Summary

Geração de células dendríticas derivadas de monócitos humanos a partir de sangue inteiro

Published: December 24, 2016
doi:

Summary

Here, we demonstrate how monocytes are isolated by magnetic bead separation from peripheral blood mononuclear cells after density gradient centrifugation of human anti-coagulated blood. Following incubation for 5 days, human monocytes are differentiated into immature dendritic cells and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting.

Abstract

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition receptors (PRRs) expressed on their cell surface and thereby activate and regulate immunity.

The major function of DCs is the induction of adaptive immunity in the lymph nodes by presenting antigens via MHC I and MHC II molecules to naïve T lymphocytes. Therefore, DCs have to migrate from the periphery to the lymph nodes after the recognition of pathogens at the sites of infection. For in vitro experiments or DC vaccination strategies, monocyte-derived DCs are routinely used. These cells show similarities in physiology, morphology, and function to conventional myeloid dendritic cells. They are generated by interleukin 4 (IL-4) and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) stimulation of monocytes isolated from healthy donors. Here, we demonstrate how monocytes are isolated and stimulated from anti-coagulated human blood after peripheral blood mononuclear cell (PBMC) enrichment by density gradient centrifugation. Human monocytes are differentiated into immature DCs and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting after 5 days of incubation.

Introduction

As células dendríticas (CDs) são as células especializadas apresentadoras de antigénios mais importantes do nosso sistema imunitário. DCs imaturos (iDCs) residem na pele ou nos tecidos das mucosas e são, por conseguinte, entre as primeiras células imunes para interagir com os agentes patogénicos invasores. DCs representam a ponte entre o inato eo sistema imunitário adaptativo 1, uma vez que podem activar respostas T e de células B após a detecção de patógenos. Além disso, contribuem para as respostas imunitárias pró-inflamatórios devido à secreção de grandes quantidades de citocinas, tais como IL-1β, IL-6, e IL-12. DCs também activar as células NK e outras atrair células do sistema imunológico para o local da infecção por quimiotaxia.

DCs pode ser dividido em células dendríticas imaturas (iDCs) e células dendriticas maduras (MDCs) 2 com base na sua morfologia e função. Após o reconhecimento de antigénios estranhos por um dos muitos receptores de reconhecimento de padrões (por exemplo, receptores de tipo Toll, C-tipolectinas, receptores ou complementar a) abundantemente expresso na superfície da célula, iDCs sofrer grandes alterações e começar a amadurecer. Durante este processo de maturação, receptores para captura de antigénios são regulados negativamente, enquanto que as moléculas essenciais para a apresentação de antígenos são up-regulada 3. DCs maduras sobre-regular os complexo principal de histocompatibilidade I e II (MHC I e II), moléculas co-estimuladoras tais como CD80 e CD86, que são essenciais para a apresentação de antigénios e a activação dos linfócitos T. Além disso, a expressão de receptor de quimioquina CCR7 na superfície da célula é induzida, o que permite a migração de DC a partir de tecidos periféricos para os nodos linfáticos. A migração é facilitada pela "rolamento" de DC ao longo de um ligando de quimiocina 19 (CCL19 / MIP-3b) e o gradiente de ligando de quimiocina 21 (CCL21 / SLC) para os nódulos linfáticos 4-6.

Após migração, mDCs apresentar o antigénio processado a ingénuo células T CD4 + e CD8 +, assim initiating uma resposta imune adaptativa contra o agente patogénico invasor 7. Esta interacção com as células T em nódulos linfáticos, também está associada com a propagação do vírus 8. Outros estudos in vitro revelaram que DCs eficiente capturar e transferir HIV às células T e que esta resultados de transmissão de uma infecção vigorosa 9-12. Este estudo destacou que in vivo explora DCs HIV como shuttles da periferia para os gânglios linfáticos. Durante a apresentação de antigénio, as DCs segregam interleucinas chave que definem a diferenciação de células T auxiliares efectoras, e, portanto, o resultado de toda a resposta imunitária contra o micróbio é determinada nesta interacção muito. Além de tipo 1 (Th1) e tipo 2 (Th2) T efetoras, outros subconjuntos de células CD4 + T helper (por exemplo, tipo 17 (Th17) e Tipo 22 (células Th22) T) têm sido descritas, e sua indução e função foram investigadas exaustivamente. DCs são, além disso, envolvido ema geração de células T reguladoras (Tregs) 13,14. Estas células são imunossupressor e pode parar ou para baixo-regular indução ou proliferação de células T efetoras e são, portanto, crucial para o desenvolvimento de imunidade e tolerância.

DCs convencionais Humanos (CDCs) compreendem vários subconjuntos de células com uma origem mielóide (isto é, células de Langerhans (LCS) e dérmica e DCs intersticiais) ou uma origem linfóide (isto é, as DCs plasmocitoides (PDCs)). Para as experiências in vitro ou estratégias de vacinação DC, DC derivadas de monócitos são rotineiramente utilizado como um modelo para as DCs dérmicos. Estas células apresentam semelhanças na fisiologia, morfologia e função às células dendríticas mielóides convencionais. Eles são gerados por meio da adição de interleucina 4 (IL-4) e de granulócitos-macrófagos fator estimulador de colónias (GM-CSF) para monócitos isolados a partir de dadores saudáveis, 12,15-18. As células dendríticas também podem ser directamente isolados a partir da derme ou da mucosa biópsias, ou pode até mesmo be desenvolvido a partir de células progenitoras hematopoiéticas isoladas a partir de amostras de sangue do cordão umbilical obtidos ex utero CD34 +. Aqui, demonstramos como monócitos são isolados e estimulados a partir de sangue humano anti-coagulado, depois de células mononucleares de sangue periférico (PBMC) de enriquecimento por centrifugação em gradiente de densidade. Após incubação durante 5 dias, monócitos humanos sob condições específicas são diferenciados em iDCs e estão prontos para os procedimentos experimentais em um ambiente não-clínico.

Protocol

declaração de ética: consentimento informado por escrito foi obtido de todos os participantes doadores de sangue por parte do Instituto Central de Transfusão de Sangue & Departamento de Imunologia, Innsbruck, Áustria. O uso de amostras de sobras anónimos para fins científicos foi aprovado pelo Comitê da Universidade de Medicina de Innsbruck Ética. 1. enriquecimento de células mononucleares de sangue periférico (PBMC) Concentração de PBMC por centrifugação. …

Representative Results

Após centrifugação do sangue anti-coagulado usando uma almofada de sacarose, as células mononucleares do sangue periférico (PBMCs) são enriquecidas numa interfase no topo do meio de gradiente de densidade (Figura 1). Após as PBMC são retirados, a análise FACS é realizada para caracterizar as diferentes populações de células dentro das CMSPs usando marcadores de linhagem (por exemplo, para os linfócitos T CD3, CD14 para monócitos, e CD19 para linf?…

Discussion

Este protocolo descreve a geração de células dendríticas derivadas de monócitos (MDDCs) através do isolamento de monócitos humanos a partir de sangue anti-coagulado usando um ensaio baseado em nanopartícula magnética. Neste protocolo, os passos de centrifugação são realizados a montante do processo de isolamento de células, o que leva a um enriquecimento da fracção de PBMC. Embora as células são perdidas durante a centrifugação, para sobrepor o conteúdo de um saco de sangue inteiro no meio de gradien…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

We would like to thank our technician Karolin Thurnes, Divison of Hygiene and Medical Microbiology, and Dr. Annelies Mühlbacher and Dr. Paul Hörtnagl, Central Institute for Blood Transfusion and Immunological Department, for their valuable help and support regarding this manuscript. We thank the Austrian Science Fund for supporting this work (P24598 to DW, P25389 to WP).

Materials

APC Mouse Anti-Human CD19  Clone  HIB19 BD Biosciences 555415
APC Mouse Anti-Human CD83  Clone  HB15e BD Biosciences 551073
BD Imag Anti-Human CD14 Magnetic Particles  BD Biosciences 557769
BD Imagnet BD Biosciences 552311
BSA (Albumin Fraction V) Carl Roth EG-Nr 2923225
Costar 6 Well Clear TC-Treated Multiple Well Plates Costar 3506
Density gradient media: Ficoll-Paque Premium GE Healthcare Bio-Sciences 17-5442-03
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS) Sigma-Aldrich D8537
Falcon 10mL Serological Pipet Corning 357551
Falcon 25mL Serological Pipet Corning 357525
Falcon 50mL High Clarity PP Centrifuge Tube Corning 352070
Falcon Round-Bottom Tubes Corning 352054
FITC Mouse Anti-Human CD3  Clone  HIT3a BD Biosciences 555339
Ghost Dye Violet 510 (Cell Viability Reagent) Tonbo biosciences 13-0870
GM-CSF MACS Miltenyi Biotec 130-093-862
Heat Inactivated FBS (Fetal Bovine Serum), EU Approved Origin (South America) Gibco 10500-064
Hettich Rotanta 460R Hettich
IL-4 CC PromoKine C-61401
Isolation buffer: BD IMag Buffer (10X)  BD Biosciences 552362
L-Glutamine solution Sigma-Aldrich G7513
Microcentrifuge tubes, 1,5 ml, SuperSpin VWR 211-0015
PE Mouse Anti-Human CD14  Clone  M5E2 BD Biosciences 555398
PE Mouse Anti-Human CD209  Clone  DCN46 BD Biosciences 551265
RPMI-1640 medium Sigma-Aldrich R0883
UltraPure 0.5M EDTA, pH 8.0 Invitrogen 15575020

References

  1. Banchereau, J., Steinman, R. M. Dendritic cells and the control of immunity. Nature. 392, 245-252 (1998).
  2. Steinman, R. M., Hemmi, H. Dendritic cells: translating innate to adaptive immunity. Curr Top Microbiol Immunol. 311, 17-58 (2006).
  3. Steinman, R. M., Inaba, K., Turley, S., Pierre, P., Mellman, I. Antigen capture, processing, and presentation by dendritic cells: recent cell biological studies. Hum Immunol. 60, 562-567 (1999).
  4. Schwarz, J., Sixt, M. Quantitative Analysis of Dendritic Cell Haptotaxis. Methods Enzymol. 570, 567-581 (2016).
  5. Weber, M., Sixt, M. Live cell imaging of chemotactic dendritic cell migration in explanted mouse ear preparations. Methods Mol Biol. 1013, 215-226 (2013).
  6. Sixt, M., Lammermann, T. In vitro analysis of chemotactic leukocyte migration in 3D environments. Methods Mol Biol. 769, 149-165 (2011).
  7. Randolph, G. J., Angeli, V., Swartz, M. A. Dendritic-cell trafficking to lymph nodes through lymphatic vessels. Nat Rev Immunol. 5, 617-628 (2005).
  8. Wilflingseder, D., Banki, Z., Dierich, M. P., Stoiber, H. Mechanisms promoting dendritic cell-mediated transmission of HIV. Mol Immunol. 42, 229-237 (2005).
  9. Pope, M., Gezelter, S., Gallo, N., Hoffman, L., Steinman, R. M. Low levels of HIV-1 infection in cutaneous dendritic cells promote extensive viral replication upon binding to memory CD4+ T cells. J Exp Med. 182, 2045-2056 (1995).
  10. McDonald, D., et al. Recruitment of HIV and its receptors to dendritic cell-T cell junctions. Science. 300, 1295-1297 (2003).
  11. Pruenster, M., et al. C-type lectin-independent interaction of complement opsonized HIV with monocyte-derived dendritic cells. Eur J Immunol. 35, 2691-2698 (2005).
  12. Wilflingseder, D., et al. IgG opsonization of HIV impedes provirus formation in and infection of dendritic cells and subsequent long-term transfer to T cells. J Immunol. 178, 7840-7848 (2007).
  13. Kapsenberg, M. L. Dendritic-cell control of pathogen-driven T-cell polarization. Nat Rev Immunol. 3, 984-993 (2003).
  14. Mills, K. H. TLR-dependent T cell activation in autoimmunity. Nat Rev Immunol. 11, 807-822 (2011).
  15. Banki, Z., et al. Complement as an endogenous adjuvant for dendritic cell-mediated induction of retrovirus-specific CTLs. PLoS Pathog. 6, e1000891 (2010).
  16. Posch, W., et al. Antibodies attenuate the capacity of dendritic cells to stimulate HIV-specific cytotoxic T lymphocytes. J Allergy Clin Immunol. 130, 1368-1374 (2012).
  17. Posch, W., et al. Complement-Opsonized HIV-1 Overcomes Restriction in Dendritic Cells. PLoS Pathog. 11, e1005005 (2015).
  18. Wilflingseder, D., et al. Immediate T-Helper 17 Polarization Upon Triggering CD11b/c on HIV-Exposed Dendritic Cells. J Infect Dis. 212, 44-56 (2015).
  19. Grassi, F., et al. Monocyte-derived dendritic cells have a phenotype comparable to that of dermal dendritic cells and display ultrastructural granules distinct from Birbeck granules. J Leukoc Biol. 64, 484-493 (1998).

Play Video

Cite This Article
Posch, W., Lass-Flörl, C., Wilflingseder, D. Generation of Human Monocyte-derived Dendritic Cells from Whole Blood. J. Vis. Exp. (118), e54968, doi:10.3791/54968 (2016).

View Video