי בטן. Immunoreactions מתגלה על ידי דגירה סופית עם תערובת של 17 Abs שכותרתו פלואורסצנטי נקרא על ידי גלאי קרינה ניידים. התהליך כולו לוקח בערך 3 שעות, ורובו מתאים לשתי תקופות 1-שעות של דגירה. הפלט הוא דימוי, שבו כתמים בהירים מתאימים זיהוי החיובי של סמנים כחוליות.

Introduction

איתור וניטור של מיקרואורגניזמים קהילות חיידקים טבע מורכבים הם קריטיים בתחומים רבים, כולל ביו-רפואה, אקולוגיה סביבתית, לאסטרוביולוגיה. כחוליות הם מיקרואורגניזמים פרוקריוטים ידועים ביכולתם ליצור פורח (התפשטות מוגזמת) של תאים במים מתוקים. הם נמצאים בכל מקום, ומינים רבים מסוגלים לייצר רעלנים, מובילה לא רק כדי סיכון פוטנציאלי לבריאות האדם, אלא גם השפעה אקולוגית. בהקשר זה, חשוב לפתח שיטות מהירות ורגישות לגילוי המוקדם של כחוליות ו / או רעלנים שלהם באדמה ובמים. לצורך זה, immunoassay microarray הכריך פלורסנט זמנית (FSMI) פותח ככלי מנהלי מים כדי לסייע להם בקבלת החלטות, וכתוצאה מכך, ביישום תוכניות ניהול מים נאותות.

מגוון רחב של שיטות פותח כדי לאתר ולזהות ציאןתאים cyanotoxins obacterial באדמה ובמים, כולל מיקרוסקופיה אופטית, ביולוגיה מולקולרית, וטכניקות אימונולוגית. שיטות אלה יכולים להשתנות במידה רבה את המידע שהם מספקים. טכניקות מיקרוסקופיות מבוססות על מורפולוגיה תאי זיהוי של קרינת in vivo מ פיגמנטים כחוליות, כגון phycocyanin או כלורופיל 1. למרות שהם שיטות מהירות וזולות עבור בזמן אמת ניטור תכוף כי להודיע על הסוג והמספר כחוליות נוכח מדגם, הם לא נותנים מידע על הרעילות האפשרית. בנוסף, הם דורשים רמה מסוימת של מומחיות, בהתחשב בכך הוא לעתים קרובות קשה מאוד להבחין בין מינים קרובים 2. כדי להתגבר על המגבלות האלה, מיקרוסקופ אור חייב להיות מלווה על ידי שני מבחני המיון הביולוגי ביוכימיים ושיטות physicochemical לזיהוי וכימות של cyanotoxins.

<pclass = "jove_content"> מבחני immunosorbent enzyme-linked (ELISA), מבחני עיכוב פוספט החלבון (PPIA), ובדיקות ועצביות עכברים הם דוגמאות של מבחני מיון ביוכימיים לצורך זיהוי של cyanotoxins. בעוד שתיים הראשונים הם מתודולוגיות מהירים ורגישים, תוצאות חיוביות שגויות תוארו בעת שימוש בדיקות ELISA ו- PPIA מוגבלות לשלושה סוגי רעלים. מבדק העכבר הוא טכניקה איכותית עם רגישות נמוכה ודיוק, ורישוי מיוחד והכשרה נדרשת. בנוסף, זה לא נותן מידע על סוג של רעלים הנמצאים במדגם. Cyanotoxins ניתן מזוהה לכימות על ידי שיטות אנליטיות אחרות, כגון כרומטוגרפיה נוזלית בעל ביצועים גבוהים (HPLC), ספקטרומטריית מסה-כרומטוגרפיה נוזלית (LC-MS), גז כרומטוגרפיה (GC), ספקטרומטריית כרומטוגרפיה-מסת הגז (GC-MS), או זמן יינון desorption / לייזר בסיוע מטריקס של טיסה (MALDI-TOF). עם זאת, זה אפשרי רק אם סטנדרטי התייחסות, אשר צריךed לקבוע ריכוזי רעלן פרט בדגימות מורכבות, זמין 3, 4. יתר על כן, שיטות אלה הן זמן רב; דורש ציוד, אספקה ​​יקר, הכנת מדגם; וחייבת להתבצע על ידי צוות מנוסה מיוחד.

מולקולריות מבוסס שיטות יושמו במשך עשרות שנים כדי לאתר, לזהות, ולכמת כחוליות ו cyanotoxins המתאים הודות לפרטי הרצף שפורסמו בכתב מסדי הנתונים הגנום (למשל, המרכז הלאומי למידע ביוטכנולוגיה, צמח שדה). בין השיטות הללו הם אלה המבוססים על תגובת שרשרת פולימרז (PCR), המחייב את העיצוב של סטים של פריימרים עבור הגברת DNA ותלוי ידע קודם של רצפי DNA של מינים כחוליות שונים. בעוד זיהוי הגן, כמו אופרון phycocyanin, מוביל זיהוי מדויק ברמת הסוג, כמה מינים או זנים הם מבלי שיבחינו עםהשיטה הזאת. עם זאת, הגנים המקודדים-טוקסין, כגון השייכים אופרון microcystin, להקל על זיהוי של רעלים בדגימות שבו המפיקים הם נדירים 5. עם זאת, זיהוי של סמני רעלן ידי PCR אינו מצביע בהכרח רעיל בסביבה. יתר על כן, הקבוצה של פריימרים פותחו כדי לנתח את המגוון השלם של מינים של מפיקים כחוליות ורעלנים נוכחים מדגם שעדיין לא הושלם, ועל מחקרים נוספים צריכים לעשות כדי לזהות מינים שאינם מוכרים. בטכניקות מולקולריות אחרות שאינן PCR מבוססים, כגון קרינת כלאה באתרו (FISH) ואת מערכי DNA.

בטכנולוגית שני העשורים, microarray האחרונים צברה חשיבות בתחומים רבים של יישום, במיוחד ניטור סביבתי. מערכי DNA לאפשר אפליה בין המינים analytes 4, 6, 7 </sup>, 8, 9, 10, אבל הם נחשבים מאוד מייגעים זמן רב משימות שכוללות שלבים מרובים (לדוגמא, ביצועי microarray, מיצוי DNA, הגברת PCR, ו כלאה). מסיבה זו, מבחני זמן רבים פחות מבוססים על נוגדנים, כגון כריך microarrays אימונולוגיים התחרותי, הפכו שיטה חיונית ואמינה תפוקה גבוהה לצורך זיהוי של analytes המרובה הסביבתי 11, 12, 13. היכולת של נוגדנים להכיר תרכובות היעד שלהם במיוחד כדי לזהות כמויות קטנות של analytes וחלבונים, יחד עם האפשרות לייצר נוגדנים נגד כמעט כל חומר, להפוך microarrays נוגדן טכניקה רבת עוצמה למטרות סביבתיות. בנוסף, את היכולת להשיג מספר ניתוחי כמוingle assay, עם מגבלות של גילוי החל ppb כדי PPM, הוא אחד היתרונות העיקריים של שיטה זו 14.

חיישנים ביולוגיים מבוססי נוגדן הוכיחו להיות כלי רגיש מהירה לצורך זיהוי של מגוון רחב של פתוגנים ורעלים ניטור סביבתי 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21. בעוד שיטות DNA כרוכות בכמה שלבים, microarrays מבוסס הנוגדנים דורש רק הכנת מדגם קטנה המבוססת בעיקר על צעד תמוגה קצר חיץ פתרון הולם. Delehanty ו Ligler 15 דיווחו על זיהוי סימולטני של חלבונים analytes חיידקי בתערובות מורכבות המבוססות על immunoassay כריך נוגדן מסוגל לאתר ריכוז חלבון של 4 ppbד 10 4 CFU / מ"ל של תאים. Szkola et al. 21 פתחו microarray זמנית זולה ואמינה עבור זיהוי סימולטני של proteotoxins ורעלים קטנים, תרכובות היכולות לשמש לוחמה ביולוגית. הם זיהו ריכוזים של הרעלן ריצין, עם הגבלה של גילוי של 3 ppb, בתוך פחות מ -20 דקות. לאחרונה, CYANOCHIP, הנוגדן microarray מבוסס biosensor לגילוי באתרו של כחוליות רעילות רעילות, תואר 22. microarray זה מאפשר זיהוי של פרחים כחוליות פוטנציאל, בעיקר בסביבות מימיות, אשר קשה לזהות מיקרוסקופית. המגבלה של זיהוי של microarray היא 10 2 – 10 תאים 3 עבור רוב המינים, מפנים biosensor זו תוכל להפוך לכלי חסכוני לצורך זיהוי הזמני וזיהוי כחוליות, אפילו ברמת המין. כל המאפיינים הללו להפוך את antiboטכניקת microarray dy, ובמיוחד השיטה המוצגת בעבודה זו, שיטה מהירה ופשוטה יותר לעומת הטכניקות הנ"ל.

היצירה מציגה שתי דוגמאות של ניסויים שמשתמשים biosensor microarray מבוסס נוגדנים כדי לזהות את נוכחותו של כחוליות בדגימות קרקע ומים. זוהי שיטה פשוטה ואמינה המבוססת על פורמט immunoassay כריך הדורשת כרכי מדגם קטנים מאוד הכנת מדגם מאוד בסיסית. השיטה מחייבת זמן קצר והוא יכול להתבצע בקלות בתחום.

Protocol

1. הכנה של Immunogens לגדול כל זן כחוליות במדיום התרבות המקביל בתנאים המתוארים בטבלה 1. הערה: התנאים בינוני צמיחה והתרבות עבור כל זן כחוליות מפורטים בטבלה 1. כל הזנים כחוליות, למעט K17, שייכים לקבוצה …

Representative Results

עבודה זו מתארת מבחן immunoassay זמנית לצורך זיהוי סימולטני של מינים כחוליות מים מתוקים הרלוונטי ביותר (טבלה 1) באמצעות microarray נוגדן CYANOCHIP. על microarray יכול להיות בפורמט microarray 3 x 8 מודפס על גבי שקופיות מיקרוסקופ. microarray כל מורכב סט של 17 נוגדנים מודפסים ב?…

Discussion

הנה, immunoassay כריך זמנית פלורסנט באמצעות CYANOCHIP, microarray 17-נוגדן לאיתור וזיהוי של מגוון רחב של סוגים כחוליות, מתואר 22. כחוליות אלה מייצגים את סוגי benthic ו planktonic השכיחים ביותר בבתי גידול של מים מתוקים, חלקם מפיקים רעלן להיות. לאחרונה, בפורמט immunoassay כריך ניאון ?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים לד"ר אנטוניו Quesada מן מדריד Universidad de האוטונומית למתן זנים כחוליות. עבודה זו מומנה על ידי Investigación Subdirección הגנרל דה Proyectos דה של הספרדים Ministerio דה Economía y Competitividad (MINECO), אינה מעניקה. AYA2011-24803 ו ESP2014-58494-R.

Materials

0.22 mm pore diameter filters Millipore GSWP04700 For preparation of immunogens
Eppendorf  5424R microcentrifuge Fisher Scientific For preparation of immunogens
Phosphate buffer saline (PBS) pH 7.4 (10X) Thermofisher Scientific 70011036 50 mM potassium phosphate, 150 mM NaCl, pH 7.4
Ultrasonic processor UP50H Hielscher For preparation of immunogens
Complete Freund's adjuvant  Sigma-Aldrich F5881 Immunopotentiator
Incomplete Freud's adjuvant Sigma-Aldrich  F5506 For boost injections
Protein A antibody purification kit   Sigma-Aldrich PURE1A  For isolation of IgG
Centrifugal filter devices MWCO<100 KDa Millipore UFC510096-96K For isolation of IgG
Dialysis tubings, benzoylated Sigma-Aldrich D7884-10FT For isolation of IgG
Illustra Microspin G-50 columns  GE-HealthCare GE27-5330-02 For isolation of IgG
Bradford reagent Sigma-Aldrich B6916-500 mL To quantify the antibody concentration
MicroBCA protein assay kit  Thermo Scientific 23235 To quantify the antibody concentration
Protein arraying buffer 2X Whatman (Sigma Aldrich)  S00537 Printing buffer; 30-40% glycerol in 1X PBS with 0.01% Tween 20
Tween 20  Sigma-Aldrich  P9416 Non-ionic detergent
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich  A9418 Control  for printing; blocking reagent
384-wells microplate Genetix X6004 For antibody printing
Robot arrayer for multiple slides MicroGrid II TAS arrayer from Digilab For antibody printing
Epoxy substrate glass slides Arrayit corporation VEPO25C Solid support for antibody printing
Alexa Fluor-647 Succinimidyl-ester  Molecular probes A20006 Fluorochrome
DMSO  Sigma-Aldrich  D8418 Fluorochrome dissolvent
Heidolph Titramax vibrating platform shaker Fisher Scientific For antibody labeling 
Illustra Microspin G-50 columns  Healthcare 27-5330-01 For purification of labeled antibodies
Safe seal brown 0,5 ml tubes Sarstedt 72,704,001 For labeled antibodies storage 
Nanodrop 1000 spectrophotometer Thermo Scientific To quantify antibody concentration and labeling efficiency
3 µm pore size polycarbonate 47 mm diameter filter Millipore TMTP04700 To concentrate cells
1M Trizma hydrochloride solution pH 8 Sigma-Aldrich  T3038 For TBSTRR preparation; to block slides
Sodium chloride Sigma-Aldrich  S7653 For TBSTRR preparation
20 µm nylon filters  Millipore NY2004700 For environmental extract preparation
10-12 mm filter holders Millipore SX0001300 For environmental extract preparation
Protease inhibitor cocktail Sigma-Aldrich  P8340 For environmental extract storage
1M Trizma hydrochloride solution pH 9 Sigma-Aldrich  T2819 To block slides
Heidolph Duomax 1030 rocking platform shaker VWR To block slides; for incubation processes 
VWR Galaxy miniarray microcentrifuge VWR C1403-VWR To dry slides
Multi-Well microarray hybridization cassette Arrayit corporation AHC1X24 Cassette for 24 assays per slide
GenePix 4100A microarray scanner  Molecular Devices Scanner for fluorescence
GenePix Pro Software Molecular Devices Software for image analysis and quantification

References

  1. Simis, S. G. H., Peters, S. W. M., Gons, H. J. Remote sensing of the cyanobacterial pigment phycocianin in turbid inland water. Limnol. Oceanogr. 50 (1), 237-245 (2005).
  2. Zamyadi, A., McQuaid, N., Prevost, M., Dorner, S. Monitoring of potentially toxic cyanobacteria using an online multi-probe in drinking water sources. J. Environ. Monit. 14, 579-588 (2012).
  3. Msagati, T. A. M., Siame, B. A., Shushu, D. D. Evaluation of methods for the isolation, detection and quantification of cyanobacterial hepatotoxins. Aquat. Toxicol. 78 (4), 382-397 (2006).
  4. Weller, M. G. Immunoassays and biosensors for the detection of cyanobacterial toxins in water. Sensors. 13 (11), 15085-15112 (2013).
  5. Baker, J. A., Neilan, B. A., Entsch, B., McKay, D. B. Identification of cyanobacteria and their toxigenicity in environmental samples by rapid molecular analysis. Environ. Toxicol. 16 (6), 472-482 (2001).
  6. Li, H., Singh, A. K., McIntyre, L. M., Sherman, L. A. Differential gene expression in response to hydrogen peroxide and the putative PerR regulon of Synechocystis sp. Strain PCC 6803. J. Bacteriol. 186 (11), 3331-3345 (2004).
  7. Anderson, D. M., Cembella, A. D., Hallegraeff, G. M. Progress in understanding harmful algal blooms: paradigm shifts and new technologies for research, monitoring, and management. Ann. Rev. Mar. Sci. 4, 143-176 (2012).
  8. Dittami, S. M., Pazos, Y., Laspra, M., Medlin, L. K. Microarray testing for the presence of toxic algae monitoring programme in Galicia (NW Spain). Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 20, 6778-6793 (2013).
  9. Kegel, J. U., Del Amo, ., Medlin, Y., K, L. Introduction to Project MIDTAL: its methods and samples from Arcachon Bay, France. Environ. Sci. Pollut. Res. Int. 20 (10), 6690-6704 (2013).
  10. Marcheggiani, S., et al. Detection of emerging and re-emerging pathogens in surface waters close to an urban area. Int. J. Environ. Res. Public Health. 12 (5), 5505-5527 (2015).
  11. Fernández-Calvo, P., Näke, C., Rivas, L. A., García-Villadangos, M., Gómez-Elvira, J., Parro, V. A multi-array competitive immunoassay for the detection of broad-range molecular size organic compounds relevant for astrobiology. Planet. Space Sci. 54 (815), 1612-1621 (2006).
  12. Parro, V. . Antibody microarrays for environmental monitoring. Handbook of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. , 2699-2710 (2010).
  13. Fan, Z., Keum, Y. S., Li, Q. X., Shelver, W. L., Guo, L. H. Sensitive immunoassay detection of multiple environmental chemicals on protein microarrays using DNA/dye conjugate as a fluorescent label. J. Environ. Monit. 14 (5), 1345-1352 (2012).
  14. Rivas, L. A., García-Villadangos, M., Moreno-Paz, M., Patricia Cruz-Gil, P., Gómez-Elvira, J., Parro, V. A 200-Antibody microarray biochip for environmental monitoring: Searching for universal microbial biomarkers through immunoprofiling. Anal. Chem. 80 (21), 7970-7979 (2008).
  15. Delehanty, J. B., Ligler, F. S. A microarray immunoassay for simultaneous detection of proteins and bacteria. Anal. Chem. 74 (21), 5681-5687 (2002).
  16. Ligler, F. S., Taitt, C. R., Shriver-Lake, L. C., Sapsford, K. E., Shubin, Y., Golden, J. P. Array biosensor for detection of toxins. Anal. Bioanal. Chem. 377 (3), 469-477 (2003).
  17. Rucker, V. C., Havenstrite, K. L., Herr, A. E. Antibody microarrays for native toxin detection. Anal. Biochem. 339 (2), 262-270 (2005).
  18. Kang, J., Kim, S., Kwon, Y. Antibody-based biosensors for environmental monitoring. Toxicol. Environ. Health. Sci. 1 (3), 145-150 (2009).
  19. Herranz, S., Marazuela, M. D., Moreno-Bondi, M. C. Automated portable array biosensor for multisample microcystin analysis in freshwater samples. Biosens. Bioelectron. 33 (1), 50-55 (2012).
  20. Shlyapnikov, Y., et al. Rapid simultaneous ultrasensitive immunodetection of five bacterial toxins. Anal. Chem. 84 (13), 5596-5603 (2012).
  21. Szkola, A., et al. Rapid and simultaneous detection of ricin, staphylococcal enterotoxin B and saxitoxin by chemiluminescence-based microarray immunoassay. Analyst. 139, 5885-5892 (2014).
  22. Blanco, Y., Quesada, A., Gallardo-Carreño, I., Jacobo Aguirre, ., Parro, J., V, CYANOCHIP: An antibody microarray for high-taxonomical-resolution cyanobacterial monitoring. Environ. Sci. Technol. 49 (3), 1611-1620 (2015).
  23. Bradford, M. M. A Rapid and Sensitive Method for the Quantitation of Microgram Quantities of Protein Utilizing the Principle of Protein-Dye Binding. Anal. Chem. 72, 248-254 (1976).
  24. Lowry, O. H., Rosebrough, N. J., Farr, A. L., Randall, R. J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 193 (1), 265-275 (1951).
  25. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using Bicinchoninic acid. Anal. Biochem. 150 (1), 76-85 (1985).
  26. Rivas, L. A., Aguirre, J., Blanco, Y., González-Toril, E., Parro, V. Graph-based deconvolution analysis of multiplex sandwich microarray immunoassays: applications for environmental monitoring. Environ. Microbiol. 13 (6), 1421-1432 (2011).
  27. Blanco, Y., et al. Deciphering the prokaryotic community and metabolisms in south african deep-mine biofilms through antibody microarrays and graph theory. PloS One. 9 (2), e114180 (2014).
  28. Gas, F., Baus, B., Queré, J., Chapelle, A., Dreanno, C. Rapid detection and quantification of the marine toxic algae, Alexandrium minutum, using a super-paramagnetic immunochromatographic strip test. Talanta. 147, 581-589 (2016).
  29. Parro, V., et al. SOLID3: a multiplex antibody microarray-based optical sensor instrument for in situ life detection in planetary exploration. Astrobiology. 11, 15-28 (2011).
  30. McKay, C. P., et al. The Icebreaker Life Mission to Mars: a search for biomolecular evidence for life. Astrobiology. 13, 334-353 (2013).

Play Video

Cite This Article
Blanco, Y., Moreno-Paz, M., Parro, V. Experimental Protocol for Detecting Cyanobacteria in Liquid and Solid Samples with an Antibody Microarray Chip. J. Vis. Exp. (120), e54994, doi:10.3791/54994 (2017).

View Video